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文档简介
2025年生物技术人员考试题(附答案)一、单项选择题(每题2分,共20分)1.以下关于CRISPR-Cas13系统的描述,错误的是:A.主要靶向RNA分子B.可用于RNA病毒的快速检测C.相比Cas9更易引发DNA脱靶效应D.可实现转录后水平的基因表达调控答案:C(解析:Cas13靶向RNA,脱靶效应主要发生在RNA层面,DNA脱靶风险低于Cas9)2.合成生物学中,“生物砖(BioBrick)”的核心设计原则是:A.标准化连接接口B.增强基因表达强度C.提高宿主兼容性D.简化代谢途径答案:A(解析:生物砖通过定义统一的酶切位点(如EcoRI、XbaI、SpeI、PstI)实现模块间的标准化组装)3.流式细胞术检测中,FITC荧光素的激发光和发射光波长组合最可能是:A.488nm激发,525nm发射B.561nm激发,580nm发射C.640nm激发,670nm发射D.355nm激发,450nm发射答案:A(解析:FITC(异硫氰酸荧光素)典型激发波长488nm,发射波长525nm左右)4.关于碱基编辑技术(BaseEditing),以下表述正确的是:A.需要诱导DNA双链断裂(DSB)B.只能实现C→T或A→G的单碱基转换C.依赖Cas9的HNH结构域活性D.脱靶效应主要发生在RNA水平答案:B(解析:当前主流碱基编辑器(CBE和ABE)分别介导C→T和A→G转换,无需DSB,Cas9采用切口酶(nCas9)或失活形式(dCas9))5.工业酶制剂生产中,提高重组酶热稳定性的常用策略是:A.增加二硫键数目B.降低蛋白质分子量C.减少α-螺旋比例D.提高酸性氨基酸含量答案:A(解析:二硫键可稳定蛋白质空间结构,是提高热稳定性的经典手段)6.单细胞RNA测序(scRNA-seq)中,常用的细胞捕获技术不包括:A.微流控芯片(如10xGenomics)B.激光捕获显微切割(LCM)C.荧光激活细胞分选(FACS)D.原位杂交(ISH)答案:D(解析:原位杂交是检测RNA定位的技术,不用于单细胞捕获)7.重组蛋白在大肠杆菌中表达时,形成包涵体的主要原因是:A.宿主蛋白酶活性过高B.目标蛋白折叠速率快于伴侣蛋白辅助速率C.培养基渗透压过低D.启动子强度不足答案:B(解析:异源蛋白快速合成时,未及时折叠的中间体相互聚集形成包涵体)8.以下哪项是CAR-T细胞治疗实体瘤的主要挑战?A.细胞因子释放综合征(CRS)B.肿瘤微环境抑制(TME)C.靶抗原脱靶效应D.制备周期过长答案:B(解析:实体瘤的免疫抑制微环境(如Treg细胞、PD-L1高表达、基质屏障)是CAR-T疗效的主要障碍)9.代谢工程中,“动态调控”策略的核心目的是:A.提高目标产物合成速率B.平衡细胞生长与产物合成C.降低副产物生成量D.增强宿主对有毒产物的耐受性答案:B(解析:通过条件响应型调控元件(如代谢物传感器),在对数期优先保证细胞生长,稳定期启动产物合成)10.关于蛋白质定向进化技术,以下描述错误的是:A.易错PCR用于引入随机突变B.DNA改组(DNAshuffling)可重组不同突变体C.高通量筛选是关键步骤D.适用于所有蛋白质功能优化答案:D(解析:膜蛋白、多亚基蛋白等因表达或检测困难,定向进化技术应用受限)二、填空题(每空1分,共20分)1.基因编辑工具中,______(系统)可实现RNA的定点切割或修饰,其效应蛋白通常具有______结构域。答案:CRISPR-Cas13;HEPN(高等真核生物和原核生物核苷酸结合)2.合成生物学中,常用的模式微生物包括大肠杆菌、______和______(列举两种)。答案:酿酒酵母;谷氨酸棒杆菌(或蓝细菌、枯草芽孢杆菌等)3.单克隆抗体制备的关键技术是______,其原理是通过______使B淋巴细胞与骨髓瘤细胞融合。答案:细胞融合(或杂交瘤技术);聚乙二醇(PEG)或电融合4.蛋白质结晶的常用方法包括______、______和气相扩散法(需列举两种非气相扩散法)。答案:坐滴法;悬滴法(或批量法、微透析法)5.病毒载体中,______(载体)因能整合至宿主基因组且免疫原性较低,常用于基因治疗;______(载体)因容量大(约35kb)且不整合,适合短期表达。答案:慢病毒;腺相关病毒(AAV)(注:此处需注意,AAV实际容量约4.7kb,正确应为腺病毒载体容量大,可能题目存在笔误,根据最新知识调整答案为:慢病毒;腺病毒)6.实时荧光定量PCR(qPCR)中,SYBRGreen法通过检测______的荧光信号定量,TaqMan探针法通过检测______的荧光信号定量。答案:双链DNA结合;探针水解后释放7.干细胞分类中,______干细胞具有发育成完整个体的能力,______干细胞可分化为三胚层所有细胞类型。答案:全能;多能(或胚胎干细胞)8.酶工程中,固定化酶的常用方法包括______、______和包埋法(需列举两种化学方法)。答案:共价结合法;交联法9.生物信息学中,______数据库主要存储蛋白质三维结构信息,______数据库用于基因表达谱分析(需写全称)。答案:蛋白质数据库(ProteinDataBank,PDB);基因表达综合数据库(GeneExpressionOmnibus,GEO)10.工业发酵中,溶氧(DO)控制的常用策略包括调节______和______(需列举两种操作参数)。答案:搅拌转速;通气量(或罐压、补料速率)三、简答题(每题8分,共40分)1.简述CRISPR-Cas9、BaseEditor(BE)和PrimeEditor(PE)在作用机制上的主要区别。答案:CRISPR-Cas9:通过sgRNA引导Cas9蛋白至靶DNA位点,利用Cas9的HNH和RuvC结构域切割形成双链断裂(DSB),依赖非同源末端连接(NHEJ)或同源重组(HDR)修复,实现基因敲除或定点插入/删除。BaseEditor(BE):融合失活或切口酶形式的Cas9(dCas9/nCas9)与脱氨酶(如APOBEC1或TadA),无需DSB,直接催化靶位点单碱基(C→T或A→G)脱氨基,通过DNA修复实现单碱基转换。PrimeEditor(PE):利用nCas9与逆转录酶(RT)融合蛋白,结合pegRNA(包含引物结合位点和编辑模板),通过nCas9切割DNA单链形成切口,以pegRNA为模板进行逆转录,实现任意单碱基替换、小片段插入或删除,无需DSB和供体DNA。2.说明CAR-T细胞的结构组成及各部分功能。答案:CAR(嵌合抗原受体)结构主要包括:(1)胞外区:含单链抗体(scFv),负责特异性识别肿瘤细胞表面抗原(如CD19)。(2)铰链区:连接胞外区与跨膜区,维持空间构象,常用CD8α或IgG的铰链结构。(3)跨膜区:锚定CAR至T细胞膜,多采用CD3ζ、CD8α或CD28的跨膜结构域。(4)胞内区(信号传导区):-第一信号域:CD3ζ,传递T细胞激活的基础信号;-共刺激信号域:如CD28、4-1BB(CD137)或OX40,增强T细胞增殖、存活和效应功能。完整CAR-T通过scFv识别抗原后,通过胞内区传递双重信号,激活T细胞对肿瘤的杀伤作用。3.设计一个利用代谢工程改造大肠杆菌生产β-胡萝卜素的方案,需说明关键步骤及理论依据。答案:关键步骤及依据:(1)异源合成途径引入:克隆来源于欧文氏菌(Erwiniauredovora)的crtE(牻牛儿基牻牛儿基焦磷酸合酶)、crtB(八氢番茄红素合酶)、crtI(八氢番茄红素脱氢酶)基因,构建至大肠杆菌表达载体(如pET系列),使大肠杆菌从自身甲羟戊酸(MVA)或2-C-甲基-D-赤藓糖醇-4-磷酸(MEP)途径的FPP(法尼基焦磷酸)合成GGPP(牻牛儿基牻牛儿基焦磷酸),进而生成八氢番茄红素并转化为β-胡萝卜素。(2)前体供应强化:过表达MEP途径关键酶(如dxs、ispA),或引入MVA途径(如来自酿酒酵母的tHMG1、mvaS、mvaE),提高IPP(异戊烯焦磷酸)和DMAPP(二甲基烯丙基焦磷酸)的供应,增加GGPP合成量。(3)反馈抑制解除:通过定点突变或替换启动子,消除途径中关键酶(如DXS)的反馈抑制(如受硫胺素抑制)。(4)产物积累优化:敲除大肠杆菌内源性类胡萝卜素降解酶(如不存在则无需),或引入脂滴形成相关基因(如perilipin)促进β-胡萝卜素在胞内储存,减少毒性积累。(5)动态调控:使用代谢物响应型启动子(如基于β-胡萝卜素的传感器),在对数期优先合成前体,稳定期启动crt基因表达,平衡生长与合成。4.比较一代测序(Sanger)、二代测序(NGS)和三代测序(TGS)的技术特点及应用场景。答案:(1)一代测序(Sanger):-技术特点:基于双脱氧核苷酸(ddNTP)链终止法,通过毛细管电泳分离不同长度片段,读取序列;读长1000-1500bp,准确率>99.99%,通量低(单次反应1个样本)。-应用场景:小片段测序(如基因克隆验证、突变检测)、SNP分型、低通量精准测序。(2)二代测序(NGS):-技术特点:基于边合成边测序(如Illumina的桥式PCR+荧光标记dNTP)或焦磷酸测序(如454),通过大规模平行测序实现高通量(单runbillionsofreads);读长50-300bp(Illumina)或400-700bp(454已淘汰),准确率99%-99.9%。-应用场景:全基因组测序(WGS)、转录组测序(RNA-seq)、外显子测序(WES)、ChIP-seq等大规模项目。(3)三代测序(TGS):-技术特点:单分子实时测序(如PacBio的SMRT,基于零模波导孔检测DNA聚合酶合成时的荧光)或纳米孔测序(如OxfordNanopore,基于核酸通过纳米孔时的电流变化);读长>10kb(PacBio)或理论无上限(Nanopore),准确率90%-99.9%(需纠错)。-应用场景:复杂基因组组装(如高度重复区域)、长读长RNA测序(全长转录本)、表观遗传修饰(如甲基化)检测。5.简述基因治疗中腺相关病毒(AAV)载体的优缺点及优化策略。答案:优点:-低免疫原性:野生型AAV感染后不易引发强烈免疫反应;-广泛宿主范围:不同血清型(如AAV2、AAV9)可靶向特定组织(如肝脏、神经);-长期表达:以episome形式存在(非整合),可实现持续数月至数年的基因表达;-安全性高:无致病性,天然病毒无毒性基因。缺点:-包装容量小(~4.7kb),无法装载大基因(如DMD基因>100kb);-体内存在预存抗体:部分人群因自然感染携带抗AAV抗体,影响转导效率;-随机整合风险:虽主要以episome存在,但仍有极低概率整合至宿主基因组(如AAVS1位点);-生产难度高:需辅助病毒(如腺病毒)或辅助质粒,纯化工艺复杂。优化策略:-载体工程:开发杂合血清型(如AAV-DJ)或靶向肽修饰的AAV,提高组织特异性;-大容量载体:构建双AAV载体(splitAAV),通过同源重组或剪接恢复大基因;-抗体中和规避:使用免疫抑制疗法(如糖皮质激素)或筛选低免疫原性的新型血清型;-生产工艺改进:采用无辅助病毒的HEK293细胞包装系统,结合亲和层析提高纯化效率;-整合控制:通过基因编辑技术敲除AAV的Rep基因,降低整合风险。四、案例分析题(每题15分,共30分)案例1:某公司计划开发一款基于CRISPR的新冠病毒快速检测试剂盒,要求检测时间<30分钟,灵敏度达1拷贝/μL,特异性区分Omicron变异株与其他冠状病毒(如流感病毒、普通冠状病毒)。请设计技术方案并说明关键验证步骤。答案:技术方案设计:(1)靶标选择:选取Omicron变异株的特异性突变区域(如刺突蛋白S基因的R346T、K444T等高频突变位点),同时选择新冠病毒保守区(如N基因)作为内参,避免假阴性。(2)检测系统构建:采用CRISPR-Cas12或Cas13系统(优先Cas13,因靶向RNA无需反转录):-对于RNA检测:样本经简单裂解后,加入逆转录酶(若选Cas12需先RT)或直接利用Cas13的RNA切割活性;-设计crRNA:针对Omicron特异性区域设计向导RNA,确保与其他冠状病毒的同源序列无交叉;-报告系统:使用荧光标记的ssDNA/RNA探针(如FAM-BHQ),Cas蛋白切割靶标后激活反式切割活性,降解探针释放荧光。(3)反应体系优化:-等温扩增:结合RPA(重组酶聚合酶扩增)或LAMP(环介导等温扩增),在37-42℃下快速扩增靶RNA(15-20分钟),提高灵敏度至1拷贝/μL;-时间控制:将扩增与CRISPR检测合并为单管反应,总时间<30分钟;-抗干扰设计:添加RNase抑制剂防止RNA降解,优化Mg²+浓度和缓冲液pH以提高酶活性。关键验证步骤:(1)特异性验证:-检测Omicron各亚分支(BA.2、BA.5等)及其他冠状病毒(如SARS-CoV-1、MERS、流感病毒)、人类基因组DNA,确认无交叉反应;-通过错配实验(crRNA与非靶标序列存在1-3个碱基错配时无荧光信号)验证特异性。(2)灵敏度验证:-用梯度稀释的Omicron假病毒(10⁰-10⁶拷贝/μL)进行检测,确定最低检测限(LOD)是否达1拷贝/μL;-计算临床样本的阳性符合率(需检测至少100例已知阳性样本)。(3)稳定性验证:-测试不同保存条件(4℃、室温、37℃加速老化)下试剂盒的性能,确保有效期内活性稳定;-分析批间差(不同批次试剂盒检测同一样本的CV值<15%)。(4)临床验证:-在真实临床样本(咽拭子、鼻拭子)中测试,对比RT-PCR结果,计算准确率、灵敏度、特异度(要求均>95%);-评估样本处理流程(如裂解液是否兼容不同样本类型)的鲁棒性。案例2:某实验室在利用CHO细胞生产重组人促红细胞生成素(EPO)时,发现产物糖基化异常(唾液酸含量低,半乳糖暴露),导致体内半衰期缩短。请分析可能原因并提出解决方案。答案:可能原因分析:(1)细胞株问题:CHO细胞内源性糖基转移酶(如唾液酸转移酶ST3Gal3、ST6Gal1)表达不足,或关键酶(如半乳糖转移酶GalT)活性过高,导致半乳糖未被充分唾液酸化。(2)培养条件影响:-培养基成分:葡萄糖浓度过高可能导致代谢副产物(乳酸、氨)积累,抑制糖基转移酶活性;-培养环境:pH波动(<6.8或>7.4)、溶氧不足(DO<30%)影响细胞代谢和糖基化相关基因表达;-培养时间:收获时间过早(对数期),细胞未完成充分的糖基化修饰。(3)基因工程操作:EPO基因插入位点影响宿主细胞糖基化相关基因的表达(如插入至沉默染色质区域);或载体设计中使用的启动子(如CMV)导致EPO过表达,超出细胞糖基化能力。(4)其他因素:细胞传代次数过高导致表型漂移,或病毒污染(如支原体)干扰细胞代谢。解决方案:(1)细胞株优化:-过表达唾液酸转移酶基因(如ST3Gal3):通过慢病毒转染或CRISPR激活(CRISPRa)技术,提高细胞内ST3Gal3的表达水平;-敲低半乳糖转移酶(GalT):使用siRNA或CRISPR敲除GalT基因,减少半乳糖的过度添加;-筛选高糖基化能力的CHO细胞亚株:通过流式细胞术分选高表达唾液酸转移酶的细胞克隆。(2)培养条件优化:-培养基调整:添加唾液酸前体(如N-乙酰神经氨酸,Neu5Ac)或UDP-半乳糖、UDP-葡萄糖醛酸等糖核苷酸前体,提高底物供应;-控制代谢副产物:采用灌流培养或补料分批培养(Fed-batch),维持葡萄糖浓度在2-5g/L,及时移除乳酸(<20mM)和氨(<5mM);-优化环境参数:维持pH7.0-7.2,DO40%-60%,温度33-37℃(降低温度可延长培养时间,促进糖基化)。(3)工艺改进:-延长培养时间:在平台期(细胞活力开始下降前)收获,确保糖基化修饰完成;-共表达分子伴侣:如内质网分子伴侣(Calnexin)或高尔基体蛋白(如MannII),协助EPO的正确折叠和运输;-使用化学分子:添加丁酸钠(0.5-1mM)抑制组蛋白去乙酰化酶,激活糖基转移酶基因表达。(4)检测与监控:-建立糖基化质量控制标准:通过HPLC(高效液相色谱)或毛细管电泳(CE)检测唾液酸含量(目标:每分子EPO含8-14个唾液酸);-实时监控关键酶活性:通过qPCR检测ST3Gal3、GalT等基因的mRNA水平,或通过Westernblot检测蛋白表达量;-支原体检测:定期使用PCR或荧光染色法检测,确保无支原体污染(支原体可降解唾液酸)。五、论述题(20分)论述合成生物学在“双碳”(碳达峰、碳中和)目标中的应用潜力及面临的挑战。答案:合成生物学通过设计和构建人工生物系统,可在碳捕获、转化和利用环节发挥关键作用,是实现“双碳”目标的重要技术支撑。其应用潜力主要体现在以下方面:一、应用潜力1.二氧化碳固定与转化-人工固碳途径开发:自然光合作用的固碳效率(约1-2%)较低,合成生物学可设计更高效的固碳途径。例如,德国马普所构建的“CETCH循环”(化学-酶促固碳循环),通过17种酶将CO₂转化为甲酸,效率是卡尔文循环的5倍;美国JBEI开发的“ReductiveGlycinePathway”可在厌氧条件下固碳,适用于工业发酵环境。-微生物合成高附加值产品:利用蓝细菌、大肠杆菌或酵母等工程菌,将CO₂转化为生物燃料(如乙醇、丁醇)、生物塑料(如聚羟基脂肪酸酯PHA)、化学品(如丙酮、异戊二烯)。例如,LanzaTech公司的工程产甲烷菌可将工业尾气(含CO、CO₂)转化为乙醇,已实现万吨级量产。2.生物质资源化利用-木质纤维素高效降解:通过合成生物学改造纤维素酶(如内切酶、外切酶、β-葡萄糖苷酶)的分泌系统,或构建“纤维小体”(Cellulosome)人工复合体,提高秸秆、木屑等农林废弃物的降解效率,转化为可发酵糖(如葡萄糖),进一步生产生物燃料或生物基化学品。-油脂微生物合成:工程微藻(如莱茵衣藻)或酵母(如解脂耶氏酵母)可将废弃油脂、糖类转化为三酰甘油(TAG),用于生物柴油生产,减少对化石燃料的依赖。3.甲烷等温室气体减排-甲烷氧化菌改造:甲烷(CH₄)的温室效应是CO₂的28倍,合成生物学可增强甲烷氧化菌(如Methylococcuscapsulatus)的甲烷单加氧酶(MMO)活性,将CH₄转化为甲醇或其他含氧化合物;或构建“甲烷-CO₂”转化链,减少农业(如反刍动物肠道)和能源行业的甲烷排放。-氧化亚氮(N₂O)分解:通过工程菌表达N₂O还原
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