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文档简介
免疫学考试重点问答及实验技巧一、免疫学核心知识问答(一)免疫系统功能与免疫应答类型1.免疫系统的三大功能及其生理/病理意义是什么?免疫系统通过免疫防御(抵御病原体入侵,如抗细菌、病毒感染)、免疫监视(识别并清除突变细胞或病毒感染细胞,预防肿瘤发生)、免疫自稳(清除衰老/损伤细胞,维持内环境稳态)维持机体平衡。功能异常时,防御过强可致超敏反应(如哮喘),监视不足易诱发肿瘤,自稳失调会引发自身免疫病(如类风湿关节炎)。2.固有免疫与适应性免疫的本质区别有哪些?固有免疫是先天遗传的防御机制,应答速度快(数小时内),无抗原特异性,无免疫记忆,由巨噬细胞、中性粒细胞、补体等介导;适应性免疫是后天接触抗原后形成的特异性免疫,应答慢(数天),具有高度特异性和记忆性,由T/B淋巴细胞及抗体、细胞因子等介导,二者协同发挥抗感染、抗肿瘤作用。(二)免疫分子与细胞活化3.补体系统的三条激活途径有何差异?补体激活分三条途径:经典途径:由抗原-抗体复合物(IgG/IgM)激活C1q启动,依赖抗体,参与体液免疫效应阶段;MBL途径:由甘露糖结合凝集素(MBL)识别病原体表面甘露糖残基,激活MASP酶启动,不依赖抗体,是固有免疫的早期防御;旁路途径:由C3b直接结合病原体表面(如脂多糖)启动,无需抗体,是补体激活的“备用途径”,持续监控病原体入侵。4.T细胞完全活化需要哪些信号?为何“双信号”缺一不可?T细胞活化需双信号:第一信号:TCR识别抗原肽-MHC复合物,CD4/CD8共受体辅助,传递抗原特异性信号;第二信号:共刺激分子(如CD28与B7分子)结合,传递“活化许可”信号。若仅第一信号,T细胞会进入无能状态(失能)或凋亡,无法启动免疫应答;双信号共同作用下,T细胞才会增殖分化为效应细胞(如Th1、Th17),并分泌IL-2等细胞因子维持活化。(三)免疫病理与临床应用5.四型超敏反应的介导分子、效应细胞及典型疾病分别是什么?超敏反应(变态反应)分四型:Ⅰ型(速发型):IgE介导,肥大细胞/嗜碱性粒细胞释放组胺等介质,典型疾病如过敏性鼻炎(花粉过敏)、支气管哮喘;Ⅱ型(细胞毒型):IgG/IgM结合靶细胞表面抗原,补体/吞噬细胞/NK细胞介导杀伤,如输血反应(ABO血型不符)、自身免疫性溶血性贫血;Ⅲ型(免疫复合物型):抗原-抗体复合物沉积于血管/组织,激活补体引发炎症,如类风湿关节炎(关节腔IgG-类风湿因子复合物沉积)、系统性红斑狼疮(抗核抗体复合物沉积);Ⅳ型(迟发型):T细胞介导(Th1/CTL),24~72小时后出现反应,如结核菌素试验(结核杆菌感染后迟发超敏)、接触性皮炎(化妆品/金属过敏)。二、免疫学实验核心技巧与实操要点(一)ELISA实验:从“背景控制”到“结果精准”ELISA基于抗原-抗体特异性结合与酶促显色,核心是减少非特异性结合。操作关键步骤:1.包被优化:抗原/抗体包被浓度(通常0.1~10μg/ml)需预实验确定,4℃过夜包被后用PBST洗涤3次(每次3min);2.封闭充分:5%脱脂牛奶或BSA(磷酸化抗原用BSA)封闭1~2h(37℃),阻断板孔剩余位点;3.抗体孵育:一抗(如抗人IgG)4℃过夜(或37℃1h),二抗(酶标抗体)室温1h,均需用封闭液稀释(避免蛋白非特异吸附);4.洗涤彻底:每次加样后用PBST洗涤3次(浸泡1min,甩干后拍干),残留抗体/酶会导致背景升高。常见问题解决:背景高:延长封闭时间(如2h)、增加洗涤次数(4次)、降低抗体浓度(梯度稀释至1:5000~1:____);阴性对照显色:更换新的封闭液/洗涤液,操作时严格分区(加样枪头、板孔避免交叉污染)。(二)WesternBlot:“条带清晰”的秘密WB用于蛋白定性/半定量,核心是蛋白分离与转膜效率。操作黄金法则:1.样品制备:RIPA裂解液(加蛋白酶抑制剂)冰上裂解细胞,超声破碎(大蛋白需),BCA定量确保上样量均一(20~50μg/孔);2.电泳分离:根据蛋白分子量选择胶浓度(如30kD选12%胶,100kD选8%胶),积层胶50V,分离胶100V,确保蛋白线性分离;3.转膜技巧:PVDF膜用甲醇激活(激活疏水基团),湿法转膜时“三明治”结构(滤纸-胶-膜-滤纸)无气泡,恒压转膜(如300mA,60min,根据蛋白大小调整时间);4.封闭与孵育:磷酸化蛋白用5%BSA封闭(牛奶含内源性蛋白干扰),一抗4℃过夜(如抗GAPDH1:____),二抗室温1h(HRP标记,1:5000)。疑难杂症破解:无条带:检查转膜电流(胶是否染色?膜上有Marker吗?)、一抗是否失效(换用新抗体)、显影液是否新鲜(现配现用);条带模糊:上样前离心样品(去除沉淀)、转膜时用滤纸紧密贴合(排除气泡)、调整曝光时间(从10s到5min梯度曝光)。(三)流式细胞术:“数据可靠”的设门逻辑流式通过荧光信号分析细胞表型,核心是活细胞制备与抗体滴定。实操核心步骤:1.细胞制备:胰酶消化贴壁细胞(避免机械损伤),70μm筛网过滤(去除聚集细胞),台盼蓝拒染法检测活率(>90%);2.抗体选择:同型对照(如IgG-FITC)设门,避免非特异结合;多色染色时,选择光谱重叠少的荧光素(如FITC、PE、APC);3.胞内染色:固定(4%多聚甲醛)→破膜(TritonX-100)→封闭(5%BSA)→一抗孵育(如抗NF-κBp65),步骤需充分(破膜不充分会导致抗体无法进入胞内);4.上机分析:先设FSC/SSC门圈出“单细胞群”(排除细胞碎片、双细胞),再分析荧光阳性率,补偿调节(单染管逐一调整)。常见失误修正:细胞聚集:加DNase(50μg/ml)消化DNA黏连,或用EDTA替代胰酶;阳性率低:抗体梯度滴定(如1:50、1:100、1:200),选择阳性峰明显、背景低的浓度;补偿错误:多色染色时,用单染阳性细胞调节各通道补偿(如FITC单染管调PE通道的补偿)。(四)免疫组化:“定位准确”的染色艺术IHC用于组织抗原定位,核心是抗原修复与脱片控制。操作关键细节:1.组织处理:中性甲醛固定(避免酸性固定液破坏抗原),石蜡切片厚度3~5μm,60℃烤片2h(防脱片);2.抗原修复:热修复(柠檬酸缓冲液,pH6.0,微波炉高火5min+中火10min)或酶修复(胰蛋白酶,37℃10min),根据抗体说明书选择;3.封闭与孵育:3%H₂O₂阻断内源性过氧化物酶(10min),5%正常血清封闭(30min),一抗4℃过夜(如抗Ki-67,1:200),二抗(生物素化)室温30min;4.显色与复染:DAB显色(显微镜下控制时间,出现棕黄色即终止),苏木精复染核(10~30s),梯度乙醇脱水,中性树胶封片。典型问题解决:脱片:烤片时间延长至3h,修复液温度降至95℃(避免高温破坏黏附);背景高:封闭血清与二抗种属一致(如兔抗一抗用山羊血清封闭),稀释一抗(如1:500);无阳性信号:更换修复液(如EDTA缓冲液pH8.0),确认一抗孵育条件(是否需抗原修复?)。结语:免疫
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