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文档简介

检验科标本采集标准操作流程临床检验结果的准确性高度依赖标本采集的规范性。标本从“患者体内”到“检验仪器”的每一个环节,都需要严格遵循标准操作流程(SOP),以最大限度减少误差、保障检验质量。本文结合临床实践与行业规范,详细阐述检验科标本采集的全流程要点,为一线医护及检验人员提供实用操作指南。一、标本采集前准备:多维度的基础保障标本采集的准确性始于前期准备的充分性,需从人员、患者、器材、环境四个维度同步推进:(一)人员准备采集人员需具备相关资质(如护士执业证、检验技师证),并通过标本采集专项培训(含理论考核与实操考核)。培训内容需涵盖:不同标本的采集原理、操作规范、生物安全防护(如锐器伤处理、感染性标本防护)及应急处理流程(如患者晕针、标本污染后的处置)。(二)患者准备采集前需以通俗易懂的方式告知患者注意事项:饮食与用药:如空腹血糖需空腹8~12小时,血脂检测需空腹12~14小时;激素类、抗生素类药物可能影响结果,需遵医嘱停药或标注用药史。生理状态:避免剧烈运动(建议休息15~30分钟后采集血液)、情绪激动,女性避开经期(如需检测激素、尿液红细胞等项目)。特殊标本指导:如清洁中段尿需告知“清洁外阴→排尿弃去前段→留取中段尿”的步骤;24小时尿需明确“早7点排空膀胱并计时→收集此后所有尿液→次日早7点最后一次排尿加入容器”的时间节点。(三)器材准备根据标本类型选择合规容器:血液标本:血清管(无抗凝剂,促凝/分离胶管)、抗凝管(EDTA-K₂用于血常规,肝素用于生化/血气,枸橼酸钠用于凝血试验),需检查容器无裂痕、抗凝剂无渗漏、有效期内。尿液/粪便标本:清洁干燥、带盖容器(微生物检测需无菌容器),避免残留清洁剂或水。体液标本:脑脊液、胸腹水等需无菌、无热源的专用试管,按检验项目分置(如常规、生化、微生物管需独立采集)。同时,需提前准备标签(含患者姓名、ID号、标本类型、采集时间),确保信息清晰可追溯。(四)环境准备采集区域需清洁、通风,光线充足,配备手消液、锐器盒、急救设备(如肾上腺素、吸氧装置)。微生物标本采集需在清洁区或无菌操作台进行,避免交叉污染。二、不同类型标本采集流程:精准操作的核心环节(一)血液标本采集(以静脉血为例)1.采集顺序(多管采集时)遵循“血培养瓶→凝血试验管→血清管→肝素管→EDTA管→葡萄糖酵解抑制管”的顺序(避免不同抗凝剂交叉污染,影响凝血、血常规等结果)。2.操作步骤核对与体位:核对患者信息(姓名、ID、医嘱),协助患者取舒适体位(上肢伸直、掌心向上),暴露穿刺部位(肘前区优先)。消毒:75%酒精消毒穿刺点(直径≥5cm),待干(约30秒),禁用碘伏(避免影响部分检测,如血氨、胆红素)。穿刺与采血:止血带距穿刺点上方6~8cm处结扎(时间≤1分钟),穿刺成功后松止血带,按医嘱采集血量(抗凝管需立即颠倒混匀8~10次,避免凝血;血清管静置待凝)。拔针与按压:拔针后指导患者用干燥棉签按压穿刺点5~10分钟(避免揉搓,防止皮下淤血)。标签与核对:立即贴标签,核对标本信息与医嘱一致,标注采集时间。3.注意事项避免溶血:穿刺不顺时勿反复穿刺,采血后避免剧烈振荡;若需冷藏,需先分离血清/血浆。特殊人群:婴幼儿、肥胖患者可选择股静脉、颈静脉或末梢血(末梢血需注意采血深度,避免组织液混入)。(二)尿液标本采集1.标本类型与采集要求晨尿:清晨首次尿液,浓缩且成分稳定,用于肾功、尿蛋白等检测,采集量≥10ml。清洁中段尿:用于尿路感染、微生物检测,采集前需用肥皂水清洁外阴(男性清洁尿道口),弃去前段尿,留取中段尿5~10ml(无菌容器),1小时内送检。24小时尿:采集总量后混匀,取10~20ml送检,根据项目添加防腐剂(如尿蛋白定量加甲苯,尿糖加盐酸)。2.操作要点容器需无化学残留(如清洁剂、消毒剂),避免影响尿蛋白、尿糖等检测。尿液标本需避光、防污染,夏季需冷藏(4℃),避免细菌繁殖或成分分解。(三)粪便标本采集1.常规标本采集蚕豆大小的粪便(优先选取脓血、黏液、异常色泽部分),置于清洁干燥容器,1小时内送检(若检测隐血,需患者提前3天禁食动物血、铁剂、维生素C等)。2.特殊标本(如寄生虫卵、隐血试验)寄生虫卵检测:需采集不同部位粪便(至少3处),若怀疑蛲虫,需在清晨排便前用透明胶带粘取肛周标本。隐血试验:严格遵医嘱控制饮食,采集标本时避免混入尿液或消毒剂。(四)体液标本采集(以脑脊液为例)1.采集前准备由医师行腰椎穿刺术,检验人员协助准备无菌试管(3~5管,每管1~2ml),标记序号(第1管微生物、第2管生化、第3管常规)。2.操作要点严格无菌操作,采集后立即送检(微生物管需37℃保温,避免病原菌死亡)。压力测定后缓慢放液,避免颅内压骤变;若怀疑结核性脑膜炎,需延长采集量(如5ml)以提高检出率。三、标本采集后处理:质量保障的“最后一公里”(一)信息核对与记录采集后需再次核对标本标签与医嘱(患者信息、标本类型、采集时间、量),记录采集过程(如是否溶血、有无凝块、患者特殊状态)。(二)离心与分离(血液标本为例)血清管:室温静置30~60分钟(促凝管可缩短至15分钟),3000rpm离心10分钟,分离血清;抗凝管:采集后立即颠倒混匀,按需离心(如血常规无需离心,生化需分离血浆)。(三)保存与运输短期保存:4℃保存不超过24小时(特殊标本如脑脊液需立即送检)。长期保存:-20℃(1周内)或-80℃(数月),避免反复冻融。运输要求:生物安全袋包装,冷链运输(如血糖标本需冰袋保温,防止酵解),附运输单注明标本状态。四、质量控制要点:从“流程”到“品质”的升华(一)人员管理定期开展操作考核(如盲样采集、模拟应急场景),强化“一人一管一消毒”意识,避免交叉感染。(二)器材质控抗凝管:定期抽检抗凝剂浓度(如EDTA-K₂浓度应为1.5~2.2mg/ml),确保无渗漏。容器:新批次容器需做“空白对照”(如尿液容器需检测无尿蛋白、尿糖残留)。(三)标本时效性血液标本:室温≤4小时,4℃≤24小时(凝血试验需2小时内检测)。尿液标本:室温≤2小时,4℃≤8小时(微生物检测需1小时内)。(四)患者依从性通过图文手册、视频宣教等方式,提高患者对采集要求的认知(如空腹、停药、留尿方法),减少因患者因素导致的误差。五、常见问题及应对策略(一)溶血标本原因:穿刺不当(如反复穿刺)、混匀过度、冷藏前未分离血清。处理:重新采集(若患者可配合),或标注“溶血”并备注原因,供检验人员参考。(二)标本量不足原因:患者留取不充分、采集失误(如采血时未抽足血量)。处理:与患者沟通后补采(如尿液、粪便),血液标本需评估患者状态(如婴幼儿、老年患者避免多次穿刺,可联系医师调整检验项目)。(三)信息错误原因:标签粘贴错误、患者信息核对疏漏。处理:立即停止送检,重新核对信息后标记或重新采集,避免“张冠李戴”。结语检验科标本

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