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第1章绪论1.1研究背景与意义产气荚膜梭菌(Clostridiumperfringens)又称为产气荚膜芽孢杆菌、魏氏芽孢杆菌和魏氏梭菌,是一种革兰阳性专性厌氧杆菌,广泛存在于环境及动物肠道中的革兰氏阳性厌氧芽孢杆菌,其分泌的外毒素是引发动物及人类肠道疾病的主要毒力因子,产气荚膜梭菌作为耐氧厌氧菌不仅可以在有氧环境中存活,并在有氧环境和其他氧暴露组织中进行传播和诱发疾病,并产生有毒气体[1]。由于产气荚膜梭菌可产生20余种毒素和酶,不同的毒素所引发的疾病又略有区别,临床疾病往往由多种毒素共同引起[2]。其中,A型产气荚膜梭菌(C.perfringenstypeA)是导致坏死性肠炎的重要病原体,坏死性小肠结肠炎(necrotizingenterocolitis,NEC)是一种以肠道炎症为主要特征的严重胃肠道疾病,多发于新生儿,尤其在早产儿、低体重儿中的发病率更高,是导致新生儿死亡的重要原因之一[3-4]。尤其在畜牧养殖业中,由其引发的肠炎可造成严重的经济损失。目前,抗生素在治疗产气荚膜梭菌感染中仍发挥极大的作用,然而,由于抗生素的滥用与不合理使用等多种因素,导致产气荚膜梭菌耐药性增强[5-6],亟需开发高效、安全的替代疗法。木犀草素(Luteolin)是一种天然黄酮类化合物,广泛存在于蔬菜、水果及药用植物中,具有抗炎、抗氧化、抗菌及免疫调节等多重生物活性[7]。其分子结构中含有酚羟基基团,酚羟基所具备的还原性可通过清除体内活性氧物质,减轻炎性细胞遭受的氧化损伤。同时,能够对炎性介质与炎性因子进行调节,通过作用于环氧化酶和脂氧酶两条通路,对花生四烯酸代谢途径产生影响,进而减少前列腺素的生物合成[8]。已有研究表明,NF-κB信号通路是目前发现的最关键的抗炎信号通路之一,它是参与炎症和先天免疫应答的主要效应通路,木犀草素可通过抑制NF-κB信号通路减轻炎症反应[9],还通过调节肠道菌群平衡改善肠道屏障功能。然而,其在产气荚膜梭菌感染中的保护作用及机制尚未充分阐明。1.2研究现状与不足对产气荚膜梭菌感染的防治研究多着重于疫苗开发及新型抗生素筛选,疫苗实现的保护效果不理想,抗生素出现耐药性的风险依然未消,微生态制剂鉴于自身低毒性和多靶点作用,慢慢受关注,卞红春等[10]开展了在肉鸡饲养中应用复合微生态制剂的研究,该制剂由丁酸梭菌、枯草芽孢杆菌、粪肠球菌组合而成。向饲粮中添加这个微生态制剂,能改善肉鸡十二指肠跟空肠的黏膜形态,使十二指肠跟空肠的绒毛高度与隐窝深度比值分别上升7%和8.79%,何维敏等[11]开展了断奶仔猪中中药微生态制剂的应用研究,试验组仔猪的十二指肠、空肠、回肠,其绒毛高度与隐窝深度的比值显著高于对照组,不过木犀草素对抗产气荚膜梭菌感染的研究还是处于初步阶段,当下文献主要聚焦在木犀草素的体外抑菌活性,而对其在体内感染模型中的疗效评定及作用机制的研究比较不足,尤其是针对肠道病理损伤与系统性炎症的调控作用仍需深度探究。1.3研究目的与内容以被A型产气荚膜梭菌感染后小鼠的肠炎为模型,目的是探究木犀草素的治疗成效与作用机理,实验运用动态监测,查看小鼠体重变化、结肠病理损伤程度及血液学指标,全面评判木犀草素缓解肠道炎症的效能,结合中性粒细胞与淋巴细胞比例上的变化、脾脏这类免疫器官的指标,分析其调节免疫平衡的潜在路径,研究成果会为木犀草素成为抗感染候选药物提供理论支撑。第2章材料与方法2.1实验动物与分组实验动物:24只6周龄雌性BALB/c小鼠(体重18–22g),实验前适应性饲养1周,自由摄食饮水。实验分组:随机分为3组(空白组1组共5只,治疗组与感染组各分为两组,每组4只):空白组:未感染,仅腹腔注射0.2mL生理盐水,每日灌胃0.2ml助溶剂-羧甲基纤维素钠。感染组:腹腔注射0.2mLA型产气荚膜梭菌(ClostridiumperfringenstypeA)悬液(2.5×10^7CFU/mL),每日灌胃0.2ml助溶剂-羧甲基纤维素钠。治疗组:感染后每日灌胃0.2mL木犀草素溶液(5mg/mL),连续干预8天。2.2菌株与药物制备2.2.1菌株复苏A型产气荚膜梭菌(ATCC13124),复苏后于厌氧培养基(RCM培养基)中37℃培养,离心收集菌体,调整浓度至2.5×10^7CFU/mL。方法:细菌分离鉴定:将代复苏菌液划线于胰胨-亚硫酸盐-环丝氨酸琼脂培养基(TSC),42℃厌氧培养12h,观察菌落形态,挑选圆形黑色菌单落接种于RCM,42℃,180rpm培养18h后1:20加入RCM培养4h,测量OD600为1.2。6000rpm,8min离心,上清过0.22um滤膜。PCR毒素分型鉴定:如图所示,多重PCR结果(图2.1)显示,分离株仅在CPA基因处出现目的条带,条带大小符合预期324bp,未扩增出其余毒素分型基因,该菌株为A型产气荚膜梭菌。图木犀草素溶液木犀草素(Luteolin)溶于0.5%的羧甲基纤维素钠(carboxymethylcellulosesodium)使其终浓度为10mg/mL。0.5%的羧甲基纤维素钠配制方法:100mL的蒸馏水加入0.5g的羧甲基纤维素钠(将称量好的CMC粉末缓慢加入适量的冷水中,边加边搅拌,以避免CMC粉末结块,边搅拌边加热可以增加溶解效率)。待0.5%的羧甲基纤维素钠配制好以后,取25mL的0.5%的羧甲基纤维素钠,缓慢加入250mg的木犀草素粉末,充分搅拌至溶解。2.3感染模型建立与治疗干预感染方法:感染组与治疗组小鼠腹腔注射0.2mL菌液(2.5×10^7CFU/mL),空白组注射等量生理盐水。给药方案:感染后24h起,治疗组每日固定时间灌胃木犀草素溶液(0.2mL/只),空白组与感染组灌胃等量助溶剂-羧甲基纤维素钠。2.4观察指标与样本采集2.4.1体重监测每日16:00称量小鼠体重,记录变化趋势至第8天。2.4.2血液采集眼眶静脉丛取血,EDTA抗凝管保存,用于血常规检测(XT-2000i全自动血液分析仪,Sysmex)。2.4.3器官采集解剖取结肠、脾脏、肝脏及肺脏,称重后计算器官指数(器官重量/体重×100%)。2.4.4结肠病理取结肠中段1cm固定于4%多聚甲醛,石蜡包埋切片(厚度4μm),HE染色,光镜下观察炎症浸润及黏膜损伤(NikonEclipseE100)。2.5数据分析实验数据以均值±标准差表示,采用SPSS26.0进行统计分析:组间差异:单因素方差分析(ANOVA)及Tukey事后检验。显著性判定:P<0.05为差异显著,P<0.01为差异极显著。第3章结果与分析3.1体重变化趋势分析从每日体重检测数据(图3.1)可知,对照组小鼠体重保持稳定增长,给感染组小鼠腹腔注射A型产气荚膜梭菌后,体重从第2天开始急剧下降(最低降至12.1±1.2g,P<0.01),治疗组在对木犀草素灌胃后,体重下降趋势出现明显减轻,第8天体重恢复至15.8±1.1g,近乎达到对照组水平,说明木犀草素可有效缓解感染引起的体重下降状况。图3.13.2结肠病理损伤评估查看(图3.2)可得,感染组小鼠的结肠长度明显缩短,病理切片显示黏膜层遭受严重损伤,伴有炎性细胞浸润,治疗组里结肠长度逐渐恢复,黏膜结构完整性呈现改善,反映木犀草素可抑制肠道炎症反应,保护结肠组织。图3.23.3血常规指标与炎症关联从(图3.3)呈现的内容看,感染组外周血里WBC,说明存在系统性的炎症反应,淋巴细胞占比(Lym%)慢慢回升,显示出木犀草素可调节免疫细胞的平衡状态,抑制过度的炎症。表3.1各组血常规关键指标比较(均值±SD)组别WBC(×10^9/L)Neu%Lym%对照组7.54±0.966.2±5.117.6±2.3感染组9.47±1.874.8±6.21.0±0.8治疗组7.09±1.260.3±5.825.0±4.6注:P<0.01vs对照组;P<0.05vs感染组图3.33.4试验结果木犀草素有效减轻A型产气荚膜梭菌感染所致的小鼠体重丢失,抑制因A型产气荚膜梭菌引起的肠道炎症反应,保护结肠组织不受严重损害,可能是依靠减轻炎症对造血功能的抑制现象,改善小鼠的整体生理状况,能对全身的多个器官起到保护作用,其作用机制也许是与抑制病原体增殖、调节机体的免疫反应和保护肠道屏障功能相关,这些结果为木犀草素作为潜在抗感染药物的开发提供了实验依据。第4章讨论本研究设计了A型产气荚膜梭菌感染的小鼠肠炎模型,研究感染后木犀草素对小鼠体重变化、器官指数及血液学指标所起的作用,实验结果说明,木犀草素在一定程度上可缓解产气荚膜梭菌感染所致的小鼠肠炎症状,后续从多个方面展开探讨。4.1体重变化分析实验数据说明,感染组(A1、A2)的小鼠感染后体重出现大幅下降,尤其是在感染最初几天,或许与产气荚膜梭菌导致的肠道炎症及消化功能障碍存在关联,和感染组相比,治疗组(B1、B2)小鼠的体重下降趋势没那么明显,且在感染后期(6-8dpi)体重慢慢开始回升,说明木犀草素可能凭借减轻肠道炎症反应或改善肠道工作能力,让小鼠更快恢复到健康水平。木犀草素拥有针对肠道的抗炎活性,防止肠粘膜上皮的完整性出现损伤,帮助肠上皮粘膜屏障完成修复[12],对照组(C)小鼠的体重起伏波动较小,说明了感染对小鼠体重的负面作用,还有木犀草素潜在的保护功效,值得留意的是,感染组里有个别小鼠(如A1-3、A2-4)体重恢复得相对较慢,或许跟个体差异或者感染的严重程度相关。而治疗组里部分小鼠(像B2-1、B2-3)体重恢复得比较快,个体差异等方面会影响到肠道菌群的定殖,Gulati等[13]与McKnite等[14]分别表明,宿主遗传背景各异的小鼠,菌群结构存在差别,Campbell等[15]和Hufeldt等[16]的研究结果同样显示,不同生长环境会致使小鼠肠道菌群结构出现差异,个体差异同样会影响木犀草素的治疗效果,今后可再进一步优化给药方案。4.2器官指数与病理变化实验体现感染组小鼠的结肠长度一般较短,肠道炎症可能会引起结肠结构的损害,而治疗组小鼠的结肠长度对比之下较长,证实木犀草素可能具备抗炎能力,维持肠道结构的完整性,脾脏和肝脏重量的变化,或许与免疫反应和代谢负担有一定关联。感染组中的小鼠脾脏重量轻,而治疗组脾脏重量趋近于正常水平,表明木犀草素可能通过调节免疫反应[17],降低感染对脾脏形成的损伤,小鼠十二指肠、肝脏和脾脏的病理特征随木犀草素剂量升高而变弱,表明木犀草素对小鼠有一定保护效果[18],肝脏重量的变动或许是感染引起的代谢紊乱造成的,治疗组当中肝脏重量渐趋稳定,证实了木犀草素的保护效果。4.3血液学指标分析感染组小鼠的白细胞与中性粒细胞计数大多升高,白细胞计数的增加是炎症反应重要标志之一[19],说明出现明显的炎症反应,治疗组小鼠的WBC和Neu计数较为低下,且淋巴细胞在细胞总数里比例较高,陶艺文等[20]阐释木犀草素可能通过抑制过度炎症反应以及促进免疫调节发挥功效,感染组小鼠的红细胞以及血红蛋白水平稍微降低,或许跟感染引发的营养吸收问题或炎症性贫血相关,治疗组小鼠的红细胞,进一步体现了木犀草素对全身健康的改善功效。4.4木犀草素的作用机制探讨木犀草素身为一种天然黄酮类化合物,具有抗炎、抗氧化、免疫调节等诸多生物活性,木犀草素大概通过下面这些途径发挥作用:抗炎作用:抑制促炎细胞因子(如TNF-α、IL-6)往外释放,缓解肠道的炎症反应,木犀草素可对细胞内炎症信号级联进行调控,已成为用于治疗肠道疾病的候选药物[21]。免疫调节:稳定Th1/Th2免疫反应的平衡水平,增强机体抵御感染的能力。肠道屏障保护:经由增强紧密连接蛋白表达,维持肠道屏障的正常功能,减少细菌出现移位,木犀草素被认为在调节肠道菌群以及增强肠道屏障功能方面潜力重大[22]。结论木犀草素作用的机制可能与抗炎、免疫调节和肠道屏障保护有关,能减轻A型产气荚膜梭菌所引起的小鼠肠炎状况,体现为体重回升、器官损伤减小和血液学指标好转,本研究为木犀草素成为潜在抗感染药物的开发提供了实验佐证。参考文献王景松.牛羊产气荚膜梭菌多重TaqMan荧光定量PCR检测方法的建立与流行病学调查[D].宁夏大学,2023.DOI:10.27257/ki.gnxhc.2023.001668.王建东,王景松,王健霖,等.产气荚膜梭菌主要毒素生物学活性研究进展[J].上海畜牧兽医通讯,2023,(04):18-24.DOI:10.14170/31-1278/s.2023.04.016.MeisterAL,DohenyKK,TravagliRA.Necrotizingenterocolitis:it'snotallinthegut[J].ExpBiolMed(Maywood),2020,245(2):85-95.DOI:10.1177/1535370219891971.DoganP,OzkanH,KoksalN,etal.Mannose-bindinglectingenepolymorphismanditseffectonshorttermoutcomesinpreterminfants[J].JPediatr(RioJ),2020,96(4):520-526.DOI:10.1016/j.jped.2019.03.001.Anju,K.Karthik,V.Divya,

etal.ToxinotypingandmolecularcharacterizationofantimicrobialresistanceinClostridiumperfringensisolatedfromdifferentsourcesoflivestockandpoultry[J/OL].Anaerobe.2021,67:102298.NGAMWONGSATITB,TANOMSRIDACHCHAIW,SUTHIENKULO,etal.MultidrugresistanceinClostridiumperfringensisolatedfromdiarrhealneonatalpigletsinThailand[J].Anaerobe,2016,38:88-93Luteolin;Biologicalactivity;Preparation;Reviewdoi:10.3969/j.issn.1674-7860.2022.10.044于倩,巫冠中.木犀草素抗炎机制的研究进展[J].药学研究,2019,38(2):108-111,119.沈瑞明,马丽辉,郑颜萍.木犀草素通过TLR/MyD88/NF-κB通路参与急性痛风性关节炎大鼠的抗炎作用[J].中南大学学报(医学版),2020,45(2):115-122.DOI:10.11817/j.issn.1672-7347.2020.190566卞红春,陈丽珠,余树培,等.复合微生态制剂对蛋鸡生产性能、肠道黏膜形态、肠道有害菌、粪便含水率和氮排泄的影响[J].山东畜牧兽医,2023,44(3):1-5.何维敏,况世昌,李筱雯,等.发酵中药微生态制剂对断奶仔猪肠道结构、肠组织基因表达及肠道菌群的影响[J].湖北农业科学,2022,61(16):137-141,146.LIBL,ZHAODY,DUPL,etal.LuteolinalleviatesulcerativecolitisthroughSHP-1/STAT3pathway[J].Inflammationresearch,2021,70(6):705-717.GulatiAS,ShanahanMT,ArthurJC,etal.MousebackgroundstrainprofoundlyinfluencesPanethcellfunctionandintestinalmicrobialcomposition[J].PLoSOne,2012,7:e32403.McKniteAM,Perez-MunozME,LuL,etal.Murinegutmicrobiotaisdefinedbyhostgeneticsandmodulatesvariationofmetabolictraits[J].PLoSOne,2012,7:e39191.CampbellJH,FosterCM,VishnivetskayaT,etal.Hostgeneticandenvironmentaleffec

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