测定蛋白质相对分子质量

【目的要求】学习SDS测定蛋白质分子量的原理。掌握垂直板电泳的操作方法。运用SDS测定蛋白质分子量及染色鉴定。【实验原理】电泳带电颗粒在电场作用下，向着与其电荷相反的电极移动的现象。PAGE

聚丙烯酰胺凝胶（PAG）是由单体丙烯酰胺(Acr)和交联剂甲叉双丙烯酰胺(Bis)在加速剂四甲基乙二胺(TEMED)和引发剂过硫酸铵(AP)的作用下聚合交联而成的三维网状结构的凝胶。以此凝胶作为支持介质的电泳称为PAGE。PAGE具有电泳和分子筛的双重作用。CH2=CHC=ONH2丙烯酰胺N,

N’-甲叉双丙烯酰胺CH2=CHC=O

NH

CH2

NHC=O

CH2=CH聚丙烯酰胺CH2-CHC=ONH2CH2-CHC=ONHCH2NHC=O

CH2-CHCH2¯

CHC=ONH2CH2-CHC=ONH2CH2-CHCH2-CHCH2-CHC=ONH2CH2-CHCH2-CH()n()n()m()m

PAG机械强度好，有弹性，透明，化学性质稳定，改变

Acr浓度或Acr与Bis的比例可以得到不同孔径的凝胶。PAGE分为连续系统和不连续系统两大类。连续系统电泳体系中缓冲液pH值与凝胶中的相同.带电颗粒在电场作用下，主要靠电荷和分子筛效应。不连续系统中带电颗粒在电场中泳动不仅有电荷效应、分子筛效应，还具有浓缩效应，因而其分离条带清晰度及分辨率均较前者佳。SDS

是在蛋白质样品中加入SDS和含有巯基乙醇的样品处理液，SDS是一种很强的阴离子表面活性剂，它可以断开分子内和分子间的氢键，破坏蛋白质分子的二级和三级结构。【SDS基本原理】

强还原剂巯基乙醇可以断开二硫键破坏蛋白质的四级结构。使蛋白质分子被解聚成肽链形成单链分子。解聚后的侧链与SDS充分结合形成带负电荷的蛋白质-SDS

复合物。

蛋白质分子结合SDS阴离子后，所带负电荷的量远远超过了它原有的净电荷，从而消除了不同种蛋白质之间所带净电荷的差异。蛋白质的电泳迁移率主要决定于亚基的相对分子质量。而与其所带电荷的性质无关。

有许多蛋白质是由亚基或两条以上肽链组成的，它们在

SDS和巯基乙醇作用下，解离成亚基或单条肽链，因此这一类蛋白质，测定的只是亚基或单条肽链的MW。将已知分子量的标准蛋白质在SDS

中的电泳迁移率对分子量的对数作图，即可得到一条标准曲线。只要测得未知分子量的蛋白质在相同条件下的电泳迁移率，就能根据标准曲线求得其分子量。当蛋白质的分子量在17,000～165,000之间时，蛋白质-SDS复合物的电泳迁移率与蛋白质分子量的对数呈线性关系：

lgMW=K-bm

【操作方法】１、垂直板电泳槽

1）分离胶的制备

配制12%分离胶。在烧杯中依次加入重蒸水3.35ml,分离胶缓冲液2.5ml,10%SDS0.1ml,凝胶储备液4.0ml，10%过硫酸铵50ul和TEMED10ul（两块胶的量？？？）。由于AP和TEMED相遇后凝胶即开始聚合，所以应立即混匀混合液，用移液枪抽取3.2~3.5ml凝胶液加至长、短玻璃板间的窄缝内.再用注射器在凝胶表面沿短玻璃板边缘轻轻加一层重蒸水,用于隔绝空气，使胶面平整。37℃烘箱下聚合（约30-60min）。待凝胶完全聚合.将贮槽的蒸馏水倒去，用细条滤纸吸去残留的水液。2、凝胶的制备2）浓缩胶的制备配制3%浓缩胶。在烧杯中依次加入重蒸水3.12ml,浓缩胶缓冲液1.25ml,10%SDS0.05ml,凝胶储备液0.6ml，10%过硫酸铵25ul和TEMED5ul（两块胶的量？？？）。混匀后用注射器加到已聚合的分离胶上方，直至距离短玻璃板上缘约0.5cm处(立即清洗注射器及针头)。轻轻插入梳齿至浓缩胶内，避免带入气泡。约30min后凝胶聚合。2、凝胶的制备3、蛋白质样品的处理1）标准蛋白质样品的处理低分子量标准蛋白试剂盒:兔磷酸化酶B

MW=97,400

牛血清白蛋白MW=66,200

牛碳酸酐酶MW=31,000

胰蛋白酶抑制剂MW=20,100

鸡蛋清溶菌酶MW=14,400

开封后，沸水浴中加热3-5min后上样。2）样液的准备

用移液枪小心吸取处理好的血清50ul至1.5ml的离心管中，再加入50ul上样缓冲液，混匀后沸水浴中加热3min，取出冷却后加样。StakinggelSeparatinggel

将电泳仪的正负极与电泳槽正负极相连接，打开电泳仪开关，设置电压为110V，电泳80mins,此时溴酚蓝染料达到凝胶底部，停止电泳，关闭电源。5、电泳4、加样

用移液器分别取10

l样品液，小心将样品加到凝胶凹形样品槽底部。7、结果处理

量出加样端距细铜丝间的距离(cm)以及各蛋白质样品区带中心与加样端的距离(cm)，按下式计算相对迁移率mR：

相对迁移率mR=

蛋白质样品迁移距离(cm)溴酚蓝区带距加样端距离(cm)6