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文档简介
2026年细胞培养试题及答案一、选择题(每题2分,共20分)1.原代细胞与传代细胞的主要区别在于:A.原代细胞分裂次数有限,传代细胞可无限增殖B.原代细胞需经酶消化,传代细胞无需消化C.原代细胞为贴壁生长,传代细胞为悬浮生长D.原代细胞来自胚胎组织,传代细胞来自成体组织答案:A2.无血清培养基中通常不包含以下哪种成分?A.牛血清白蛋白(BSA)B.转铁蛋白C.胎牛血清(FBS)D.表皮生长因子(EGF)答案:C3.CO2培养箱中维持5%CO2浓度的主要目的是:A.抑制细菌污染B.维持培养基pH稳定C.促进细胞有氧呼吸D.防止细胞脱水答案:B4.支原体污染对细胞培养的典型影响是:A.培养基迅速浑浊B.细胞增殖速率显著加快C.细胞形态异常且难以通过常规抗生素清除D.细胞贴壁能力完全丧失答案:C5.细胞冻存时,常用的冻存液中二甲亚砜(DMSO)的最适浓度为:A.5%B.10%C.15%D.20%答案:B6.贴壁细胞出现“接触抑制”现象时,表明:A.细胞已进入对数生长期B.细胞密度达到饱和,需及时传代C.细胞发生癌变D.培养基营养耗尽答案:B7.胰酶消化贴壁细胞时,加入EDTA的主要作用是:A.增强胰酶活性B.螯合Ca²+、Mg²+,破坏细胞间连接C.中和培养基中的血清成分D.防止细胞破裂答案:B8.悬浮细胞传代时,通常采用的方法是:A.直接离心收集细胞后换液B.胰酶消化后离心传代C.机械吹打分散细胞后传代D.无需处理,直接添加新鲜培养基答案:A9.细胞计数时,若台盼蓝染色后视野中活细胞占比为85%,说明:A.细胞活力良好,可用于实验B.细胞已严重污染,需丢弃C.培养基pH异常D.细胞处于衰老期答案:A10.MTT法检测细胞活性的原理是:A.检测细胞内ATP含量B.活细胞线粒体将MTT还原为紫色甲瓒C.检测细胞膜完整性D.检测细胞增殖相关基因表达答案:B二、填空题(每空1分,共20分)1.基础培养基(如DMEM)的常规pH范围为______,需通过______(缓冲系统)维持稳定。答案:7.2-7.4;碳酸氢钠/CO22.胎牛血清使用前需经______℃、______分钟灭活处理,以破坏补体活性。答案:56;303.细胞复苏的关键操作是______,目的是减少______对细胞的损伤。答案:快速融化(37℃水浴);冰晶4.支原体污染的常用检测方法包括______和______(列举两种)。答案:PCR检测;DAPI/HoechstDNA染色法5.无血清培养基中需添加的关键成分包括______(如EGF)、______(如转铁蛋白)和载体蛋白(如BSA)。答案:生长因子;微量元素/营养补充剂6.原代细胞通常在培养______代内保持原组织特性,超过此代数后可能发生______。答案:1-2;去分化/遗传特性改变7.细胞培养中最常见的污染微生物包括______、______和支原体。答案:细菌;真菌8.细胞冻存液的经典配方为______(比例)的培养基、血清和DMSO。答案:7:2:1(培养基:血清:DMSO)9.贴壁细胞传代时,胰酶消化过度会导致______,需通过______终止消化。答案:细胞损伤/死亡;含血清培养基10.细胞计数时,台盼蓝染色后______(活/死)细胞会被染色,原因是其______受损。答案:死;细胞膜完整性三、简答题(每题8分,共40分)1.简述原代细胞与传代细胞的主要区别。答案:原代细胞直接取自组织,经酶消化或机械分散后首次培养,保留原组织的生物学特性(如分化状态、基因型),分裂次数有限(通常50代内),对培养条件敏感;传代细胞是原代细胞经首次传代后的细胞,部分细胞可能发生永生化(如细胞系),分裂能力增强,生物学特性可能改变(如失去接触抑制、形态单一),对培养条件耐受性提高。2.无血清培养基相比含血清培养基的优缺点有哪些?答案:优点:①成分明确,避免血清中未知成分干扰实验(如生长因子、激素);②减少批间差异(血清不同批次质量波动大);③降低污染风险(血清可能携带病毒、支原体);④便于后续产物纯化(如单克隆抗体、重组蛋白)。缺点:①成本高(需添加高纯度生长因子、载体蛋白);②需针对特定细胞优化配方(不同细胞对生长因子需求差异大);③部分细胞在无血清条件下增殖能力下降(如原代细胞)。3.如何检测和处理细胞培养中的细菌污染?答案:检测:①镜检:培养基浑浊,倒置显微镜下可见大量运动性颗粒(细菌);②革兰氏染色:区分阳性/阴性菌;③细菌培养:取培养基接种LB琼脂平板,37℃培养24-48小时观察菌落。处理:①轻度污染:可尝试用广谱抗生素(如青霉素-链霉素)处理,但可能导致耐药菌产生;②重度污染:立即丢弃污染细胞及相关耗材(培养基、吸管),避免交叉污染;③环境消毒:用75%乙醇擦拭超净台,紫外照射30分钟,定期检测CO2培养箱(如用含氯消毒剂擦拭内壁)。4.干细胞(如iPSCs)培养的关键技术要点有哪些?答案:①基质支持:需接种于饲养层细胞(如小鼠胚胎成纤维细胞MEF)或基质胶(如Matrigel),模拟体内微环境;②培养基:含特定细胞因子(如bFGF维持多能性,LIF抑制分化);③传代方法:需轻柔消化(如用EDTA或温和胰酶替代常规胰酶),避免机械损伤;④分化抑制:定期检测多能性标记(如Oct4、Sox2),避免自发分化;⑤低氧环境:部分干细胞(如ESCs)在5%O2条件下增殖更稳定,减少氧化损伤。5.单克隆抗体制备中,细胞融合后如何筛选杂交瘤细胞?答案:融合后混合细胞包含未融合的骨髓瘤细胞、未融合的B淋巴细胞及杂交瘤细胞。筛选原理:①骨髓瘤细胞缺陷型(如HGPRT-)无法利用次黄嘌呤(H)和胸腺嘧啶(T),只能通过从头合成途径合成DNA,但HAT培养基含氨基蝶呤(A)阻断从头合成途径,故未融合的骨髓瘤细胞死亡;②B淋巴细胞自身无法长期增殖,培养数日后自然死亡;③杂交瘤细胞因融合获得B淋巴细胞的HGPRT+基因,可利用HAT中的H和T通过补救途径合成DNA,因此存活并增殖。最终通过有限稀释法筛选单克隆阳性细胞株。四、论述题(每题10分,共20分)1.论述细胞培养中氧浓度控制的重要性及不同细胞类型的优化策略。答案:氧浓度是细胞培养的关键环境参数,直接影响细胞代谢、增殖及功能:①氧参与线粒体氧化磷酸化,高氧(21%)可能导致活性氧(ROS)积累,损伤DNA和蛋白质;低氧(1-5%)可模拟体内微环境(如骨髓、肿瘤组织),促进干细胞多能性维持或肿瘤细胞存活。②不同细胞对氧的需求差异显著:干细胞(如ESCs、iPSCs):体内通常处于低氧环境(2-5%O2),低氧可抑制分化相关基因表达(如HIF-1α激活),维持多能性;高氧则诱导ROS产生,导致分化或凋亡。优化策略:使用低氧培养箱(3-5%O2),添加抗氧化剂(如谷胱甘肽)。肿瘤细胞:多数实体瘤内部为低氧微环境(<1%O2),低氧可激活HIF通路,促进增殖和转移相关基因表达(如VEGF);但部分悬浮肿瘤细胞(如白血病细胞)在常规氧浓度(21%)下增殖更活跃。优化策略:根据肿瘤类型调整氧浓度(实体瘤用1-3%,悬浮瘤用21%),联合检测HIF-1α表达验证。原代细胞(如成纤维细胞、内皮细胞):体内通常处于生理氧(5-10%),高氧(21%)可能加速衰老(端粒缩短);低氧可延长传代次数。优化策略:使用生理氧培养(5-10%),避免长期暴露于空气氧。工业生产用细胞(如CHO细胞):需高增殖速率和蛋白表达,常规氧(21%)可满足需求;但高密度培养时(>1×107cells/mL),需提高氧浓度(30-40%)或通过微载体增加传质效率,避免局部缺氧。综上,氧浓度控制需结合细胞类型、培养目的(增殖/分化/产物生产)及培养规模,通过低氧培养箱、微环境调控(如添加氧载体)或动态调节(根据细胞密度调整)实现优化。2.从细胞周期调控角度,分析血清饥饿法同步化细胞的原理及操作要点。答案:细胞周期包括G1、S、G2、M期,血清中含多种生长因子(如PDGF、EGF)可激活细胞周期进程。血清饥饿法通过去除血清,使细胞停滞于G0/G1期,从而实现同步化。原理:①血清缺乏时,生长因子信号通路(如PI3K-Akt、MAPK)被抑制,CyclinD-CDK4/6复合物无法形成,Retinoblastoma蛋白(Rb)保持磷酸化状态,阻止E2F转录因子激活,细胞无法进入S期;②细胞停滞于G0(静止期)或G1早期,去除血清24-48小时后,90%以上细胞可同步于G0/G1期。操作要点:①血清浓度:需完全去除血清(而非低血清),避免残留生长因子刺激;②处理时间:不同细胞周期长度不同(如成纤维细胞约20小时,肿瘤细胞约18小时),饥饿时间需超过1.5个细胞周期(如24-48小时),确保未同步细胞完成周期并停滞;③验证:饥饿后添加含血清培养基,通过流式细胞术检测DNA含量(G0/G1期为2N,S期2N-4N),确认同步化效率(应>85%);④细胞状态:仅适用于对血清敏感的贴壁细胞(如成纤维细胞、上皮细
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