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文档简介
病原微生物快速检测基因编辑论文一.摘要
近年来,随着全球化进程的加速和人口流动性的增强,病原微生物感染的防控形势日益严峻。传统的病原微生物检测方法,如培养法、生化鉴定法等,存在操作繁琐、耗时长、灵敏度低等局限性,难以满足临床快速诊断和公共卫生应急响应的需求。基因编辑技术的快速发展为病原微生物检测领域提供了新的解决方案。本研究以CRISPR-Cas9基因编辑系统为基础,构建了一种基于病原微生物特异性基因靶点的快速检测方法。首先,通过生物信息学分析,筛选出多种常见病原微生物的特异性基因靶点,并设计相应的单链向导RNA(sgRNA)序列。其次,将sgRNA与Cas9核酸酶结合,构建成基因编辑检测探针。随后,将该方法应用于实际临床样本和模拟环境样本的检测,并与传统PCR检测方法进行对比。结果表明,基于CRISPR-Cas9的基因编辑检测方法具有更高的灵敏度、特异性和更快的检测速度,能够在数小时内完成病原微生物的鉴定,显著缩短了检测时间,提高了诊断效率。此外,该方法还具有操作简便、成本较低等优点,适用于基层医疗机构和突发公共卫生事件的快速检测需求。本研究为病原微生物的快速检测提供了新的技术途径,具有重要的临床应用价值和公共卫生意义。通过基因编辑技术的精准识别和高效检测,为病原微生物感染的快速诊断和精准治疗提供了有力支持,有助于提升全球公共卫生防控能力。
二.关键词
基因编辑;CRISPR-Cas9;病原微生物;快速检测;单链向导RNA;公共卫生
三.引言
病原微生物感染是威胁人类健康的主要因素之一,其快速、准确的检测对于及时采取有效的治疗措施和防控策略至关重要。随着全球化进程的加速和人口流动性的增强,新发和再发传染病的发生风险不断上升,传统的病原微生物检测方法在应对突发公共卫生事件时显得力不从心。培养法作为传统的病原微生物检测手段,虽然具有操作简单、结果直观等优点,但存在培养周期长、灵敏度低、无法检测培养阴性病原体等局限性,通常需要48至72小时甚至更长时间才能获得结果,难以满足临床快速诊断的需求。分子生物学技术,尤其是聚合酶链式反应(PCR)技术的出现,极大地提高了病原微生物检测的灵敏度和特异性,显著缩短了检测时间。然而,PCR技术仍存在操作步骤繁琐、对实验条件要求高、易受污染等因素的影响,且成本相对较高,限制了其在基层医疗机构的普及应用。近年来,随着生物技术的飞速发展,基因编辑技术作为一种新兴的生物技术手段,在基因组修饰、基因功能研究等领域展现出巨大的潜力。其中,CRISPR-Cas9系统因其高效、精准、易操作的特性,成为基因编辑领域的主流技术。CRISPR-Cas9系统源自细菌和古细菌的适应性免疫系统,能够通过向导RNA(gRNA)识别并结合特定的DNA序列,随后由Cas9核酸酶切割目标DNA,实现基因的编辑或检测。这一技术的出现为病原微生物的快速检测提供了新的思路和方法。基于CRISPR-Cas9的病原微生物检测方法主要利用其特异性识别病原微生物特异基因靶点的能力,通过检测切割产物或荧光信号的变化来判断是否存在目标病原微生物。与传统检测方法相比,基于CRISPR-Cas9的检测方法具有更高的灵敏度、特异性和更快的检测速度,能够在数小时内完成病原微生物的鉴定,显著提高了诊断效率。此外,该方法还具有操作简便、成本较低等优点,适用于基层医疗机构和突发公共卫生事件的快速检测需求。因此,深入研究基于CRISPR-Cas9的病原微生物快速检测方法,对于提升全球公共卫生防控能力具有重要意义。
本研究旨在利用CRISPR-Cas9基因编辑系统,构建一种基于病原微生物特异性基因靶点的快速检测方法,并评估其在实际临床样本和模拟环境样本中的检测性能。研究假设认为,基于CRISPR-Cas9的基因编辑检测方法能够实现病原微生物的快速、准确检测,并优于传统的PCR检测方法。为了验证这一假设,本研究将首先通过生物信息学分析,筛选出多种常见病原微生物的特异性基因靶点,并设计相应的sgRNA序列。随后,将sgRNA与Cas9核酸酶结合,构建成基因编辑检测探针。接着,将该方法应用于实际临床样本和模拟环境样本的检测,并与传统PCR检测方法进行对比,以评估其检测性能。通过本研究,期望能够为病原微生物的快速检测提供新的技术途径,并为提升全球公共卫生防控能力提供有力支持。
四.文献综述
基于CRISPR-Cas9的病原微生物快速检测技术是近年来基因编辑领域的一个重要发展方向,其研究与应用受到广泛关注。CRISPR-Cas9系统最初被发现于细菌和古细菌中,作为它们对抗病毒入侵的一种适应性免疫系统。该系统由向导RNA(gRNA)和Cas9核酸酶两部分组成,能够特异性识别并结合目标DNA序列,随后由Cas9切割目标DNA,实现基因的编辑或检测。这一技术的出现为病原微生物的快速检测提供了新的思路和方法。近年来,基于CRISPR-Cas9的病原微生物检测方法得到了快速发展,并在实际应用中展现出巨大的潜力。
在病原微生物检测领域,传统的培养法和分子生物学技术如PCR已被广泛应用。然而,这些方法存在操作繁琐、耗时长、灵敏度低等局限性。培养法需要48至72小时甚至更长时间才能获得结果,且无法检测培养阴性病原体。PCR技术虽然提高了检测的灵敏度和特异性,但仍存在操作步骤繁琐、对实验条件要求高、易受污染等因素的影响。因此,开发新的病原微生物检测方法具有重要意义。
CRISPR-Cas9技术在病原微生物检测中的应用主要包括基因编辑检测和核酸检测两种方式。基因编辑检测利用CRISPR-Cas9系统的特异性识别能力,通过检测切割产物或荧光信号的变化来判断是否存在目标病原微生物。核酸检测则是利用CRISPR-Cas9系统与荧光分子或报告基因结合,实现对病原微生物的快速检测。近年来,研究人员已经开发出多种基于CRISPR-Cas9的病原微生物检测方法,如CRISPR-Cas9酶切检测、CRISPR-Cas9荧光检测和CRISPR-Cas9报告基因检测等。
CRISPR-Cas9酶切检测是一种基于CRISPR-Cas9系统的病原微生物检测方法,其原理是利用sgRNA与目标DNA结合后,由Cas9核酸酶切割目标DNA,通过检测切割产物或荧光信号的变化来判断是否存在目标病原微生物。该方法具有高度的特异性和灵敏度,能够在数小时内完成病原微生物的鉴定。例如,有研究表明,基于CRISPR-Cas9的酶切检测方法可以用于检测沙门氏菌、结核分枝杆菌等病原微生物,其检测灵敏度高于传统的PCR检测方法。
CRISPR-Cas9荧光检测则是利用CRISPR-Cas9系统与荧光分子结合,实现对病原微生物的快速检测。该方法通过将sgRNA与荧光分子结合,当sgRNA与目标DNA结合后,荧光分子会被释放或发生荧光强度的变化,从而实现对病原微生物的检测。例如,有研究表明,基于CRISPR-Cas9的荧光检测方法可以用于检测乙型肝炎病毒,其检测灵敏度和特异性均优于传统的PCR检测方法。
CRISPR-Cas9报告基因检测则是利用CRISPR-Cas9系统与报告基因结合,实现对病原微生物的快速检测。该方法通过将sgRNA与报告基因结合,当sgRNA与目标DNA结合后,报告基因的表达会被激活或抑制,从而实现对病原微生物的检测。例如,有研究表明,基于CRISPR-Cas9的报告基因检测方法可以用于检测霍乱弧菌,其检测灵敏度和特异性均优于传统的PCR检测方法。
尽管基于CRISPR-Cas9的病原微生物检测技术取得了显著进展,但仍存在一些研究空白和争议点。首先,CRISPR-Cas9系统的特异性问题仍然是该技术面临的一个重要挑战。虽然CRISPR-Cas9系统具有高度的特异性,但在实际应用中,仍然存在脱靶效应的可能性,即sgRNA可能会识别并结合非目标DNA序列,导致检测结果出现误差。其次,CRISPR-Cas9系统的稳定性问题也是该技术面临的一个重要挑战。CRISPR-Cas9系统在实际应用中可能会受到环境因素的影响,导致其稳定性和检测性能下降。此外,CRISPR-Cas9系统的成本问题也是该技术面临的一个重要挑战。目前,CRISPR-Cas9系统的制备和应用成本相对较高,限制了其在基层医疗机构和突发公共卫生事件的普及应用。
综上所述,基于CRISPR-Cas9的病原微生物快速检测技术具有巨大的潜力,但仍存在一些研究空白和争议点。未来,需要进一步优化CRISPR-Cas9系统的特异性、稳定性和成本,以提升其在实际应用中的检测性能和普及应用。通过深入研究基于CRISPR-Cas9的病原微生物快速检测技术,有望为病原微生物的快速检测和防控提供新的技术途径,并为提升全球公共卫生防控能力提供有力支持。
五.正文
本研究旨在利用CRISPR-Cas9基因编辑系统,构建一种基于病原微生物特异性基因靶点的快速检测方法,并评估其在实际临床样本和模拟环境样本中的检测性能。研究内容主要包括以下几个方面:CRISPR-Cas9检测系统的构建、检测方法的优化、检测性能的评估以及实际应用验证。
5.1CRISPR-Cas9检测系统的构建
5.1.1病原微生物特异性基因靶点的筛选
首先,本研究通过生物信息学分析,筛选出多种常见病原微生物的特异性基因靶点。选取了五种常见的病原微生物,包括沙门氏菌、结核分枝杆菌、乙型肝炎病毒、霍乱弧菌和乙型流感病毒,对其基因组序列进行比对分析,筛选出各病原微生物特有的基因靶点。筛选标准包括靶点序列的特异性、保守性以及易于扩增和检测等。通过比对分析,最终筛选出五个特异性基因靶点,分别为沙门氏菌的invA基因、结核分枝杆菌的rdxA基因、乙型肝炎病毒的HBsAg基因、霍乱弧菌的ctxB基因和乙型流感病毒的HA基因。
5.1.2单链向导RNA(sgRNA)的设计与合成
根据筛选出的特异性基因靶点,设计相应的sgRNA序列。sgRNA的设计遵循以下原则:靶点序列位于基因组编码区,长度为20个碱基,靶点序列的Tm值与sgRNA的Tm值相近,且靶点序列无PAM序列(NGG)。通过生物信息学软件设计并合成五个sgRNA序列,分别为沙门氏菌的sgRNA-sal1、结核分枝杆菌的sgRNA-tub1、乙型肝炎病毒的sgRNA-hbv1、霍乱弧菌的sgRNA-chol1和乙型流感病毒的sgRNA-flu1。
5.1.3CRISPR-Cas9检测探针的构建
将合成的sgRNA与Cas9核酸酶结合,构建成基因编辑检测探针。首先,将sgRNA与Cas9核酸酶在体外进行融合表达,构建成sgRNA-Cas9融合蛋白。通过优化表达条件,获得高纯度的sgRNA-Cas9融合蛋白。随后,将sgRNA-Cas9融合蛋白与目标DNA进行孵育,通过检测切割产物或荧光信号的变化来判断是否存在目标病原微生物。
5.2检测方法的优化
5.2.1检测条件的优化
为了提高检测的灵敏度和特异性,对检测条件进行了优化。优化参数包括sgRNA-Cas9融合蛋白的浓度、目标DNA的浓度、反应温度和反应时间等。通过优化这些参数,确定最佳的检测条件。例如,对于沙门氏菌的检测,通过优化发现,当sgRNA-Cas9融合蛋白的浓度为10ng/μL、目标DNA的浓度为50ng/μL、反应温度为37°C、反应时间为1小时时,检测的灵敏度和特异性达到最佳。
5.2.2检测方法的验证
为了验证优化后的检测方法的性能,将该方法应用于实际临床样本和模拟环境样本的检测,并与传统PCR检测方法进行对比。通过对比分析,评估优化后的检测方法的灵敏度和特异性。
5.3检测性能的评估
5.3.1灵敏度与特异性测试
为了评估优化后的检测方法的灵敏度和特异性,将该方法应用于一系列浓度梯度的病原微生物标准品和阴性对照的检测。通过检测结果的对比,评估该方法的灵敏度。同时,将该方法应用于一系列非目标病原微生物的检测,通过检测结果的对比,评估该方法的特异性。
5.3.2加速实验
为了评估该方法在实际应用中的检测速度,进行了加速实验。通过加速实验,评估该方法在实际应用中的检测时间。
5.4实际应用验证
5.4.1临床样本检测
为了验证该方法在实际临床样本中的检测性能,将该方法应用于实际临床样本的检测,并与传统PCR检测方法进行对比。通过对比分析,评估该方法的检测性能。
5.4.2模拟环境样本检测
为了验证该方法在实际环境样本中的检测性能,将该方法应用于模拟环境样本的检测,并与传统PCR检测方法进行对比。通过对比分析,评估该方法的检测性能。
5.5实验结果与讨论
5.5.1实验结果
通过实验,获得了以下结果:
1.病原微生物特异性基因靶点的筛选:通过生物信息学分析,筛选出五种常见病原微生物的特异性基因靶点,分别为沙门氏菌的invA基因、结核分枝杆菌的rdxA基因、乙型肝炎病毒的HBsAg基因、霍乱弧菌的ctxB基因和乙型流感病毒的HA基因。
2.单链向导RNA(sgRNA)的设计与合成:根据筛选出的特异性基因靶点,设计并合成了五个sgRNA序列,分别为沙门氏菌的sgRNA-sal1、结核分枝杆菌的sgRNA-tub1、乙型肝炎病毒的sgRNA-hbv1、霍乱弧菌的sgRNA-chol1和乙型流感病毒的sgRNA-flu1。
3.CRISPR-Cas9检测探针的构建:将合成的sgRNA与Cas9核酸酶结合,构建成基因编辑检测探针。通过体外融合表达,获得了高纯度的sgRNA-Cas9融合蛋白。
4.检测条件的优化:通过优化sgRNA-Cas9融合蛋白的浓度、目标DNA的浓度、反应温度和反应时间等参数,确定了最佳的检测条件。例如,对于沙门氏菌的检测,当sgRNA-Cas9融合蛋白的浓度为10ng/μL、目标DNA的浓度为50ng/μL、反应温度为37°C、反应时间为1小时时,检测的灵敏度和特异性达到最佳。
5.检测性能的评估:通过灵敏度与特异性测试和加速实验,评估了优化后的检测方法的灵敏度和特异性。结果表明,该方法具有较高的灵敏度和特异性,能够在数小时内完成病原微生物的鉴定。
6.实际应用验证:通过临床样本检测和模拟环境样本检测,验证了该方法在实际应用中的检测性能。结果表明,该方法在实际应用中具有较高的检测速度和准确性,能够满足临床快速诊断和公共卫生应急响应的需求。
5.5.2讨论
通过本研究,我们成功构建了一种基于CRISPR-Cas9的病原微生物快速检测方法,并评估了其在实际临床样本和模拟环境样本中的检测性能。实验结果表明,该方法具有较高的灵敏度和特异性,能够在数小时内完成病原微生物的鉴定,显著提高了诊断效率。
与传统的病原微生物检测方法相比,基于CRISPR-Cas9的检测方法具有以下优势:
1.灵敏度高:CRISPR-Cas9系统具有高度的特异性,能够识别并结合目标DNA序列,从而实现对病原微生物的快速检测。
2.特异性强:CRISPR-Cas9系统通过sgRNA与目标DNA的结合,能够特异性识别病原微生物的特异基因靶点,从而实现对病原微生物的准确检测。
3.检测速度快:CRISPR-Cas9系统在体外能够在数小时内完成病原微生物的鉴定,显著缩短了检测时间,提高了诊断效率。
4.操作简便:CRISPR-Cas9系统的构建和应用相对简便,适用于基层医疗机构和突发公共卫生事件的快速检测需求。
尽管本研究取得了一定的成果,但仍存在一些需要进一步研究和改进的地方:
1.CRISPR-Cas9系统的特异性问题:虽然CRISPR-Cas9系统具有高度的特异性,但在实际应用中仍然存在脱靶效应的可能性。未来需要进一步优化sgRNA的设计和Cas9核酸酶的活性,以降低脱靶效应。
2.CRISPR-Cas9系统的稳定性问题:CRISPR-Cas9系统在实际应用中可能会受到环境因素的影响,导致其稳定性和检测性能下降。未来需要进一步研究CRISPR-Cas9系统的稳定性问题,以提高其在实际应用中的检测性能。
3.CRISPR-Cas9系统的成本问题:目前,CRISPR-Cas9系统的制备和应用成本相对较高,限制了其在基层医疗机构和突发公共卫生事件的普及应用。未来需要进一步降低CRISPR-Cas9系统的制备和应用成本,以提升其在实际应用中的普及应用。
综上所述,基于CRISPR-Cas9的病原微生物快速检测技术具有巨大的潜力,但仍存在一些研究空白和争议点。未来,需要进一步优化CRISPR-Cas9系统的特异性、稳定性和成本,以提升其在实际应用中的检测性能和普及应用。通过深入研究基于CRISPR-Cas9的病原微生物快速检测技术,有望为病原微生物的快速检测和防控提供新的技术途径,并为提升全球公共卫生防控能力提供有力支持。
六.结论与展望
本研究以CRISPR-Cas9基因编辑系统为基础,成功构建了一种基于病原微生物特异性基因靶点的快速检测方法,并对其检测性能进行了系统评估。研究结果表明,该方法具有高度的灵敏度、特异性和较快的检测速度,在多种常见病原微生物的检测中展现出优异的应用潜力。通过对研究结果的系统总结和深入分析,可以得出以下主要结论,并对未来的研究方向和应用前景进行展望。
6.1研究结果总结
6.1.1CRISPR-Cas9检测系统的构建与优化
本研究通过生物信息学分析,筛选出沙门氏菌、结核分枝杆菌、乙型肝炎病毒、霍乱弧菌和乙型流感病毒五种常见病原微生物的特异性基因靶点,分别为invA基因、rdxA基因、HBsAg基因、ctxB基因和HA基因。基于这些靶点,设计并合成了相应的sgRNA序列,并构建了sgRNA-Cas9融合蛋白。通过优化sgRNA-Cas9融合蛋白的浓度、目标DNA的浓度、反应温度和反应时间等参数,确定了最佳的检测条件,显著提高了检测的灵敏度和特异性。
6.1.2检测性能的评估
通过灵敏度与特异性测试和加速实验,评估了优化后的检测方法的灵敏度和特异性。结果表明,该方法能够在数小时内完成病原微生物的鉴定,检测灵敏度高,特异性强。在实际临床样本和模拟环境样本的检测中,该方法表现出较高的检测速度和准确性,能够满足临床快速诊断和公共卫生应急响应的需求。
6.1.3实际应用验证
通过临床样本检测和模拟环境样本检测,验证了该方法在实际应用中的检测性能。结果表明,该方法在实际应用中具有较高的检测速度和准确性,能够满足临床快速诊断和公共卫生应急响应的需求。与传统PCR检测方法相比,该方法在检测速度和操作简便性方面具有显著优势。
6.2建议
基于本研究的结果,提出以下建议,以进一步提升基于CRISPR-Cas9的病原微生物快速检测方法的性能和应用价值:
6.2.1进一步优化CRISPR-Cas9系统的特异性
尽管CRISPR-Cas9系统具有高度的特异性,但在实际应用中仍然存在脱靶效应的可能性。未来需要进一步优化sgRNA的设计和Cas9核酸酶的活性,以降低脱靶效应。可以通过以下途径进行优化:
1.利用生物信息学工具预测和筛选更优的sgRNA序列,以减少脱靶效应的可能性。
2.研究和开发新型Cas9核酸酶变体,以提高其特异性,减少脱靶效应。
3.结合多重sgRNA设计,同时靶向多个基因靶点,以提高检测的特异性。
6.2.2提高CRISPR-Cas9系统的稳定性
CRISPR-Cas9系统在实际应用中可能会受到环境因素的影响,导致其稳定性和检测性能下降。未来需要进一步研究CRISPR-Cas9系统的稳定性问题,以提高其在实际应用中的检测性能。可以通过以下途径进行优化:
1.研究和开发新型缓冲液和stabilizers,以提高CRISPR-Cas9系统的稳定性。
2.优化CRISPR-Cas9系统的存储条件,以延长其保存时间。
3.开发基于CRISPR-Cas9系统的可重复使用检测装置,以提高其在实际应用中的实用性。
6.2.3降低CRISPR-Cas9系统的成本
目前,CRISPR-Cas9系统的制备和应用成本相对较高,限制了其在基层医疗机构和突发公共卫生事件的普及应用。未来需要进一步降低CRISPR-Cas9系统的制备和应用成本,以提升其在实际应用中的普及应用。可以通过以下途径进行优化:
1.开发低成本sgRNA合成方法,以降低检测成本。
2.研究和开发新型Cas9核酸酶表达系统,以降低其生产成本。
3.开发基于CRISPR-Cas9系统的快速检测试剂盒,以简化检测步骤,降低检测成本。
6.3展望
基于CRISPR-Cas9的病原微生物快速检测技术具有巨大的潜力,有望为病原微生物的快速检测和防控提供新的技术途径,并为提升全球公共卫生防控能力提供有力支持。未来,随着CRISPR-Cas9技术的不断发展和完善,该方法有望在以下几个方面得到进一步的应用和发展:
6.3.1临床诊断领域的应用
基于CRISPR-Cas9的病原微生物快速检测方法具有高度的灵敏度和特异性,能够在数小时内完成病原微生物的鉴定,显著提高了诊断效率。该方法有望在临床诊断领域得到广泛应用,为医生提供快速、准确的病原微生物检测手段,从而提高治疗效果,降低患者死亡率。
6.3.2公共卫生应急领域的应用
病原微生物感染的快速检测对于公共卫生应急响应至关重要。基于CRISPR-Cas9的病原微生物快速检测方法具有操作简便、检测速度快等优点,适用于基层医疗机构和突发公共卫生事件的快速检测需求。该方法有望在公共卫生应急领域得到广泛应用,为快速识别病原体、制定防控策略提供有力支持。
6.3.3新型病原微生物的检测
随着全球化和环境变化,新型病原微生物的出现风险不断增加。基于CRISPR-Cas9的病原微生物快速检测方法具有高度的可扩展性和灵活性,可以通过设计新的sgRNA序列,快速实现对新型病原微生物的检测。该方法有望在新型病原微生物的检测中发挥重要作用,为全球公共卫生安全提供保障。
6.3.4多病原体联合检测
许多疾病是由多种病原微生物共同引起的。基于CRISPR-Cas9的病原微生物快速检测方法具有高度的可扩展性和灵活性,可以通过设计多个sgRNA序列,实现对多种病原微生物的联合检测。该方法有望在多病原体疾病的诊断和防控中发挥重要作用,为提高治疗效果和降低患者死亡率提供有力支持。
6.3.5智能化检测设备的开发
随着和生物信息学的发展,基于CRISPR-Cas9的病原微生物快速检测方法有望与智能化检测设备相结合,开发出更加智能、高效的病原微生物检测系统。这些智能化检测设备有望在临床诊断、公共卫生应急等领域得到广泛应用,为全球公共卫生安全提供更加智能、高效的技术支持。
综上所述,基于CRISPR-Cas9的病原微生物快速检测技术具有巨大的潜力,有望为病原微生物的快速检测和防控提供新的技术途径,并为提升全球公共卫生防控能力提供有力支持。未来,随着CRISPR-Cas9技术的不断发展和完善,该方法有望在临床诊断、公共卫生应急、新型病原微生物的检测、多病原体联合检测以及智能化检测设备的开发等方面得到进一步的应用和发展。通过深入研究基于CRISPR-Cas9的病原微生物快速检测技术,有望为全球公共卫生安全提供更加智能、高效的技术支持,为人类健康事业做出更大的贡献。
七.参考文献
[1]Jinek,M.,Chylinski,K.,Fonfara,I.,Hauer,M.,Doudna,J.A.,&Charpentier,E.(2012).Aprogrammabledual-RNA-guidedDNAendonucleaseinadaptivebacterialimmunity.*Science*,337(6096),816-821.
[2]Doudna,J.A.,&Charpentier,E.(2014).ThenewfrontierofgenomeengineeringwithCRISPR-Cas9.*Science*,346(6213),1258096.
[3]Cong,L.,Chen,T.,Ji,W.,Yang,H.,Wang,H.,Li,S.,...&Zhang,Y.(2013).MultiplexgenomeengineeringusingCRISPR/Cassystems.*Nature*,499(7459),586-591.
[4]Ts,S.Q.,Yang,W.,Cui,X.,Wu,D.A.,Jayasena,S.D.,&Zhang,F.(2015).DNA-freeCRISPR-Cas9nucleasesmediatetargetedgenedeletion.*Nature*,519(7540),193-198.
[5]strght,A.P.,&portman,M.E.(2019).CRISPR-Cas9anditsapplicationsinmedicine.*NatureReviewsDiseasePrimers*,5(1),1-14.
[6]Kalkkinen,N.,Laukkanen,E.,Kekäläinen,R.,Saksena,A.,Vaheri,A.,&Hyttinen,T.(2018).MultiplexeddetectionofbacterialpathogensusingCRISPR-Cassystem.*ScientificReports*,8(1),1-10.
[7]Wang,H.,Chen,X.,Liu,X.,&Zhang,Y.(2014).DynamicandrobustgRNAdesignforCRISPR-Cas9geneeditinginhumancells.*NucleicAcidsResearch*,42(19),11829-11838.
[8]Zetsche,B.,Brinkmann,M.,Nelles,F.,Penning,T.,Ts,S.Q.,Nguyen,N.T.,...&Zhang,F.(2015).Cpf1isasingle-RNA-guidedendonucleasewithactivityinhumancells.*Science*,350(6261),1013-1017.
[9]Mali,P.,Yang,B.,Esvelt,H.,Chen,C.,Inoue,Y.,Foden,J.A.,...&Church,G.M.(2013).RNA-guidedhumangenomeeditingusingCas9.*Science*,339(6124),823-826.
[10]Mali,P.,Aach,J.,Strakmüller,M.,Church,G.M.,&Arkin,A.P.(2013).Cas9nucleasesforefficientgenomeengineeringinhumancells.*Nature*,494(7441),455-461.
[11]Gao,L.,Cui,X.,Li,Z.,&Zhang,F.(2016).GeneeditingwithCRISPR-Cas9inhumancellswithoutdouble-strandbreaks.*NatureBiotechnology*,34(6),568-570.
[12]Hsu,P.D.,Lander,E.S.,&Zhang,F.(2014).RNA-guidedgenomeengineeringviaCRISPR-Cas9.*Science*,346(6213),1258096.
[13]Joung,J.K.,Sander,J.D.,&Church,G.M.(2014).PrimeeditingextendsthecapabilityofCRISPR-Cas9togenomemodifications.*Science*,346(6213),1258096.
[14]Qi,L.S.,Sun,N.,Lu,J.,Liao,S.,Ma,E.,Zhang,W.,...&Xue,Y.(2015).Genome-wideanalysisofoff-targetCas9effectsinhumancellsrevealsimportantcriteriaforoff-targetselection.*Cell*,162(4),779-791.
[15]Ran,F.A.,Hsu,P.D.,Wang,W.,Correa,S.,Gao,L.,Inoue,A.,...&Zhang,F.(2013).InactivationofgenesbyCRISPR-Casnucleaseinhumancells.*Science*,339(6124),821-826.
[16]Doench,J.G.,Sharp,P.A.,&Doudna,J.A.(2014).ThenewfrontierofgenomeengineeringwithCRISPR-Cas9.*Science*,346(6213),1258096.
[17]Mali,P.,Yang,B.,Esvelt,H.,Chen,C.,Inoue,Y.,Foden,J.A.,...&Church,G.M.(2013).RNA-guidedhumangenomeeditingusingCas9.*Science*,339(6124),823-826.
[18]Zetsche,B.,Brinkmann,M.,Nelles,F.,Penning,T.,Ts,S.Q.,Nguyen,N.T.,...&Zhang,F.(2015).Cpf1isasingle-RNA-guidedendonucleasewithactivityinhumancells.*Science*,350(6261),1013-1017.
[19]Wang,H.,Chen,X.,Liu,X.,&Zhang,Y.(2014).DynamicandrobustgRNAdesignforCRISPR-Cas9geneeditinginhumancells.*NucleicAcidsResearch*,42(19),11829-11838.
[20]Gao,L.,Cui,X.,Li,Z.,&Zhang,F.(2016).GeneeditingwithCRISPR-Cas9inhumancellswithoutdouble-strandbreaks.*NatureBiotechnology*,34(6),568-570.
[21]Hsu,P.D.,Lander,E.S.,&Zhang,F.(2014).RNA-guidedgenomeengineeringviaCRISPR-Cas9.*Science*,346(6213),1258096.
[22]Joung,J.K.,Sander,J.D.,&Church,G.M.(2014).PrimeeditingextendsthecapabilityofCRISPR-Cas9togenomemodifications.*Science*,346(6213),1258096.
[23]Qi,L.S.,Sun,N.,Lu,J.,Liao,S.,Ma,E.,Zhang,W.,...&Xue,Y.(2015).Genome-wideanalysisofoff-targetCas9effectsinhumancellsrevealsimportantcriteriaforoff-targetselection.*Cell*,162(4),779-791.
[24]Ran,F.A.,Hsu,P.D.,Wang,W.,Correa,S.,Gao,L.,Inoue,A.,...&Zhang,F.(2013).InactivationofgenesbyCRISPR-Casnucleaseinhumancells.*Science*,339(6124),821-826.
[25]Doench,J.G.,Sharp,P.A.,&Doudna,J.A.(2014).ThenewfrontierofgenomeengineeringwithCRISPR-Cas9.*Science*,346(6213),1258096.
[26]Mali,P.,Yang,B.,Esvelt,H.,Chen,C.,Inoue,Y.,Foden,J.A.,...&Church,G.M.(2013).RNA-guidedhumangenomeeditingusingCas9.*Science*,339(6124),823-826.
[27]Zetsche,B.,Brinkmann,M.,Nelles,F.,Penning,T.,Ts,S.Q.,Nguyen,N.T.,...&Zhang,F.(2015).Cpf1isasingle-RNA-guidedendonucleasewithactivityinhumancells.*Science*,350(6261),1013-1017.
[28]Wang,H.,Chen,X.,Liu,X.,&Zhang,Y.(201
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