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文档简介

新兴环境污染物与多囊卵巢综合征的环境病因学研究新进展【摘要】多囊卵巢综合征(polycysticovarysyndrome,PCOS)是一种常见的生殖内分泌疾病,影响全球育龄期女性,其病因与机制尚未完全阐明。近年来越来越多的证据聚焦于环境污染物暴露对PCOS的影响。传统的内分泌干扰化学物质与包括PCOS在内的多种疾病之间关联已初步明确,因此其使用受限;而新兴环境污染物正逐步取代传统污染物,应用范围扩大,成为新风险焦点。因此,本文对新兴污染物在PCOS发生发展中的潜在作用进行综述,重点围绕各类新兴污染物与PCOS关联的证据,深入探讨了其独特的毒性机制,并指出当前研究的空白及未来的关键研究方向。【关键词】多囊卵巢综合征;环境污染物;新兴污染物;生殖健康;病因学多囊卵巢综合征(polycysticovarysyndrome,PCOS)是育龄期女性最常见的生殖内分泌疾病,影响4%~20%的育龄期女性[1]。尽管诊断标准不一,PCOS的特征通常包括高雄激素血症、排卵障碍和多囊卵巢样改变,并涉及各种代谢紊乱[2]。PCOS的确切病因尚不清楚,目前认为遗传因素、表观遗传、发育和环境因素的相互作用驱动PCOS的各项病理生理学改变[3-5]。环境毒素如内分泌干扰化学物质(endocrine-disruptingchemicals,EDCs),包括双酚A、全氟和多氟烷基物质(perfluoroalkylandpolyfluoroalkylsubstances,PFAS)、邻苯二甲酸二(2-乙基己)酯(Bis(2-ethylhexyl)phthalate,DEHP)等,已被证实可在体内蓄积并参与PCOS的发生与进展[6]。然而,因其明确的生殖与内分泌毒性,全球已逐步建立法律法规限制其生产和使用[7],这促使工业界采取替代策略,转而生产一系列在化学结构上相似的替代物,比如短链PFAS、PFAS替代品、双酚A的类似物。另一方面,工业化进程不断产生并释放各类新兴污染物[8],比如微纳米塑料(micro-nanoplastics,MNPs)等;同时,药品与个人护理产品(pharmaceuticalandpersonalcareproducts,PPCPs)的使用不断增加,其中包含的化学物质被认为是新出现的问题污染物[9]。这些新兴污染物在环境中的检出日益增多但尚未被纳入常规监管体系,它们可以被概括为4类:①传统污染物的“替代物”,如短链PFAS、PFAS替代品、双酚A类似物及新型有机磷阻燃剂;②新物理形态污染物,如MNPs;③新发现的转化产物,如N(-1,3-二甲基丁基)-N'-苯基对苯二胺-醌(6-phenylenediaminequinone,6PPDQ);④新关注的消费品相关污染物,如PPCPs等。本文将从各类新兴污染物与PCOS关联的研究证据出发,建立新兴污染物与PCOS之间的潜在联系,深入探讨其可能区别于传统污染物的独特毒性机制,并指出当前研究的局限性及未来关键研究方向。一、各类新兴污染物与PCOS的关联传统EDCs的管控催生了结构相似但毒理学特征未明的替代品,而工业化进程则不断释放出前所未有的新型化学物质,这两者共同构成了当前“新兴环境污染物”的主体,其对PCOS的潜在影响正成为前沿课题。本节将分述几类新兴污染物与PCOS关联的前沿证据。1.传统污染物的“替代物”与PCOS的关联:PFAS、双酚A、溴代阻燃剂等传统污染物因其毒性证据日益确凿而受到法律法规限制管控,因此其替代物成为一类重要的新兴污染物,其与PCOS的关联正被初步研究。PFAS是一类合成脂肪族碳氢化合物,在环境与人体中难以降解,属于典型的持久性有机污染物(persistentorganicpollutants,POPs)。传统长链PFAS在人体内半衰期较长且具有生物蓄积潜力与毒性[10],因此欧洲和北美等地已对长链PFAS实施限制[11-12],促使PFAS的生产转向短链同类物以及全氟聚醚羧酸[如六氟环氧丙烷二聚体羧酸(HFPODA,商品名GenX)]及磺酸[6∶2氯化多氟醚磺酸(6∶2ClPFESA,商品名F-53B)]等替代品。既往研究多关注传统PFAS的内分泌干扰特性及生殖发育毒性,但对短链PFAS及其替代品的认知仍有限且不一致。Zhan等[13]通过一项大样本、多中心病例对照研究,首次系统评估了育龄期女性血浆中PFAS混合物与PCOS的关联,涵盖传统PFAS、短链同类物、新兴替代品及支链异构体,研究发现新兴PFAS替代品(6∶2Cl-PFESA、HFPO-DA)与PCOS显著相关,且超重/肥胖可能对生殖毒性起放大作用。然而,Pattarawat等[14]的一项研究采用体外三维小鼠卵泡培养系统及体内青春期前小鼠超排卵模型,比较了传统长链PFAS(如全氟壬酸)与短链同类物(如全氟丁烷磺酸盐)及其新兴替代物(如GenX)对卵巢功能的毒性差异。体外实验中,PFAS经培养基暴露于卵泡生长期(第2~6天,1~250μmol/L)或排卵期(第6~7天);体内实验采用腹腔注射方式连续暴露5d(1、5、25mg/kg),研究发现长链PFAS可在小鼠卵巢中蓄积,并干扰卵泡生长、排卵和性激素分泌;而短链PFAS和新兴替代物在实验条件下未显示显著卵巢毒性。但本研究仅模拟短期急性暴露,未能反映长期低剂量暴露的潜在效应,而随着PFAS替代品使用量增加,其环境持久性与高污染水平可能导致人类长期慢性接触[15],且已有研究显示短链PFAS与血清白蛋白具有高亲和力[16],这可能使其在血供丰富的组织(如窦卵泡)中分布浓度升高,故需慎重解读短链PFAS对雌性生殖系统的安全性。双酚A是最常见的EDCs之一,具有内分泌干扰效应并可能诱发多种疾病,因此加拿大、欧盟、美国等多个国家或地区已限制其使用,这促使制造商增加了与其化学性质相似的替代物使用,即双酚A类似物,包括双酚AF、双酚E、双酚B、双酚S等[17]。随着双酚A类似物的替代使用增加,其在环境和人体样本中的检出率逐年上升[18]。研究显示,双酚A类似物同样具有药理活性,可导致生殖毒性和PCOS等性激素依赖性内分泌疾病的产生[19-21]。Jurewicz等[19]首次系统评估了育龄期女性血清中两种双酚A类似物双酚S、双酚F与PCOS的关联,发现PCOS患者血清双酚S浓度显著高于对照组,提示双酚S暴露与PCOS风险相关。Zhan等[20]进一步在育龄期女性尿液中检测双酚A及其6种类似物浓度,发现7种双酚类物质的混合暴露与PCOS的发病风险呈正相关,其中双酚A、双酚S、双酚Z和双酚AF起主导作用,与PCOS之间存在剂量-反应关系,且超重或肥胖会增加相关性。Majewska等[21]的研究除了发现育龄期女性血清双酚M、双酚P与PCOS诊断之间可能存在潜在关联外,还评估了双酚A类似物与代谢指标之间的关联,发现双酚BP与总胆固醇、双酚E与睾酮、双酚C与高密度脂蛋白胆固醇呈负相关,双酚P与甘油三酯呈正相关,提示这些双酚A类似物可能通过干扰脂质和激素代谢参与PCOS相关代谢综合征表型的形成。除PFAS与双酚A外,传统溴代阻燃剂作为典型POPs,也逐步被新型有机磷阻燃剂所取代。广泛使用的磷酸三(1,3-二氯丙基)酯[Tri(1,3-dichloropropyl)phosphate,TDCPP]是一种含卤有机磷阻燃剂的新兴环境污染物[22]。在动物实验中,将发育期雌性斑马鱼(胚胎期至性成熟,6个月)慢性暴露于TDCPP(20~100μg/L)可升高血浆雌二醇和睾酮水平,并诱导卵巢组织学改变(成熟卵母细胞和闭锁卵母细胞增加、初级卵母细胞减少和卵母细胞成熟加速),提示排卵障碍及PCOS样表型[23]。在MVLN细胞系(一种雌激素响应报告的乳腺上皮细胞系)中的实验显示,TDCPP在10mg/L及以上浓度即可浓度依赖性地拮抗雌二醇(100nmol/L)与雌激素受体的结合,该效应在100mg/L时最为显著,提示其体外抗雌激素活性[24]。2.MNPs与PCOS的关联:随着塑料制品的生产与使用规模不断扩大,其降解产物在环境中的分布日益增多,其中尺寸介于1μm~5mm的颗粒称为微塑料(microplastics,MPs),直径小于1μm的称为纳米塑料(nanoplastics,NPs),合称MNPs。MNPs在环境中几乎无处不在,且人类不可避免地通过食物、饮水、呼吸和皮肤接触等各种方式摄入MNPs[25],因此评估其健康风险至关重要。大量实验研究表明,MNPs暴露可诱导氧化应激和炎症反应[26],导致肺屏障受损[27-28]、肝脏纤维化[29]、肾功能损伤[30]、肠道菌群失调[31]、内分泌干扰及生殖健康受损[32]。Adhikari等[33]以成年雌性斑马鱼(3月龄)为模型,每天给予相当于人类暴露剂量(40.1μg/L)的聚苯乙烯微塑料(polystyrenemicroplastics,PS-MPs,100nm)进行水体暴露后,发现21d短期暴露即可诱导典型PCOS表型:体质量增加、性腺指数升高、黄体生成素/卵泡刺激素(luteinizinghormone/follicle-stimulatinghormone,LH/FSH)比值上升、雌二醇水平降低及脑和卵巢中睾酮水平上升;卵巢组织学显示卵泡发育停滞(Ⅰ~Ⅱ期卵母细胞比例增加,成熟卵母细胞减少)伴囊性变;3个月慢性暴露进一步导致肠道和卵巢脂质沉积、胰岛素抵抗和卵巢纤维化(卵巢组织胶原沉积和促纤维化生物标志物基因上调)。这些研究表明,通过饮用水摄入的MNPs具有引发PCOS并促进其进展为卵巢纤维化的毒性效应。Zheng等[34]的研究同样以成年雌性斑马鱼(3月龄)为模型,采用环境相关浓度(0.5mg/L)的PS-NPs进行30d水体暴露,进一步表明MNPs的毒性效应具有尺寸依赖性:500nm的PS-NPs毒性最强,其次为200nm和80nm。500nmPS-NPs暴露可导致卵母细胞发育异常和坏死、扰乱卵巢脂质代谢,并诱导类PCOS病变。鉴于MNPs在环境中并非孤立存在,Xu等[35]采用青春期雌性SD大鼠(5周龄)模型,通过每天灌胃方式给予PS-MPs,5mg/kg与增塑剂DEHP0.3或3mg/kg单独或联合暴露42d,发现联合暴露呈现协同毒性效应,可导致大鼠血清性激素稳态失调并显著增加大鼠卵巢囊性变和闭锁卵泡数目,加重PCOS表型。因此,真实环境中的多污染物混合暴露可能增强MNPs的毒性作用。值得关注的是,尽管MNPs暴露与PCOS相关的研究尚停留在基础实验阶段,近年来越来越多的临床证据表明在人类卵泡液中普遍检出MNPs,且流行病学研究提示卵泡液中MNPs浓度可能与性激素紊乱相关[36-37],并导致体外受精不良结局的发生[37-38],进一步揭示了MNPs的卵巢毒性及其潜在的内分泌干扰效应。3.新兴转化物与PCOS的关联:6PPD-Q是一种由常见轮胎橡胶抗氧化剂6PPD经臭氧分解产生的环境污染物,广泛存在于空气和大气颗粒物、室内灰尘、环境灰尘和橡胶消费品中[39-40],人类普遍暴露且生物蓄积性强[41]。Yu等[42]在人体研究中检测了PCOS与非PCOS的不孕女性卵泡液中6PPD-Q水平,发现PCOS患者卵泡液中6PPD-Q水平显著升高,且与抗米勒管激素水平、睾酮水平、LH/FSH比值及月经周期呈正相关,与优质胚胎率呈负相关;该团队同时在动物实验水平通过腹腔注射(4mg/kg,每3d一次,持续40d)建立成年雌性小鼠6PPD-Q暴露模型,观察到PCOS样变化,包括激素水平改变、动情周期中断及卵巢多囊样改变。之后这一研究提示6PPD-Q可能以剂量依赖性的方式对PCOS患者的内分泌功能和生殖结局产生不利影响。4.PPCPs与PCOS的关联:PPCPs是家庭、个人护理用品(洗发水、肥皂、化妆品)和药物(抗生素、除臭剂等)中含有的化学品[43],在日常生活的使用不断增加[44],其生物累积会损害水生和陆地动物健康[45]。一些研究提示接触PPCPs可能干扰体内激素平衡,参与PCOS的发生和进展[46]。对羟基苯甲酸酯是PPCPs中的一种,作为抗菌防腐剂被广泛应用于各种加工食品、饮料、药物及化妆品等个人护理产品中[47]。Vo等[48]在青春期前雌性大鼠模型中,通过每天口服灌胃给予62.5~1000mg/kg体重剂量的对羟基苯甲酸酯,持续3周,发现高剂量1000mg/kg对羟基苯甲酸酯通过增加卵巢的囊性卵泡数量、减少黄体重量、降低卵泡上皮厚度和降低血清17β-雌二醇水平等病理机制诱导PCOS表型。然而,Šimková等[49]的一项病例对照研究检测了9例正常体质量PCOS患者、10例肥胖PCOS患者和20名健康对照血浆中的对羟基苯甲酸酯,结果显示三组间对羟基苯甲酸酯总暴露量差异无统计学意义,且整体暴露水平偏低。因此,该环境暴露水平是否能代表人群普遍暴露水平有待考证,且低检测率及样本量限制(n=39)可能影响结论的外推性,需结合人群暴露特征及更大样本研究进一步验证。三氯生是一种有机、脂溶性卤代联苯醚,因其广谱抗菌性能而常用于个人护理、家居、制药、兽医及工业领域[50]。三氯生可通过摄入或皮肤黏膜接触进入人体,在尿液、血液、母乳和羊水中均有检出[51]。基于细胞的研究表明,三氯生可以影响卵巢功能,并可能与PCOS相关[52]。斑马鱼实验中,三氯生引起卵巢的氧化损伤,并促进卵巢细胞死亡[53]。Ramamurthy等[54]采用成年雌性斑马鱼(4~5月龄),通过水环境暴露方式给予环境相关浓度三氯生(200μg/L),持续150d,成功构建斑马鱼PCOS模型,表现为空腹血糖升高、脂质沉积、卵巢性腺指数升高,卵巢组织学改变(80%以上为Ⅰ~Ⅱ期早期卵泡并伴大量闭锁卵泡及间质纤维化),产卵量下降。人体研究方面,三氯生与PCOS关联的证据较少且存在不一致。Ye等[55]通过一项横断面研究发现,PCOS不孕患者尿液三氯生水平明显高于非PCOS不孕女性(P=0.0407)。然而另一项病例对照研究中并未发现尿液三氯生与PCOS之间的关联[56]。Ye等的研究聚焦于不孕患者群体,其PCOS患者尿液三氯生水平显著高于非PCOS不孕女性,且样本量较大(n=296)、三氯生检出率高(PCOS组90.5%,对照组83.7%),提示在该特定人群中三氯生可能与PCOS存在关联。而Gu等[56]的研究纳入了更广泛的女性人群,样本量相对较小(n=123),三氯生检出率较低(23.6%)且多数样本浓度低于检测限,这可能导致无法有效揭示两者之间的关联。此外,两项研究在研究对象选择、统计模型及对混杂因素(如体质量指数)的控制上均存在差异,这些因素均可能影响最终的研究结论。因此,未来需进一步开展大样本、前瞻性研究,避免横断面研究的局限性,并在分析中充分考虑人群异质性、暴露水平及潜在混杂因素,以明确三氯生在PCOS发生发展中的作用。抗生素类药物作为PPCPs的重要亚类,广泛存在于环境水体和日常消费品中,近年的研究提示可能与PCOS存在复杂关联。一项横断面研究显示,PCOS患者抗生素使用频率显著高于非PCOS人群(增加55%),且该关联在接受PCOS治疗的患者中更为显著;25岁前确诊PCOS的患者抗生素使用频率亦显著升高[57]。这一关联提示需关注抗生素环境暴露与PCOS发病的潜在联系。另一方面,特定抗生素类药物显示出改善PCOS病理特征的潜力,米诺环素和氨苯砜处理都在PCOS小鼠模型中表现出改善激素紊乱、恢复卵巢组织学结构的作用[58-59]。此外,肠道菌群失调被认为是PCOS的发病机制之一,在PCOS小鼠模型中,抗生素处理可通过调节肠道菌群组成降低血清睾酮水平,改善PCOS表型[60]。然而,这种治疗效应与环境抗生素暴露的潜在危害之间的平衡仍需审慎评估。二、新兴污染物诱发PCOS的独特作用机制传统环境污染物,尤其EDCs,其毒性机制研究已较为系统,主要包括:①激素受体直接干扰,如双酚A及其类似物通过结合雌激素受体(estrogenreceptor,ER,如ERα、ERβ)及膜相关受体(如GPR30),模拟或拮抗内源性激素活性,扰乱下丘脑-垂体-性腺轴反馈调节[61-62];②激素合成与代谢酶干扰,如双酚A可抑制睾酮羟化酶活性并直接刺激卵巢间质细胞合成雄激素,邻苯二甲酸酯等EDCs也可干扰类固醇合成关键酶(如CYP17A1、CYP19A1)、改变性激素结合球蛋白功能,扰乱卵巢类固醇合成与排卵过程[63-64];③氧化应激与炎症通路激活,多种EDCs(如双酚A、PFAS、DEHP等)通过诱导线粒体活性氧过量产生、激活PPRP信号通路等方式,激活核因子-κB、MAPK等炎症信号,进一步影响脂代谢、胰岛素敏感性与卵泡发育[65-67]。这些机制共同构成了传统污染物干扰生殖内分泌与代谢稳态的核心路径。尽管部分新兴污染物与传统污染物共用类似的作用机制,然而,一些新兴环境污染物在物理形态、环境迁移、生物累积及毒理学行为上表现出显著差异,其作用机制已超越经典的“受体-配体”干扰模式。前沿研究证据表明,这些污染物可能通过物理损伤、载体效应及表观遗传重编程等独特路径,独立或协同地扰乱卵巢微环境、内分泌稳态与全身代谢,最终参与PCOS的发生与发展。本节将重点关注这些超越经典内分泌干扰模式的独特机制,以深化对新兴污染物生殖毒性的理解。1.污染物载体效应:MNPs因其表面积大且疏水性强,可以从周围环境中高效地吸附并搭载各种疏水性有机污染物,以“特洛伊木马”的方式改变各类污染物的生物积累并导致协同毒性作用[68-69]。中国海滩采样的塑料颗粒中多环芳烃含量高达2.4mg/g,滴滴涕(dichlorodiphenyltrichloroethane,DDT)含量高达0.1mg/g[70]。MNPs不仅搭载污染物,还促进其在体内的释放。模拟温血动物消化环境(38℃,pH=4)的研究发现POPs从微塑料中的脱附速度比在海水中快30倍[71]。海鸟类胃模型的研究显示,吸附在MNPs的POPs可在100h内完全浸出[72]。因此,在包括人类在内的哺乳动物中,MNPs可能大幅提升所搭载的POPs及其他污染物的蓄积与转移效率,进而放大各类污染物的毒性作用。此外,塑料制造中的各种化学添加剂,比如DEHP、双酚A、溴化阻燃剂等也可能随MNPs释放,发挥协同的生殖毒性作用[73]。另外,MNPs表面容易有微生物定植,其形成的生物膜可能包含人类致病菌,还可能促进其入侵。例如,研究显示MPs可与SARS-CoV-2结合,从而促进病毒传播并增加感染风险[74]。2.物理效应:MNPs作为颗粒状污染物,在体内主要通过血液、细胞旁路和跨细胞途径运输与分布,各环节均可能造成物理损伤并引发相应生物毒性。血液中蓄积的MNPs可诱发急性心血管事件[75]。Marfella等[76]首次在人体颈动脉斑块中检出MNPs,并发现其与心肌梗塞、卒中及全因死亡风险升高显著相关。除大血管外,MNPs也可随血液循环进入远端分支血管。Huang等[77]追踪了MPs颗粒在血管中的高速运动,发现循环MPs被血液中的中性粒细胞和巨噬细胞吞噬后可阻塞大脑皮质毛细血管、诱发血栓形成、引起神经系统症状,因此,MNPs可能通过机械阻塞与干扰局部血液循环间接影响大脑、卵巢等全身组织器官的功能。值得注意的是,这些物理损伤机制同样直接作用于生殖系统。研究表明,经口暴露的MNPs可通过淋巴系统与毛细血管,被巨噬细胞捕获后在哺乳动物性腺(卵巢与睾丸)中积累,并直接引发微观结构损伤[78-79]。在卵巢中,MNPs的物理积累与卵巢囊肿形成、生长卵泡数量减少以及颗粒细胞层变薄等结构异常相关[80]。此外,MNPs还能破坏关键的生殖屏障,其机制涉及对连接蛋白(如闭锁蛋白、N-钙黏蛋白)的干扰,这种屏障完整性的丧失会进一步恶化生殖微环境[79,81]。此外,MNPs还通过与细胞膜的相互作用增强其通过性、破坏细胞屏障,且其毒性效应与MNPs的流体动力学直径、表面电荷及颗粒形状密切相关[82-84],其中纳米级的、带正表面电荷的颗粒更易进入细胞发挥更强的毒性作用[85-86]。3.表观遗传与跨代效应:近年研究表明,表观遗传修饰的改变与PCOS的发生发展相关。Rawat等[87]的系统综述与荟萃分析提示,PCOS患者的全基因组甲基化水平显著降低,相关基因主要参与激素调节、炎症及代谢通路。这些获得性表观遗传修饰可由环境因素触发,是连接环境暴露与疾病易感性的关键机制[88-89]。在新兴污染物中,短链PFAS及其替代品(如HFPO-DA)的表观遗传毒性日益受到关注。与传统长链PFAS相比,这些替代品虽半衰期较短,但仍可通过激活PPARγ等核受体干扰卵巢类固醇生成,并诱导持久的表观遗传改变[90]。这一过程涉及多重表观遗传机制,①DNA甲基化:导致Fshr、Esr1、Cyp19a1等生殖相关关键基因启动子区域低甲基化,导致转录抑制或表达不稳定[91];②组蛋白修饰:通过调控DNMT1、DNMT3A及HDACs活性,破坏卵泡发育过程中协调基因表达所需的染色质重塑[91];③非编码RNA失调:miR-132、miR-145、miR-21等调控颗粒细胞形成、类固醇生成和凋亡的miRNA呈现差异表达,导致卵泡发育异常模式[92]。尤为重要的是,基于小鼠的动物模型研究显示,子宫内暴露于PFAS可导致雌性后代卵巢中miR-let7、miR-29和miR-34家族成员的持续性跨代改变,伴随生殖异常和卵巢基因网络失调[93]。这提示新兴污染物诱导的表观基因组重编程可能导致生殖风险的跨代遗传。其他环境污染物也显示出通过表观遗传而导致跨代效应的潜力。Nilsson等[94]发现亲代暴露于乙烯菌核利或DDT后,F3代大鼠卵巢颗粒细胞转录组和表观基因组出现跨代变化,这些表观遗传变化与卵巢功能失调和疾病易感性相关。尽管有关新兴污染物暴露与PCOS相关表观遗传关联的研究有限,但亲代环境污染物暴露是卵巢疾病的环境病因学中必须考虑的风险因素。三、总结与未来方向人类生产生活持续催生出的新兴污染物已在全球范围广泛分布,但其毒性尚未完全阐明。本文综述了新兴环境污染物与PCOS关联的研究证据及其独特的毒性机制。然而,这一领域证据仍存在显著矛盾与空白。目前的研究存在如下核心局限:①多数人体证据为横断面设计,且新兴污染物的生物检测方法(如MNPs定量、多类替代物同步检测)尚不成熟,难以精确评估长期、低剂量暴露,更无法锁定生命早期等关键暴露窗口,严重弱化了因果推断力。②体内外研究多采用高剂量单一污染物暴露,这与人群长期低剂量混合暴露的现实严重脱节。MNPs的载体效应及污染物间可能的相互作用被普遍忽视,可导致毒性误判[95]。③现有研究大多集中于成年期或某一孤立时间点的暴露评估,缺乏从胎儿期、儿童期、青春期直至育龄期的系统性、纵向暴露数据。尽管目前已开始出现针对特定新兴污染物(如PFAS)的探索性前瞻性研究[96],为理解生命早期暴露与生殖健康结局之间的关系提供了初步线索,但总体而言,此类研究仍然较少,尚未形成系统性的生命周期暴露评估体系。这种片段化暴露评估模糊了影响PCOS发生发展的关键暴露窗口,从而限制了从生命周期角度理解环境病因的能力。为突破上述局限,研究范式需从“是否相关”转向“如何相关”,可能的突破点如下:首先,需开发高灵敏度、高特异度的多组分同步分析技术,以全面评估人体暴露负荷。其次,实验研究应模拟真实环境的混合物暴露,采用从体外高通量筛选到体内低剂量验证的分级策略,重点分析污染物间相互作用及MNPs等新兴污染物的载体效应。再次,应优先建立跨生命周期的前瞻性队列,系统收集各发育关键期的生物样本与环境数据,构建个体暴露轨迹,以阐明特定窗口期暴露与PCOS发病及表型演进的关联,揭示各类新兴污染物的长期健康效应。最后,对强证据污染物应尽早开展初步风险评估,探索可能的靶向干预措施,为未来转化提供依据。参考文献[1]DeswalR,NarwalV,DangA,etal.Theprevalenceofpolycysticovarysyndrome:abriefsystematicreview[J].JHumReprodSci,2020,13(4):261-271.DOI:10.4103/jhrs.JHRS_95_18.[2]HelvaciN,YildizBO.Polycysticovarysyndromeasametabolicdisease[J].NatRevEndocrinol,2025,21(4):230-244.DOI:10.1038/s41574-024-01057-w.[3]MerkinSS,PhyJL,SitesCK,etal.Environmentaldeterminantsofpolycysticovarysyndrome[J].FertilSteril,2016,106(1):16-24.DOI:10.1016/j.fertnstert.2016.05.011.[4]LiuYN,QinY,WuB,etal.DNAmethylationinpolycysticovarysyndrome:emergingevidenceandchallenges[J].ReprodToxicol,2022,111:11-19.DOI:10.1016/j.reprotox.2022.04.010.[5]DapasM,DunaifA.Deconstructingasyndrome:genomicinsightsintoPCOScausalmechanismsandclassification[J].EndocrRev,2022,43(6):927-965.DOI:10.1210/endrev/bnac001.[6]GuarnottaV,AmodeiR,FrascaF,etal.Impactofchemicalendocrinedisruptorsandhormonemodulatorsontheendocrinesystem[J].IntJMolSci,2022,23(10):5710.DOI:10.3390/ijms23105710.[7]RayhanMRI,ShohagAS,RiyaKA,etal.Correctionto:legacyandemergingcontaminants:discussionsandlegislativeadvances[M]//MalafaiaG.AquaticEcotoxicologyofLegacyPollutantsandEmergingContaminants:Vol.140.Cham:SpringerNatureSwitzerland,2025:297-298.DOI:10.1007/698_2025_1214.[8]IntisarA,RamzanA,SawairaT,etal.Occurrence,toxiceffects,andmitigationofpesticidesasemergingenvironmentalpollutantsusingrobustnanomaterials--areview[J].Chemosphere,2022,293:133538.DOI:10.1016/j.chemosphere.2022.133538.[9]RenaultD,PrevišićA,DeroclesS.Effectsofpharmaceuticalsandpersonalcareproductsoninsects[J].AnnuRevEntomol,2026,71(1):635-653.DOI:10.1146/annurev-ento-121423-013316.[10]LindstromAB,StrynarMJ,LibeloEL.Polyfluorinatedcompounds:past,present,andfuture[J].EnvironSciTechnol,2011,45(19):7954-7961.DOI:10.1021/es2011622.[11]FentonSE,DucatmanA,BoobisA,etal.Per-andpolyfluoroalkylsubstancetoxicityandhumanhealthreview:currentstateofknowledgeandstrategiesforinformingfutureresearch[J].EnvironToxicolChem,2021,40(3):606-630.DOI:10.1002/etc.4890.[12]SunderlandEM,HuXC,DassuncaoC,etal.Areviewofthepathwaysofhumanexposuretopoly-andperfluoroalkylsubstances(PFASs)andpresentunderstandingofhealtheffects[J].JExpoSciEnvironEpidemiol,2019,29(2):131-147.DOI:10.1038/s41370-018-0094-1.[13]ZhanW,QiuW,AoY,etal.Environmentalexposuretoemergingalternativesofper-andpolyfluoroalkylsubstancesandpolycysticovariansyndromeinwomendiagnosedwithinfertility:amixtureanalysis[J].EnvironHealthPerspect,2023,131(5):057001.DOI:10.1289/EHP11814.[14]PattarawatP,ZhanT,FanY,etal.Exposuretolong-andshort-chainper-andpolyfluoroalkylsubstancesinmiceandovarian-relatedoutcomes:aninvivoandinvitrostudy[J].EnvironHealthPerspect,2025,133(5):57024.DOI:10.1289/EHP14876.[15]ZhengG,EickSM,SalamovaA.Elevatedlevelsofultrashort-andshort-chainperfluoroalkylacidsinUShomesandpeople[J].EnvironSciTechnol,2023,57(42):15782-15793.DOI:10.1021/acs.est.2c06715.[16]BischelHN,Macmanus-SpencerLA,ZhangC,etal.Strongassociationsofshort-chainperfluoroalkylacidswithserumalbuminandinvestigationofbindingmechanisms[J].EnvironToxicolChem,2011,30(11):2423-2430.DOI:10.1002/etc.647.[17]OwczarekK,KubicaP,KudłakB,etal.DeterminationoftracelevelsofelevenbisphenolAanaloguesinhumanbloodserumbyhighperformanceliquidchromatography-tandemmassspectrometry[J].SciTotalEnviron,2018,628-629:1362-1368.DOI:10.1016/j.scitotenv.2018.02.148.[18]WuLH,ZhangXM,WangF,etal.OccurrenceofbisphenolSintheenvironmentandimplicationsforhumanexposure:ashortreview[J].SciTotalEnviron,2018,615:87-98.DOI:10.1016/j.scitotenv.2017.09.194.[19]JurewiczJ,MajewskaJ,BergA,etal.SerumbisphenolAanaloguesinwomendiagnosedwiththepolycysticovarysyndrome-isthereanassociation?[J].EnvironPollut,2021,272:115962.DOI:10.1016/j.envpol.2020.115962.[20]ZhanW,TangW,ShenX,etal.ExposuretobisphenolAanditsanalogsandpolycysticovariansyndromeinwomenofchildbearingage:amulticentercase-controlstudy[J].Chemosphere,2023,313:137463.DOI:10.1016/j.chemosphere.2022.137463.[21]MajewskaJ,BergA,JurewiczJ,etal.BisphenolAanaloguesandmetabolicsyndromeinwomenwithpolycysticovarysyndrome[J].ReprodToxicol,2024,123:108511.DOI:10.1016/j.reprotox.2023.108511.[22]WangC,ChenH,LiH,etal.Reviewofemergingcontaminanttris(1,3-dichloro-2-propyl)phosphate:environmentaloccurrence,exposure,andriskstoorganismsandhumanhealth[J].EnvironInt,2020,143:105946.DOI:10.1016/j.envint.2020.105946.[23]WangQ,LamJC,HanJ,etal.Developmentalexposuretotheorganophosphorusflameretardanttris(1,3-dichloro-2-propyl)phosphate:estrogenicactivity,endocrinedisruptionandreproductiveeffectsonzebrafish[J].AquatToxicol,2015,160:163-171.DOI:10.1016/j.aquatox.2015.01.014.[24]LiuX,JiK,ChoiK.EndocrinedisruptionpotentialsoforganophosphateflameretardantsandrelatedmechanismsinH295RandMVLNcelllinesandinzebrafish[J].AquatToxicol,2012,114-115:173-181.DOI:10.1016/j.aquatox.2012.02.019.[25]PirontiC,RicciardiM,MottaO,etal.Microplasticsintheenvironment:intakethroughthefoodweb,humanexposureandtoxicologicaleffects[J].Toxics,2021,9(9):224.DOI:10.3390/toxics9090224.[26]PulvirentiE,FerranteM,BarberaN,etal.EffectsofNanoandmicroplasticsontheinflammatoryprocess:invitroandinvivostudiessystematicreview[J].FrontBiosci(LandmarkEd),2022,27(10):287.DOI:10.31083/j.fbl2710287.[27]DongCD,ChenCW,ChenYC,etal.Polystyrenemicroplasticparticles:invitropulmonarytoxicityassessment[J].JHazardMater,2020,385:121575.DOI:10.1016/j.jhazmat.2019.121575.[28]LuK,LaiKP,StoegerT,etal.Detrimentaleffectsofmicroplasticexposureonnormalandasthmaticpulmonaryphysiology[J].JHazardMater,2021,416:126069.DOI:10.1016/j.jhazmat.2021.126069.[29]ShenR,YangK,ChengX,etal.AccumulationofpolystyrenemicroplasticsinducesliverfibrosisbyactivatingcGAS/STINGpathway[J].EnvironPollut,2022,300:118986.DOI:10.1016/j.envpol.2022.118986.[30]WangYL,LeeYH,HsuYH,etal.Thekidney-relatedeffectsofpolystyrenemicroplasticsonhumankidneyproximaltubularepithelialcellsHK-2andmaleC57BL/6mice[J].EnvironHealthPerspect,2021,129(5):57003.DOI:10.1289/EHP7612.[31]LiB,DingY,ChengX,etal.Polyethylenemicroplasticsaffectthedistributionofgutmicrobiotaandinflammationdevelopmentinmice[J].Chemosphere,2020,244:125492.DOI:10.1016/j.chemosphere.2019.125492.[32]HuangJ,ZouL,BaoM,etal.Toxicityofpolystyrenenanoparticlesformouseovaryandculturedhumangranulosacells[J].EcotoxicolEnvironSaf,2023,249:114371.DOI:10.1016/j.ecoenv.2022.114371.[33]AdhikariM,BiswasC,MazumdarP,etal.EvaluatingthepotentialofdailyintakeofpolystyrenemicroplasticsviadrinkingwaterininducingPCOSanditsovarianfibrosisprogressionusingfemalezebrafish[J].NanoImpact,2024,34:100507.DOI:10.1016/j.impact.2024.100507.[34]ZhengY,GanX,LinC,etal.Polystyrenenanoplasticscausereproductivetoxicityinzebrafish:PPARmediatedlipidmetabolismdisorder[J].SciTotalEnviron,2024,931:172795.DOI:10.1016/j.scitotenv.2024.172795.[35]XuK,WangY,GaoX,etal.Polystyrenemicroplasticsanddi-2-ethylhexylphthalateco-exposure:implicationsforfemalereproductivehealth[J].EnvironSciEcotechnol,2024,22:100471.DOI:10.1016/j.ese.2024.100471.[36]MontanoL,RaimondoS,PiscopoM,etal.Firstevidenceofmicroplasticsinhumanovarianfollicularfluid:anemergingthreattofemalefertility[J].EcotoxicolEnvironSaf,2025,291:117868.DOI:10.1016/j.ecoenv.2025.117868.[37]KongF,FangL,GuiY,etal.Polyethyleneandpolyvinylchloridenanoplasticsinhumanfollicularfluidandseminalplasma:impactonfertilizationandspermquality[J].ACSNano,2025,19(30):27159-27172.DOI:10.1021/acsnano.5c00918.[38]WangQ,ChiF,LiuY,etal.Polyethylenemicroplasticexposureadverselyaffectsoocytequalityinhumanandmouse[J].EnvironInt,2025,195:109236.DOI:10.1016/j.envint.2024.109236.[39]CaoG,WangW,ZhangJ,etal.Newevidenceofrubber-derivedquinonesinwater,air,andsoil[J].EnvironSciTechnol,2022,56(7):4142-4150.DOI:10.1021/acs.est.1c07376.[40]ZhaoHN,HuX,GonzalezM,etal.Screeningp-phenylenediamineantioxidants,theirtransformationproducts,andindustrialchemicaladditivesincrumbrubberandelastomericconsumerproducts[J].EnvironSciTechnol,2023,57(7):2779-2791.DOI:10.1021/acs.est.2c07014.[41]ZhaoHN,ThomasSP,ZylkaMJ,etal.Urineexcretion,organdistribution,andplacentaltransferof6PPDand6PPD-quinoneinmiceandpotentialdevelopmentaltoxicitythroughnuclearreceptorpathways[J].EnvironSciTechnol,2023,57(36):13429-13438.DOI:10.1021/acs.est.3c05026.[42]YuH,ZhangW,WangD,etal.Exposureto6PPD-Qinducesdysfunctionsofovariangranulosacells:itspotentialroleinPCOS[J].JHazardMater,2025,486:137037.DOI:10.1016/j.jhazmat.2024.137037.[43]LiuJL,WongMH.Pharmaceuticalsandpersonalcareproducts(PPCPs):areviewonenvironmentalcontaminationinChina[J].EnvironInt,2013,59:208-224.DOI:10.1016/j.envint.2013.06.012.[44]BoxallAB,RuddMA,BrooksBW,etal.Pharmaceuticalsandpersonalcareproductsintheenvironment:whatarethebigquestions?[J].EnvironHealthPerspect,2012,120(9):1221-1229.DOI:10.1289/ehp.1104477.[45]SharmaBM,BečanováJ,ScheringerM,etal.Healthandecologicalriskassessmentofemergingcontaminants(pharmaceuticals,personalcareproducts,andartificialsweeteners)insurfaceandgroundwater(drinkingwater)intheGangesRiverBasin,India[J].SciTotalEnviron,2019,646:1459-1467.DOI:10.1016/j.scitotenv.2018.07.235.[46]GautamR,PrambilAM,PatelAK,etal.Emergingpollutantsinetiologyandpathophysiologyofpolycysticovarysyndrome[J].ReprodToxicol,2024,123:108515.DOI:10.1016/j.reprotox.2023.108515.[47]Al-HalasehLK,Al-AdailehS,MbaideenA,etal.Implicationofparabensincosmeticsandcosmeceuticals:advantagesandlimitations[J].JCosmetDermatol,2022,21(8):3265-3271.DOI:10.1111/jocd.14775.[48]VoTT,YooYM,ChoiKC,etal.Potentialestrogeniceffect(s)ofparabensattheprepubertalstageofapostnatalfemaleratmodel[J].ReprodToxicol,2010,29(3):306-316.DOI:10.1016/j.reprotox.2010.01.013.[49]ŠimkováM,VítkůJ,KolátorováL,etal.Endocrinedisruptors,obesity,andcytokines:howrelevantaretheytoPCOS?[J].PhysiolRes,2020,69Suppl2:S279-S293.DOI:10.33549/physiolres.934521.[50]SrnovršnikT,Virant-KlunI,PinterB.Polycysticovarysyndromeandendocrinedisruptors(bisphenols,parabens,andtriclosan):asystematicreview[J].Life(Basel),2023,13(1):138.DOI:10.3390/life13010138.[51]MaksymowiczM,RękaG,MachowiecP,etal.Impactoftriclosanonfemaleandmalereproductivesystemanditsconsequencesonfertility:aliteraturereview[J].JFamilyReprodHealth,2022,16(1):33-42.DOI:10.18502/jfrh.v16i1.8592.[52]CraigZR,Ziv-GalA.Prettygoodorprettybad?theovaryandchemicalsinpersonalcareproducts[J].ToxicolSci,2018,162(2):349-360.DOI:10.1093/toxsci/kfx285.[53]WangF,ZhengF,LiuF.Effectsoftriclosanonantioxidant-andapoptosis-relatedgenesexpressioninthegillandovaryofzebrafish[J].ExpAnim,2020,69(2):199-206.DOI:10.1538/expanim.19-0115.[54]RamamurthyK,ShinyM,MadeshS,etal.Isatin-linkedpyrazoleK1derivativealterthephosphatidylinositol-3-kinasepathwaybyenhancingthemetabolicfunctionandfolliculogenesisinthetriclosan-inducedPCOS-likeconditioninzebrafishmodel[J].EnvironToxicolPharmacol,2025,116:104695.DOI:10.1016/j.etap.2025.104695.[55]YeJ,ZhuW,LiuH,etal.Environmentalexposuretotriclosanandpolycysticovarysyndrome:across-sectionalstudyinChina[J].BMJOpen,2018,8(10):e019707.DOI:10.1136/bmjopen-2017-019707.[56]GuJ,YuanT,NiN,etal.Urinaryconcentrationofpersonalcareproductsandpolycysticovarysyndrome:acase-controlstudy[J].EnvironRes,2019,168:48-53.DOI:10.1016/j.envres.2018.09.014.[57]JuberNF,AbdulleA,AhmadA,etal.Associationsbetweenpolycysticovarysyndrome(PCOS)andantibioticuse:resultsfromtheUAEHFS[J].Antibiotics(Basel),2024,13(5):397.DOI:10.3390/antibiotics13050397.[58]KhajoueiA,HosseiniE,AbdizadehT,etal.Beneficialeffectsofminocyclineontheovaryofpolycysticovarysyndromemousemodel:moleculardockinganalysisandevaluationofTNF-α,TNFR2,TLR-4geneexpression[J].JReprodImmunol,2021,144:103289.DOI:10.1016/j.jri.2021.103289.[59]ShirooieS,KhalediE,DehpourAR,etal.Theeffectofdapsoneintestosteroneenanthate-inducedpolycysticovarysyndromeinrat[J].JSteroidBiochemMolBiol,2021,214:105977.DOI:10.1016/j.jsbmb.2021.105977.[60]YangYL,ZhouWW,WuS,etal.IntestinalFloraisakeyfactorininsulinresistanceandcontributestothedevelopmentofpolycysticovarysyndrome[J].Endocrinology,2021,162(10):bqab118.DOI:10.1210/endocr/bqab118.[61]KuiperGG,LemmenJG,CarlssonB,etal.Interactionofestrogenicchemicalsandphytoestrogenswithestrogenreceptorbeta[J].Endocrinology,1998,139(10):4252-4263.DOI:10.1210/endo.139.10.6216.[62]ThomasP,DongJ.Bindingandactivationoftheseven-transmembraneestrogenreceptorGPR30byenvironmentalestrogens:apotentialnovelmechanismofendocrinedisruption[J].JSteroidBiochemMolBiol,2006,102(1/2/3/4/5):175-179.DOI:10.1016/j.jsbmb.2006.09.017.[63]ZhouW,LiuJ,LiaoL,etal.EffectofbisphenolAonsteroidhormoneproductioninratovariantheca-interstitialandgranulosacells[J].MolCellEndocrinol,2008,283(1/2):12-18.DOI:10.1016/j.mce.2007.10.010.[64]DéchaudH,RavardC,ClaustratF,etal.Xenoestrogeninteractionwithhumansexhormone-bindingglobulin(hSHBG)[J].Steroids,1999,64(5):328-334.DOI:10.1016/s0039-128x(98)00114-7.[65]WangS,XuK,DuW,etal.ExposuretoenvironmentaldosesofDEHPcausesphenotypesofpolycysticovarysyndrome[J].Toxicology,2024,509:153952.DOI:10.1016/j.tox.2024.153952.[66]WangC,HeJ,XuT,etal.BisphenolA(BPA),BPSandBPB-inducedoxidativestressandapoptosismediatedbymitochondriainhumanneuroblastomacelllines[J].EcotoxicolEnvironSaf,2021,207:111299.DOI:10.1016/j.ecoenv.2020.111299.[67]ZhaoZ,QuW,WangK,etal.BisphenolAinhibitsmucin2secretioninintestinalgobletcellsthroughmitochondrialdysfunctionandoxidativestress[J].BiomedPharmacother,2019,111:901-908.DOI:10.1016/j.biopha.2019.01.007.[68]ZhaoB,RehatiP,YangZ,etal.Thepotentialtoxicityofmicroplasticsonhumanhealth[J].SciTotalEnviron,2024,912:168946.DOI:10.1016/j.scitotenv.2023.168946.[69]WrightSL,KellyFJ.Plasticandhumanhealth:amicroissue?[J].EnvironSciTechnol,2017,51(12):6634-6647.DOI:10.1021/acs.est.7b00423.[70]ZhangW,MaX,ZhangZ,etal.PersistentorganicpollutantscarriedonplasticresinpelletsfromtwobeachesinChina[J].MarPollutBull,2015,99(1/2):28-34.DOI:10.1016/j.marpolbul.2015.08.002.[71]BakirA,RowlandSJ,ThompsonRC.Enhanceddesorptionofpersistentorganicpollutantsfrommicroplasticsundersimulatedphysiologicalconditions[J].EnvironPollut,2014,185:16-23.DOI:10.1016/j.envpol.2013.10.007.[72]VanHasselL,SchollG,EppeG,etal.DynamicsofleachingofPOPsandadditivesfromplasticinaProcellariiformgastricmodel:diet-andpolymer-dependenteffectsandimplicationsforlong-termexposure[J].PLoSOne,2024,19(3):e0299860.DOI:10.1371/journal.pone.0299860.[73]WangQ,BaiJ,NingB,etal.EffectsofbisphenolAandnanoscaleandmicroscalepolystyreneplasticexposureonparticleuptakeandtoxicityinhumanCaco-2cells[J].Chemosphere,2020,254:126788.DOI:10.1016/j.chemosphere.2020.126788.[74]Amato-LourençoLF,deSouzaXavierCostaN,DantasKC,etal.AirbornemicroplasticsandSARS-CoV-2intotalsuspendedparticlesintheareasurroundingthelargestmedicalcentreinLatinAmerica[J].EnvironPollut,2022,292(PtA):118299.10.1016/j.envpol.2021.118299.[75]PosnackNG.Plasticsandcardiovasculardisease[J].NatRevCardiol,2021,18(2):69-70.DOI:10.1038/s41569-020-00474-4.[76]MarfellaR,PrattichizzoF,SarduC,etal.Microplasticsandnanoplasticsinatheromasandcardiovascularevents[J].NEnglJMed,2024,390(10):900-910.DOI:10.1056/NEJMoa2309822.[77]HuangH,HouJ,LiM,etal.Microplasticsinthebloodstreamcaninducecerebralthrombosisbycausingcellobstructionandleadtoneurobehavioralabnormalities[J].SciAdv,2025,11(4):eadr8243.DOI:10.1126/sciadv.adr8243.[78]LiangB,ZhongY,Huang

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