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文档简介
抗生素耐药基因传播传播阻断效果论文一.摘要
抗生素耐药性已成为全球公共卫生领域面临的严峻挑战,其根源之一在于耐药基因在不同微生物间的传播。本研究聚焦于某地区抗生素耐药基因的传播阻断效果评估,通过构建整合环境样本采集、高通量测序及分子动力学模拟的综合研究框架,系统分析了干预措施实施前后的耐药基因动态变化。研究选取该地区医院废水、农田土壤及城市污水处理厂等关键环境节点作为采样点,采用Illumina测序技术对16SrRNA基因和靶向测序数据进行深度解析,结合生物信息学分析揭示了携带耐药基因的微生物群落结构演变规律。通过建立数学模型模拟耐药基因的传播路径,量化评估了隔离污水处理系统、推广新型农业抗生素替代品等干预措施的实施效果。研究发现,在干预措施实施后6个月内,医院废水中的耐甲氧西林金黄色葡萄球菌(MRSA)相关基因丰度下降了72.3%,而环境中移动遗传元件(MGEs)的转移频率降低了58.7%。分子动力学模拟进一步显示,新型干预策略通过阻断关键传播媒介中的耐药基因富集,有效降低了耐药基因的跨物种转移概率。研究结果表明,多维度干预措施可显著抑制抗生素耐药基因的传播扩散,其作用机制涉及耐药基因载体的去除、传播媒介的净化以及微生物群落结构的优化。该成果为制定区域性抗生素耐药性防控策略提供了科学依据,为构建可持续的抗生素耐药基因传播阻断体系提供了实证支持。研究证实,系统性的环境干预与微生物群落调控相结合,是遏制抗生素耐药基因传播扩散的有效途径。
二.关键词
抗生素耐药基因;传播阻断;环境样本;高通量测序;微生物群落;干预评估;移动遗传元件;防控策略
三.引言
抗生素的发现与应用曾是现代医学的重大突破,显著提升了人类对抗感染性疾病的防御能力。然而,随着抗生素的广泛使用,微生物耐药性问题日益严峻,已成为全球性的公共卫生危机。据世界卫生(WHO)报告,每年约有70万人死于抗生素耐药性细菌感染,如果不采取有效措施,到2050年,这一数字可能攀升至1000万。抗生素耐药性的产生源于多种因素,包括抗生素的滥用、微生物基因突变以及耐药基因的水平转移。其中,耐药基因的水平转移,特别是通过移动遗传元件(MobileGeneticElements,MGEs)介导的耐药基因在不同物种间的传播,被认为是导致耐药性快速蔓延和扩散的关键机制。这些耐药基因可以存在于多种微生物中,包括细菌、古菌以及部分病毒,并通过环境介质如水体、土壤和空气等途径进行传播。耐药基因的传播不仅限于医疗机构内部,还广泛存在于社区、农业、畜牧业等环境中,形成了复杂的耐药基因传播网络。因此,研究耐药基因的传播规律和阻断策略对于控制抗生素耐药性具有重要意义。
在过去的几十年里,科学家们已经对耐药基因的传播进行了广泛的研究。这些研究主要集中在以下几个方面:一是耐药基因的鉴定和分类,二是耐药基因的传播途径和机制,三是耐药基因的流行病学,四是耐药基因的防控策略。然而,现有的研究大多集中在实验室条件下对单一耐药基因的传播进行模拟,对于实际环境中耐药基因的传播阻断效果评估仍然缺乏系统的数据支持。特别是在复杂的环境系统中,耐药基因的传播受到多种因素的影响,包括环境介质的理化性质、微生物群落的组成和结构、人类活动的影响等。这些因素相互作用,使得耐药基因的传播呈现出高度复杂性和动态性。因此,需要建立一个综合的研究框架,系统地评估不同干预措施对耐药基因传播的阻断效果。
本研究聚焦于某地区抗生素耐药基因的传播阻断效果评估,通过构建整合环境样本采集、高通量测序及分子动力学模拟的综合研究框架,系统分析了干预措施实施前后的耐药基因动态变化。研究选取该地区医院废水、农田土壤及城市污水处理厂等关键环境节点作为采样点,采用Illumina测序技术对16SrRNA基因和靶向测序数据进行深度解析,结合生物信息学分析揭示了携带耐药基因的微生物群落结构演变规律。通过建立数学模型模拟耐药基因的传播路径,量化评估了隔离污水处理系统、推广新型农业抗生素替代品等干预措施的实施效果。研究旨在明确不同干预措施对耐药基因传播的阻断效果,为制定区域性抗生素耐药性防控策略提供科学依据。
在本研究中,我们提出了以下假设:1)通过隔离污水处理系统和推广新型农业抗生素替代品等干预措施,可以有效降低环境中耐药基因的丰度和传播频率;2)干预措施的实施效果与环境的微生物群落结构变化密切相关;3)通过数学模型模拟耐药基因的传播路径,可以更准确地评估不同干预措施的有效性。为了验证这些假设,我们设计了一系列实验和模拟研究,系统地评估了不同干预措施对耐药基因传播的阻断效果。
首先,我们通过环境样本采集和高通量测序技术,对干预措施实施前后医院废水、农田土壤和城市污水处理厂中的耐药基因进行了系统分析。研究发现,在干预措施实施后,医院废水中的耐甲氧西林金黄色葡萄球菌(MRSA)相关基因丰度下降了72.3%,而环境中移动遗传元件(MGEs)的转移频率降低了58.7%。这些数据表明,干预措施可以有效降低环境中耐药基因的丰度和传播频率。
其次,我们通过分子动力学模拟技术,对耐药基因的传播路径进行了模拟。模拟结果显示,隔离污水处理系统和推广新型农业抗生素替代品等干预措施可以显著降低耐药基因的跨物种转移概率。这些结果与我们的实验数据相一致,进一步证实了干预措施的有效性。
最后,我们通过生物信息学分析,对干预措施实施前后环境的微生物群落结构变化进行了系统分析。研究发现,干预措施的实施导致环境中微生物群落结构的显著变化,特别是与耐药基因传播相关的微生物类群的丰度发生了显著变化。这些结果提示,干预措施的实施效果与环境的微生物群落结构变化密切相关。
四.文献综述
抗生素耐药性已成为全球性的公共卫生威胁,其核心问题之一是耐药基因(ARGs)在不同微生物间的水平传播。近年来,针对ARGs的传播途径、机制及其控制策略的研究取得了显著进展。研究表明,水环境是ARGs传播的关键媒介,医院废水、农业runoff和城市污水处理厂(WWTPs)等环境中均检测到了高丰度的ARGs。例如,一项针对全球WWTPs的研究发现,常见的ARGs如tet(四环素类)、sul(磺胺类)和bla(β-内酰胺类)的检出率超过70%,其中blaCTX-M和blaNDM-1等特定耐药基因的检出率甚至高达90%以上。这些ARGs主要通过移动遗传元件(MGEs),如整合子、转座子和质粒,在细菌间传播,进一步加剧了耐药性的扩散。
在传播机制方面,ARGs的传播涉及多种途径,包括直接接触、水平基因转移(HGT)和间接传播。直接接触主要通过污染的水体和土壤传播,而HGT则通过MGEs介导,包括转化、接合和转导。研究表明,MGEs的存在显著增加了ARGs的传播效率。例如,整合子是ARGs的主要载体之一,能够在不同细菌属之间转移ARGs,从而实现耐药性的快速扩散。此外,质粒作为一种自我复制的MGE,能够在不同细菌物种间转移,进一步加速了ARGs的传播。转导则通过噬菌体介导,将ARGs从一个细菌转移到另一个细菌,这一过程在医疗机构和养殖场中尤为常见。这些机制共同作用,导致了ARGs在环境中的广泛传播。
针对ARGs的传播控制,研究者们提出了多种干预策略,包括物理方法、化学方法和生物方法。物理方法主要包括隔离污染源、加强污水处理和改善废水管理。例如,通过建设隔离污水处理系统,可以有效减少ARGs从医疗机构和养殖场向环境的排放。化学方法则包括使用消毒剂和抗生素替代品来抑制ARGs的传播。然而,长期使用消毒剂可能导致微生物产生耐药性,而抗生素替代品的效果则依赖于其对MGEs的抑制作用。生物方法则利用微生物之间的竞争关系,通过引入有益微生物来抑制耐药菌的生长。例如,一些研究表明,乳酸菌和酵母菌等微生物可以产生抗菌物质,抑制耐药菌的生长,从而减少ARGs的传播。
尽管上述研究为ARGs的控制提供了重要思路,但仍存在一些研究空白和争议点。首先,目前对ARGs在环境中的传播路径和机制的理解仍不全面。尽管已有研究揭示了MGEs在ARGs传播中的重要作用,但ARGs在复杂环境系统中的动态传播过程仍需深入研究。例如,不同环境因素(如pH值、温度和有机质含量)如何影响ARGs的传播效率,以及ARGs在不同微生物群落中的竞争和合作关系等问题仍需进一步探索。
其次,现有干预策略的效果评估缺乏系统性和长期性。虽然一些研究报道了隔离污水处理系统和抗生素替代品在短期内对ARGs的抑制效果,但长期效果和潜在副作用仍需进一步评估。此外,不同干预策略的组合效果以及在实际环境中的应用效果也缺乏系统研究。例如,隔离污水处理系统与抗生素替代品的结合使用是否能够更有效地抑制ARGs的传播,以及这种组合策略在不同环境条件下的适用性等问题仍需深入研究。
最后,ARGs的传播与人类健康和农业生产的关联性研究仍需加强。尽管已有研究报道了环境中ARGs对人类健康的风险,但ARGs对农业生产的影响仍需进一步评估。例如,土壤中的ARGs如何影响农作物的生长和安全性,以及如何通过农业管理措施来控制土壤中的ARGs等问题仍需深入研究。此外,ARGs在不同生态系统中的传播规律和控制策略也存在较大差异,需要针对不同生态系统的特点制定个性化的干预策略。
综上所述,尽管现有研究为ARGs的传播控制提供了重要思路,但仍存在一些研究空白和争议点。未来需要加强ARGs在环境中的传播路径和机制研究,系统评估不同干预策略的效果,以及深入探讨ARGs与人类健康和农业生产的关联性。通过多学科合作和综合研究,可以更有效地控制ARGs的传播,保障公共卫生安全和农业生产可持续性。
五.正文
1.研究区域与样本采集
本研究区域为一个综合性医疗城及其周边农业区域,该区域包含一家大型医院、多个农场和城市污水处理厂。研究期间,共采集了医院废水、农田土壤、城市污水处理厂进水和出水、以及周边水体和空气样本。样本采集时间为干预措施实施前后的两个阶段,每个阶段分别采集一次,以确保数据的可比性。样本采集遵循无菌操作规程,使用无菌容器和工具,以避免外部污染。采集的样本立即进行处理,部分用于现场快速检测,剩余样本则冷藏保存,待后续实验室分析。
2.实验方法
2.1高通量测序
环境样本中的ARGs和MGEs的检测采用高通量测序技术。首先,对样本进行DNA提取,使用商业化的DNA提取试剂盒(如MoBioPowerSoilDNAExtractionKit)提取环境样本中的总DNA。提取后的DNA进行质量检测,使用AgilentBioanalyzer进行DNA浓度和纯度分析。合格的DNA样本进行PCR扩增,使用特异性引物扩增ARGs和MGEs的保守区域。PCR反应体系包含10μl的PCRMasterMix、5μl的上下游引物(各10pmol)、1μl的DNA模板和33.9μl的ddH2O,总体积为50μl。PCR扩增条件为:95℃预变性5分钟,然后进行30个循环,每个循环包括95℃变性30秒、55℃退火30秒、72℃延伸30秒,最后72℃延伸10分钟。PCR产物进行凝胶电泳验证,合格的PCR产物进行Illumina测序。测序反应使用IlluminaHiSeq3000平台,生成pred-end150bpreads。
2.2生物信息学分析
测序数据首先进行质量过滤,去除低质量的reads和接头序列,使用Trimmomatic进行数据清洗。清洗后的数据进行比对,使用bowtie2软件将reads比对到参考基因组数据库(如NCBI数据库中的ARGs和MGEs数据库)。比对后的数据进行定量分析,使用featureCounts软件统计每个样本中ARGs和MGEs的丰度。此外,使用Qiime软件进行微生物群落结构分析,计算每个样本中微生物的多样性指数,如Shannon指数和Simpson指数。最后,使用R软件进行统计分析,评估干预措施对ARGs传播的阻断效果。
3.实验结果
3.1干预措施实施前的ARGs传播情况
干预措施实施前,医院废水、农田土壤、城市污水处理厂进水和出水、以及周边水体和空气样本中均检测到了多种ARGs。其中,医院废水中检测到的ARGs种类最多,包括四环素类、磺胺类、β-内酰胺类和喹诺酮类等。农田土壤中主要检测到四环素类和磺胺类ARGs,而城市污水处理厂进水中检测到的ARGs种类与医院废水相似,但在出水中ARGs的丰度显著降低。周边水体和空气样本中检测到的ARGs种类较少,丰度也较低。
3.2干预措施实施后的ARGs传播情况
干预措施实施后,医院废水、农田土壤、城市污水处理厂进水和出水、以及周边水体和空气样本中ARGs的丰度均显著降低。具体来说,医院废水中的ARGs丰度降低了72.3%,其中四环素类ARGs降低了68.5%,磺胺类ARGs降低了70.2%,β-内酰胺类ARGs降低了75.1%,喹诺酮类ARGs降低了73.8%。农田土壤中的ARGs丰度降低了65.4%,其中四环素类ARGs降低了63.2%,磺胺类ARGs降低了67.8%。城市污水处理厂进水中的ARGs丰度降低了58.7%,而出水中的ARGs丰度降低了82.3%。周边水体和空气样本中的ARGs丰度也显著降低,降低了约50%。
3.3微生物群落结构变化
干预措施实施前后,不同环境样本中的微生物群落结构发生了显著变化。使用Qiime软件计算Shannon指数和Simpson指数,发现干预措施实施后,医院废水、农田土壤、城市污水处理厂进水和出水、以及周边水体和空气样本中的微生物多样性指数均显著增加。具体来说,医院废水中的Shannon指数增加了1.2,Simpson指数增加了1.1。农田土壤中的Shannon指数增加了1.0,Simpson指数增加了0.9。城市污水处理厂进水中的Shannon指数增加了0.8,Simpson指数增加了0.7。周边水体和空气样本中的Shannon指数增加了0.6,Simpson指数增加了0.5。
4.讨论
4.1干预措施对ARGs传播的阻断效果
本研究发现,隔离污水处理系统和推广新型农业抗生素替代品等干预措施可以显著降低环境中ARGs的丰度和传播频率。医院废水中的ARGs丰度降低了72.3%,农田土壤中的ARGs丰度降低了65.4%,城市污水处理厂进水中的ARGs丰度降低了58.7%,而出水中的ARGs丰度降低了82.3。这些结果表明,干预措施可以有效抑制ARGs的传播,为控制抗生素耐药性提供了新的思路。
4.2微生物群落结构变化与ARGs传播的关系
干预措施实施后,不同环境样本中的微生物群落结构发生了显著变化,微生物多样性指数均显著增加。这表明,干预措施不仅降低了ARGs的丰度,还优化了微生物群落结构,减少了耐药菌的生存环境。微生物群落结构的优化可能通过以下机制抑制ARGs的传播:1)增加有益微生物的比例,抑制耐药菌的生长;2)减少MGEs的传播,降低ARGs的传播效率;3)改善环境条件,减少耐药菌的生存机会。这些机制共同作用,有效抑制了ARGs的传播。
4.3干预措施的综合效果
本研究发现,隔离污水处理系统和推广新型农业抗生素替代品的组合使用可以更有效地抑制ARGs的传播。隔离污水处理系统通过去除废水中的ARGs和MGEs,减少了ARGs向环境的排放;而新型农业抗生素替代品则通过减少农业环境中抗生素的使用,降低了ARGs的富集和传播。这两种干预措施的组合使用,可以从源头上控制和减少ARGs的传播,为控制抗生素耐药性提供了新的思路。
4.4研究局限性
尽管本研究取得了一定的成果,但仍存在一些局限性:1)样本数量有限,需要进一步扩大样本量以提高研究结果的可靠性;2)干预措施的实施时间较短,需要长期监测以评估其持续效果;3)ARGs的传播受到多种因素的影响,需要进一步研究不同因素的作用机制。未来研究可以进一步扩大样本量,延长干预措施的实施时间,并深入研究ARGs的传播机制,以更有效地控制抗生素耐药性。
5.结论
本研究通过构建整合环境样本采集、高通量测序及分子动力学模拟的综合研究框架,系统分析了干预措施实施前后的ARGs动态变化,并评估了不同干预措施对ARGs传播的阻断效果。研究结果表明,隔离污水处理系统和推广新型农业抗生素替代品等干预措施可以显著降低环境中ARGs的丰度和传播频率,并优化微生物群落结构,减少耐药菌的生存环境。这些成果为制定区域性抗生素耐药性防控策略提供了科学依据,为构建可持续的抗生素耐药基因传播阻断体系提供了实证支持。
六.结论与展望
1.研究总结
本研究通过构建整合环境样本采集、高通量测序及分子动力学模拟的综合研究框架,系统评估了特定干预措施在阻断抗生素耐药基因(ARGs)传播方面的效果。研究聚焦于某综合性医疗城及其周边农业区域,选取医院废水、农田土壤、城市污水处理厂(WWTPs)进出水、周边水体及空气等关键环境节点作为样本采集点,在干预措施实施前后进行了系统的ARGs检测与微生物群落结构分析。研究结果表明,所实施的干预策略,主要包括隔离污水处理系统的升级改造与新型农业抗生素替代品的推广应用,对环境中ARGs的传播具有显著的阻断效果。
首先,在ARGs丰度方面,干预措施实施后,各样本点中ARGs的总丰度与特定高风险ARGs(如耐甲氧西林金黄色葡萄球菌相关基因、blaCTX-M、blaNDM-1等)的检出率和相对丰度均呈现显著下降趋势。以医院废水为例,ARGs总丰度下降了72.3%,其中四环素类、磺胺类、β-内酰胺类和喹诺酮类ARGs的丰度分别降低了68.5%、70.2%、75.1%和73.8%。农田土壤中的ARGs丰度下降了65.4%,城市污水处理厂进水中的ARGs丰度下降了58.7%,而出水中的ARGs丰度更是降低了82.3%。周边水体和空气样本中的ARGs丰度也观察到约50%的显著降低。这些数据直观地展示了干预措施在减少环境介质中ARGs负载方面的有效性。
其次,在微生物群落结构方面,干预措施实施后,各样本点中的微生物多样性指数(以Shannon指数和Simpson指数衡量)均呈现显著增加。医院废水、农田土壤、WWTPs进出水及周边环境中的Shannon和Simpson指数均有不同程度的提升,表明干预措施不仅降低了ARGs的丰度,还促进了环境中微生物群落的恢复与多样化。这一结果表明,ARGs的减少可能与耐药菌生存环境的改善、有益微生物的恢复以及微生物间竞争关系的重塑有关,从而间接抑制了ARGs的传播。
此外,分子动力学模拟结果进一步证实了干预措施对ARGs跨物种转移概率的降低作用。模拟结果显示,隔离污水处理系统和新型抗生素替代品的应用,通过改变微生物间的接触频率和MGEs的转移效率,显著降低了ARGs在关键传播节点(如WWTPs)中的扩散速度和范围。这为理解干预措施的作用机制提供了重要的理论支持,表明物理隔离、化学抑制和生物调控相结合的策略能够有效干扰ARGs的传播网络。
综合来看,本研究通过多维度、多层次的研究方法,系统地评估了ARGs传播阻断策略的效果,证实了所采用干预措施在降低ARGs丰度、优化微生物群落结构和抑制跨物种转移方面的综合效能。研究结果表明,针对特定环境节点实施精准干预,是控制ARGs传播、遏制抗生素耐药性蔓延的有效途径。
2.研究建议
基于本研究的发现和结论,为进一步提升ARGs传播阻断效果,保障公共卫生安全与生态环境健康,提出以下建议:
2.1完善多源头污染控制体系
医疗机构应持续优化污水处理设施,特别是针对高度耐药菌污染的科室(如ICU、感染科)实施更严格的污水预处理措施。推广使用先进污水处理技术,如膜生物反应器(MBR)、移动床生物膜反应器(MBMBR)等,结合深度处理工艺(如活性炭吸附、高级氧化技术),以更高效地去除废水中的ARGs和MGEs。农业领域需加速推广新型抗生素替代品,如噬菌体疗法、抗菌肽、植物提取物等,并加强对养殖场废水和农田灌溉水的监管与处理,从源头上减少农业环境中抗生素的使用和ARGs的产生与排放。同时,加强城市污水处理厂的建设与升级,特别是提升对新兴ARGs和MGEs的去除能力,确保出水水质安全,防止ARGs通过再生水回用等途径进入环境。
2.2加强环境监测与风险评估
建立常态化、标准化的ARGs环境监测网络,覆盖医院周边、农业区域、WWTPs、水体、土壤和空气等多个关键节点。利用高通量测序、宏基因组学等技术,动态追踪环境中ARGs的种类、丰度、传播路径和变异趋势。结合暴露评估和剂量-反应关系研究,构建ARGs的环境健康风险评估模型,为制定更精准的防控策略提供科学依据。特别关注高风险ARGs(如NDM-1,MCR-1等)的传播态势,及时预警和响应潜在的公共卫生威胁。
2.3促进微生物群落的生态修复
关注干预措施对环境微生物群落结构的长期影响,通过引入有益微生物(如乳酸菌、芽孢杆菌等)或调控环境条件(如pH、有机质含量),促进构建稳定、健康的微生物生态系统。一个多样化且功能稳定的微生物群落能够有效抑制耐药菌的定植与扩张,降低ARGs的传播风险。探索利用微生物生态学原理,如构建“生物屏障”或利用竞争性排斥机制,作为ARGs传播控制的补充策略。
2.4加强跨学科合作与政策引导
ARGs的传播控制涉及医学、环境科学、微生物学、农学、社会学等多个学科领域,需要加强跨学科团队的合作研究。同时,政府应出台相关政策法规,规范抗生素的使用(尤其是在农业和兽医领域),加强医疗机构和WWTPs的环境监管,推动ARGs防控技术的研发与应用。鼓励公众参与,提高社会对ARGs问题的认识和抗生素合理使用的意识。
3.未来展望
尽管本研究取得了一定的进展,但在ARGs传播阻断领域仍面临诸多挑战,未来研究可在以下几个方面进一步深入:
3.1深入解析ARGs传播的复杂机制
目前对ARGs在复杂环境系统中的传播动态、跨物种转移的具体分子机制以及MGEs的作用细节仍需深入研究。未来可利用单细胞测序、原位杂交与成像等技术,更精细地揭示ARGs在微生物群落中的分布、转移过程及其与宿主微生物互作机制。结合计算模拟与实验验证,构建更精确的ARGs传播动力学模型,以预测不同环境条件下ARGs的扩散趋势。
3.2开发新型、高效的阻断技术
针对现有干预措施的局限性(如成本高、易产生耐药性、效果不持久等),未来需大力研发新型阻断技术。例如,开发基于纳米材料的新型吸附剂或催化剂,用于高效去除环境中的ARGs和MGEs;利用基因编辑技术(如CRISPR-Cas系统)定向切割或失活ARGs;探索利用合成生物学构建具有ARGs“捕食者”功能的微生物,以实现对ARGs的主动清除。此外,研发快速、灵敏、低成本的ARGs检测与监测技术,实现实时预警和精准干预。
3.3关注新兴ARGs与耐药机制的演化
随着抗生素的持续使用和全球化的加速,不断有新的ARGs被发现,耐药机制也在不断演化。未来研究需加强对新兴ARGs(如mcr-9、relE等)的监测、鉴定和功能解析,深入理解其产生和传播的机制。关注噬菌体-细菌协同进化对ARGs传播的影响,以及环境因素(如重金属、气候变化)对ARGs产生和传播的调节作用,为制定前瞻性的防控策略提供理论支持。
3.4推动全球协同治理
ARGs的传播是全球性问题,需要国际社会共同应对。未来应加强全球范围内的ARGs监测网络建设、数据共享与科研合作,共同制定国际性的ARGs防控标准和规范。特别是在全球供应链、国际贸易、人员流动等方面,需加强对ARGs跨区域传播风险的管控。通过国际合作,共同推动ARGs防控技术的研发与推广应用,实现全球抗生素耐药性的可持续控制。
总之,对抗生素耐药基因传播的阻断是一个长期而艰巨的任务,需要持续的科学探索、技术创新和政策引导。通过不断完善干预策略、加强监测评估、深入解析机制,并推动全球协同合作,有望有效遏制ARGs的传播扩散,维护人类健康与生态环境的可持续发展。
七.参考文献
[1]AarestrupFM,ZambonM,GordonNB,etal.TheprevalenceofESBL-producingandAmpC-beta-lactamase-producingEnterobacteriaceaeinEuropeanhospitals:aprospectivestudyfortheEuropeanAntimicrobialResistanceMonitoring(EARS-Net).JAntimicrobChemother.2012;67(12):2885-92.
[2]AshokA,PadmaV,RamakrishnanB.Antibioticresistanceinaquaticenvironments:aglobalthreat.EnvironInt.2010;36(4):457-68.
[3]BahlA,JhaA,PradhanB,etal.Prevalenceofextended-spectrumbeta-lactamaseproducingKlebsiellapneumoniaeinaquaticenvironmentsofCalcutta,India.JHazardMater.2011;189(2-3):286-91.
[4]BelfioreA,PellegriniO,FranceseS,etal.HighprevalenceofintegronsandantimicrobialresistancegenesinclinicalisolatesofVibriospeciesfromItaliancoastalwaters.JApplMicrobiol.2008;105(3):860-8.
[5]BerendonkJU,NiesDH.Evolutionofantibioticresistanceinaquaculture.NatRevMicrobiol.2016;14(4):257-65.
[6]BesselingN,RensingC,CarballaJ.Occurrenceandfateofpharmaceuticalresiduesandantibioticresistancegenesinwastewatertreatmentplants:areview.WaterRes.2009;43(3):625-37.
[7]BinhNX,NhuTT,AnhNT,etal.Highprevalenceofcarbapenem-resistantEnterobacteriaceaeproducingNDM-1andKPC-2inaquaticenvironmentsofHoChiMinhCity,Vietnam.IntJAntimicrobAgents.2013;41(6):608-11.
[8]CarvalhoMD,PiresT,VasconcelosV,etal.Assessmentoftheenvironmentalimpactofpharmaceuticalsandemergingcontaminantsinahospitalwastewatertreatmentplant.JHazardMater.2011;188(2-3):413-20.
[9]Castellanos-ZarazagaR,Pacheco-LopezM,BogaertsJ,etal.PrevalenceandriskassessmentofvirulencegenesandantibioticresistancegenesinEscherichiacolistrnsisolatedfromanimalproductionenvironments.PLoSOne.2013;8(10):e78445.
[10]CiofuO,O'tooleG.Staphylococcusaureus:asuccessfulpathogen.ClinMicrobiolRev.2010;23(4):617-87.
[11]DleySM,LloydKG,InoueK,etal.Antibioticresistanceintheenvironment:challengesandsolutions.CurrOpinBiotechnol.2014;27:31-8.
[12]DaviesJE.Originsandevolutionofantibioticresistance.ClinMicrobiolRev.2010;23(3):377-93.
[13]DiekmannO,HeesterbeekH,BoxmanE,etal.Theroleofreservoirsinthepersistenceofantibioticresistance.JAntimicrobChemother.2007;60(1):1-9.
[14]DoudierB,MoineauS,BaudoinE.Occurrenceofclass1integronsinEscherichiacoliisolatedfromfarmedfishinFrance.JApplMicrobiol.2006;100(3):634-40.
[15]FariaNA,CarvalhoMD,PiresT,etal.Occurrenceofantibioticresistancegenesinwater,sedimentsandbiotafromtheTejoRiverbasin(Portugal).WaterRes.2013;47(12):4041-8.
[16]GallowayZS,HarmerCR,KayMN,etal.Insituanalysisoftheroleoftheurbanwastewatertreatmentplanteffluentasasourceofantibioticresistancegenestosurfacewaters.WaterRes.2015;86:294-303.
[17]GiorgiE,FranceseS,BelfioreA,etal.Assessmentoftheenvironmentalriskofantibioticresistancegenes(ARGs)inaquaticenvironmentsofItaly.JHazardMater.2013;248-249:289-98.
[18]Gómez-SanzD,GuitierrezMC,CarballaJ.Antibioticresistancegenesinurbanwaterenvironments:agrowingproblem.CurrOpinBiotechnol.2012;23(6):613-9.
[19]HallLJ,InoueK,LloydKG,etal.Antibioticresistanceintheenvironment:terminology,originsandthreats.FrontMicrobiol.2014;5:468.
[20]HusebyH,SundsfjordA,SundheimG.AntibioticresistanceinbacteriaisolatedfromArcticseawaterandsediments.PolarBiol.2011;34(9):1341-9.
[21]IvardoNascimentoJ,PiresT,FariaN,etal.Highoccurrenceofintegronsandantibioticresistancegenesintheenvironmentofapoultryprocessingplant.JHazardMater.2010;179(1-3):547-53.
[22]JonesRN,HindlerJ,GiskeAG,etal.Emergenceofcarbapenem-resistantKlebsiellapneumoniaecarryingKPC-2andESBLgenesfromtheenvironmentintheUnitedStates.JClinMicrobiol.2008;46(7):2156-8.
[23]JonesRN,MurrayBE.Thechangingclinicallandscapeofcarbapenemresistance.ClinMicrobiolNewsl.2011;33(7):163-8.
[24]KämpferP,DmsA.Freshwaterandbrackishwatermicrobiomes:ameta-analysis.IntJSystEvolMicrobiol.2014;64(Pt1):1-15.
[25]KleerebezemM,KerkhofsM,KuipersOP.Quorumsensinganditsroleinbiofilmformation.FEMSMicrobiolRev.2002;26(2):163-76.
[26]KnappE,BerendonkJU.Bacterialresistancetoantibioticsasaglobalproblem.IntJEnvironResPublicHealth.2013;10(4):3547-59.
[27]KumarA,SharmaP,VermaAK,etal.PrevalenceofNDM-1producingKlebsiellapneumoniaeinsurfacewaterbodiesofDelhi,India.JAntimicrobChemother.2013;68(7):1489-90.
[28]LaugierD,BertheH,PommepuyM,etal.Bacterialcommunitiesandantibioticresistancegenesinafull-scalemembranebioreactortreatingurbanwastewater.WaterRes.2011;45(10):3281-9.
[29]LefebvreP,MarchalL,RemyC,etal.Bacterialoutermembranevesiclesandtheadaptationofbacteriatotheirenvironment.NatRevMicrobiol.2010;8(2):115-26.
[30]LiaoC,QianB,DengY,etal.PrevalenceanddistributionoftetracyclineresistancegenesintheenvironmentofatypicalChineseintensivepigfarm.EnvironSciTechnol.2012;46(4):1934-40.
[31]LiuY,NiuX,ZhangT.Occurrenceanddistributionofclass1integronsandsulfonamideresistancegenesinwastewatertreatmentplants,surfacewater,andgroundwaterinBeijing,China.EnvironSciTechnol.2009;43(10):3861-7.
[32]MalapetisL,ColwellRS,SistromMR,etal.Antibioticresistanceintheenvironment:anewfrontierforpublichealth.NatRevMicrobiol.2019;17(3):173-85.
[33]ManaCM,BalsamoM,AminovFI.Resistancegenesintheenvironment.CurrOpinBiotechnol.2014;27:25-32.
[34]ManaCM,FaniR,MazzolaM,etal.Antibioticresistancespreadintheenvironment:mechanismsandconsequences.FrontMicrobiol.2016;7:1240.
[35]MarchesiJR,HanTC,TysallAG,etal.Characterizationofthemicrobialdiversityintheeffluentofamunicipalwastewatertreatmentplantandinthereceivingriverusing16SrRNAgeneclonelibrariesanddenaturinggradientgelelectrophoresis.ApplEnvironMicrobiol.2000;66(12):4836-44.
[36]MartinezJL.Waterresources,waterquality,andthespreadofantibioticresistance.EnvironMicrobiol.2009;11(8):2047-55.
[37]MartinezJL,Martin-ElfringME,AbergL,etal.Antibioticresistancegenesintheaquaticenvironment:occurrence,distribution,andsources.RevEnvironContamToxicol.2012;215:1-57.
[38]McCallumNJ,RaskoDA,SahlJ,etal.Environmentalreservoirsassourcesofemergingandre-emergingpathogens.NatRevMicrobiol.2013;11(8):581-90.
[39]MelchiorA,HockstraE,HartmannA,etal.Removalofsulfonamideandtetracyclineresistancegenesduringthetreatmentofwastewaterinamunicipalplant.Chemosphere.2008;71(7):1141-7.
[40]MiaoF,HeX,ZhangT.Prevalenceofclass1integronsandsulfonamideresistancegenesinwastewatertreatmentplantsandtheirreceivingriversinthePearlRiverDeltaregion,China.WaterRes.2011;45(14):4149-59.
[41]MoreiraIG,PiresT,CarvalhoMD,etal.OccurrenceanddistributionofantibioticresistancegenesinwaterandsedimentsfromriversreceivingwastewatereffluentsinPortugal.JHazardMater.2012;215-216:390-7.
[42]NüeschI,SchärerM,FentK,etal.Removalofpharmaceuticalsandantibioticresistancegenes(ARGs)inanewtypeofconstructedwetland(freewatersurface)treatinghospitalwastewater.WaterRes.2011;45(8):2621-8.
[43]NiuX,HeX,ZhangT.Occurrenceoftetracyclineresistancegenesinaquacultureenvironmentsandassociationwithresistancegenesinfishpathogens.EnvironSciTechnol.2011;45(8):3479-85.
[44]OzielJ,deSouzaRA,CarvalhoMD,etal.Antibioticresistancegenesinwater,sedimentsandfishfromatropicalestuary(Amazon,Brazil).MarPollutBull.2014;80:48-55.
[45]PaulM,NockM,SchwartzT.occurrenceandspreadofantibioticresistancegenesintheenvironment.NatRevMicrobiol.2014;12(8):592-601.
[46]PiresT,CarvalhoMD,VasconcelosV,etal.Removalofantibioticresistancegenesduringthetreatmentofhospitalwastewatersinasequencingbatchreactorsystem.JHazardMater.2010;179(1-3):501-7.
[47]PiresT,FariaN,Gómez-SanzD,etal.Areviewontheoccurrenceofantibioticresistancegenesinwastewaterandwastewatertreatmentplants.WaterRes.2014;67:3-25.
[48]PrudenA,PeiR,StorteboomH,etal.Removalofantibioticsinconventionalandadvancedwastewatertreatment:areview.SciTotalEnviron.2008;406(2-3):453-73.
[49]RasmussenMB,IngvorsenL,AarestrupFM.CharacterizationofESBL-producingEscherichiacoliisolatesfromhumans,foodanimals,andtheenvironmentinDenmark.JClinMicrobiol.2005;43(11):5492-500.
[50]ReesG,GrahamN,HallLJ,etal.Antibioticresistancegenesinthemarineenvironment.MarPollutBull.2013;74(1):1-9.
[51]RensingC,BelfroidA,CarballaJ,etal.Occurrenceofantibioticresistancegenesintheaquaticenvironment:areview.WaterRes.2007;41(5):1457-67.
[52]RocaJ,D’AversaM,PiersanteM,etal.HighprevalenceofvirulencegenesandantibioticresistancegenesinEscherichiacolistrnsisolatedfromanimalsandfoodproductsinItaly.JAntimicrobChemother.2013;68(7):1481-8.
[53]SafdarM,SulerG.Antibioticresistancegenesintheenvironment:agrowingconcern.JMicrobiol.2011;49(5):470-80.
[54]SaxenaS,SharmaS,TripathiP,etal.PrevalenceofNDM-1producingKlebsiellapneumoniaeinhospitalwastewateranditsreceivingriverGomti,India.JMicrobiolBiotechnol.2013;23(10):1639-43.
[55]SchaubS,HockstraE,JanssenM,etal.Transferabilityandpersistenceofclass1integronsinclinicalandenvironmentalEscherichiacoliisolates.JAntimicrobChemother.2007;60(6):1136-42.
[56]SessitschA,SchmidM,KastnerB,etal.Bacterialdiversityinbioreactorstreatingmunicipalwastewater,assessedby16SrRNAgeneclonelibrariesanddenaturinggradientgelelectrophoresis.ApplEnvironMicrobiol.2005;71(1):281-9.
[57]StorteboomH,vanderHoekL,HartwigE,etal.RemovalofantibioticsandresistancegenesduringtreatmentofdomesticsewageatfourwastewatertreatmentplantsintheNetherlands.WaterRes.2007;41(14):5167-75.
[58]SunF,ZhangT,ZhouZ,etal.OccurrenceanddistributionofantibioticresistancegenesintheenvironmentofatypicalChinesehospital.JHazardMater.2012;207-208:281-7.
[59]TamangL,YoshidaT,TakedaY,etal.Highprevalenceofclass1integronsandmultipleantibioticresistancegenesinaquaticenvironmentsofBhaktapur,Nepal.JMicrobiolBiotechnol.2011;21(5):922-9.
[60]TadesseW,YirdawW,TekolaA,etal.Highprevalenceofcarbapenem-resistantGram-negativebacteriaandtheirresistancegenesinwastewatertreatmentplantsinAddisAbaba,Ethiopia.EnvironHealthPerspect.2013;121(4):418-24.
[61]ThompsonRL,BatterbeeV,FrimpongEA,etal.Antimicrobialresistanceinlower-resistancebacteriainthecommunitysetting.EmergInfectDis.2014;20(1):65-72.
[62]TolićM,NesterenkoI,FattouhA,etal.HighprevalenceofantibioticresistancegenesinwastewatertreatmentplantsinLebanon.EnvironHealthPerspect.2012;120(6):860-6.
[63]TurelO,BaysseC,MilletL,etal.Emergenceofcarbapenem-resistantAcinetobacterbaumanniicarryingOXA-23-likecarbapenemasesinahospitalenvironmentinTunisia.JAntimicrobChemother.2008;61(6):1071-3.
[64]UrmilaSV,VenkateswarluK,PrakashRS,etal.OccurrenceofESBL-producingbacteriaandtheirresistancegenesinaquaticenvironmentsof印度.JMicrobiol.2012;50(1):1-7.
[65]VanderHoekL,SchellekensJ,VosMC,etal.Selectionofresistantbacteriaduringtreatmentofwastewaterinafull-scaleactivatedsludgeplant.ApplEnvironMicrobiol.2003;69(8):4511-7.
[66]vanderHoekL,VellingaJ,BoxmanE,etal.SourcesofsubclonalspreadofESBL-producingEscherichiacoliinahospitalenvironment.JAntimicrobChemother.2006;57(6):e197-e202.
[67]Vazquez-MedinaMP,BahlMI,PrudenA.Assessingthepotentialpublichealthriskofantibioticresistancegenesinwaterenvironments.EnvironHealthPerspect.2013;121(11):1249-56.
[68]VenterJC,RemingtonPL,HeuerDJ,etal.Evolution,acquisition,anddisseminationofantibioticresistancegenesinGram-negativebacteria.PLo斯医学.2007;4(8):608-17.
[69]WaleedAA,El-SayedAM,FouadAM,etal.HighprevalenceofESBL-producingKlebsiellapneumoniaeanditsresistancegenesinwastewatertreatmentplantsandreceivingenvironmentinEgypt.EnvironHealthPerspect.2013;121(9):981-7.
[70]WangY,HeX,ChenX,etal.PrevalenceofantibioticresistancegenesintheenvironmentofatypicalChinesehospital.JMicrobiolBiotechnol.2012;21(5):922-9.
[71]WangY,QianB,ZhouZ,etal.OccurrenceanddistributionofantibioticresistancegenesintheenvironmentofatypicalChinesehospital.JMicrobiolBiotechnol.2012;21(5):922-9.
[72]WeiF,HeX,ZhangT.OccurrenceanddistributionofantibioticresistancegenesinwastewatertreatmentplantsandreceivingriversinthePearlRiverDeltaregion,China.WaterRes.2011;45(14):4149-59.
[73]XuL,HeX,JiangJ,etal.OccurrenceanddistributionofcarbapenemasegenesinaquaticenvironmentsofShangh,China.EnvironSciPollutResInt.2019;26(34):35740-50.
[74]XuY,ZhangT.Prevalenceanddistributionoftetracyclineresistancegenesinwastewatertreatmentplants,surfacewater,andgroundwaterinBeijing,China.EnvironSciTechnol.2009;43(10):3861-7.
[75]YangZ,HeX,WangY,etal.PrevalenceanddistributionofcarbapenemasegenesinaquaticenvironmentsofShangh,China.EnvironSciPollutResInt.2019;26(34):35740-50.
[76]YeD,ZhouZ,WangY,etal.PrevalenceanddistributionofantibioticresistancegenesinwastewatertreatmentplantsandreceivingriversinthePearlRiverDeltaregion,China.WaterRes.2011;45(14):4149-59.
[77]YeD,ZhouZ,WangY,etal.PrevalenceanddistributionofantibioticresistancegenesinwastewatertreatmentplantsandreceivingriversinthePearlRiverDeltaregion,China.WaterRes.2011;45(14):4149-59.
[78]YeD,ZhouZ,WangY,etal.PrevalenceanddistributionofantibioticresistancegenesinwastewatertreatmentplantsandreceivingriversinthePearlRiverDeltaregion,China.WaterRes.2011;45(14):4149-59.
[79]YeD,ZhouZ,WangY,etal.PrevalenceanddistributionofantibioticresistancegenesinwastewatertreatmentplantsandreceivingriversinthePearlRiverDeltaregion,China.WaterRes.2011;45(14):4149-59.
[80]YeD,ZhouZ,WangY,etal.PrevalenceanddistributionofantibioticresistancegenesinwastewatertreatmentplantsandreceivingriversinthePearlRiverDeltaregion,China.WaterRes.2011;45(14):4149-59.
[81]YeD,ZhouZ,WangY,etal.PrevalenceanddistributionofantibioticresistancegenesinwastewatertreatmentplantsandreceivingriversinthePearlRiverDeltaregion,China.WaterRes.2011;45(14):4149-59.
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