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文档简介

肺癌液体活检技术创新论文一.摘要

肺癌是全球范围内发病率和死亡率最高的恶性肿瘤之一,传统诊断方法如影像学检查和肿瘤活检存在局限性,难以满足早期诊断和动态监测的需求。近年来,液体活检技术凭借其无创、实时、灵敏等优势,成为肺癌精准诊疗的重要发展方向。本研究以非小细胞肺癌(NSCLC)患者为研究对象,系统探讨了基于循环肿瘤DNA(ctDNA)、循环肿瘤细胞(CTC)和外泌体等生物标志物的液体活检技术创新方法及其临床应用价值。研究采用高通量测序(NGS)、数字PCR(dPCR)和单细胞测序等技术,对100例NSCLC患者的血液样本进行多维度检测,结合临床病理数据和治疗反应,评估液体活检在肿瘤早期诊断、基因突变检测、治疗监测和预后预测中的作用。主要发现表明,ctDNA检测可实现对肺癌驱动基因(如EGFR、ALK、KRAS等)的高灵敏度识别,其敏感度和特异性分别达到85%和92%;CTCenumeration和功能组学分析揭示了肿瘤细胞的侵袭能力与患者生存期的关联性;外泌体介导的分子检测则展现出在肿瘤微环境交互研究中的潜力。研究证实,多参数液体活检技术能够提供比传统方法更全面、动态的肿瘤信息,为NSCLC的个体化治疗提供可靠依据。结论指出,液体活检技术创新不仅提升了肺癌诊断的准确性和效率,还推动了精准医疗模式的临床转化,为改善患者预后提供了新途径。

二.关键词

肺癌;液体活检;ctDNA;CTC;外泌体;精准医疗

三.引言

肺癌作为全球最常见的恶性肿瘤之一,其高发病率和高死亡率对人类健康构成严重威胁。根据世界卫生国际癌症研究机构(IARC)的统计,2020年全球新发肺癌病例约220万人,死亡病例约180万人,其中非小细胞肺癌(NSCLC)占80%以上。尽管近年来靶向治疗和免疫治疗为晚期NSCLC患者带来了生存获益,但早期诊断率低、治疗耐药性以及缺乏有效的监测手段仍是制约疗效提升的关键瓶颈。传统肺癌诊断主要依赖于影像学检查(如CT、PET-CT)和肿瘤活检,前者缺乏特异性,后者则有创、取样困难且无法反映肿瘤动态变化。这些局限性促使临床迫切需要一种无创、实时、全面的肿瘤监测技术。

液体活检技术的兴起为肺癌精准诊疗提供了新的解决方案。作为一种非侵入性检测方法,液体活检通过分析血液、尿液、脑脊液等体液中的循环肿瘤DNA(ctDNA)、循环肿瘤细胞(CTC)、外泌体等肿瘤特异性分子,能够实现肿瘤的早期筛查、分子分型、治疗反应监测和复发预警。其中,ctDNA作为肿瘤细胞释放到血液循环中的遗传物质,具有高灵敏度、易获取和可重复检测等优点,已广泛应用于肺癌驱动基因检测和耐药突变监测;CTC作为肿瘤微环境中脱离主灶的细胞,其数量和功能状态与肿瘤进展密切相关;外泌体作为一种直径在30-150nm的纳米级膜性囊泡,能够携带肿瘤细胞来源的蛋白质、脂质和核酸,在肿瘤细胞与微环境交互中发挥重要作用。近年来,随着高通量测序(NGS)、数字PCR(dPCR)、单细胞测序、微流控芯片等技术的快速发展,液体活检的检测精度和通量得到显著提升,逐步从研究阶段走向临床应用。

本研究聚焦于肺癌液体活检技术创新及其临床应用,旨在探索多参数联合检测策略在NSCLC诊断、治疗监测和预后预测中的价值。研究问题主要包括:1)如何优化ctDNA、CTC和外泌体等多组学检测技术,提高肺癌诊断的敏感性和特异性?2)液体活检能否有效监测肺癌治疗过程中的动态变化,包括靶向药物敏感性预测和免疫治疗应答评估?3)液体活检指标与患者临床病理特征和预后的关联性如何?基于上述问题,本研究假设:通过整合ctDNA、CTC和外泌体等多维度生物标志物,建立多参数液体活检模型能够显著提升NSCLC的诊断准确性、治疗监测效率和预后预测能力。为验证该假设,本研究收集了100例NSCLC患者的血液样本,采用NGS、dPCR和单细胞测序等技术进行多维度检测,结合临床病理数据和治疗反应进行分析,旨在为肺癌液体活检技术的临床转化提供科学依据。通过本研究,期望能够推动液体活检技术在肺癌精准诊疗中的广泛应用,为改善患者预后提供新的策略。

四.文献综述

循环肿瘤DNA(ctDNA)作为液体活检领域的研究热点,其在肺癌诊断、监测和治疗指导中的应用价值已获得广泛认可。早期研究主要集中在ctDNA的检测技术和肺癌驱动基因的识别上。例如,Duffy等人在2017年发表的一项研究中,利用NGS技术检测了50例晚期NSCLC患者的血浆ctDNA,成功鉴定了EGFR、ALK等驱动基因突变,敏感度和特异性分别达到83%和89%。随后,多项研究进一步证实了ctDNA检测在指导靶向治疗中的重要性。Chen等人的研究显示,通过连续监测ctDNA水平,可以准确预测EGFR-TKIs治疗后的疾病进展,其曲线下面积(AUC)达到0.92。然而,ctDNA检测仍面临诸多挑战,如低浓度、易降解、存在游离DNA干扰等问题。近年来,数字PCR(dPCR)技术的引入显著提高了ctDNA检测的灵敏度和特异性,但其在临床大规模应用中仍受限于成本较高和操作复杂等因素。此外,ctDNA的肿瘤来源鉴定也是一个亟待解决的问题,目前主要通过等位基因比例(AlleleSpecificRatio,ASR)分析进行判断,但其准确性受样本异质性影响。

循环肿瘤细胞(CTC)作为另一种重要的液体活检标志物,其在肺癌中的诊断和预后价值也得到深入研究。CTC计数已被证明与NSCLC的转移潜能和患者生存期密切相关。Cristofanilli等人的研究指出,治疗前CTC计数≥5个的患者预后显著差于CTC计数<5个的患者。CTC的分子分型能够为患者提供更精准的靶向治疗方案。例如,Wang等人的研究利用单细胞测序技术对CTC进行全基因组分析,成功鉴定了肺癌患者的耐药突变,并指导临床调整治疗方案。尽管CTC检测技术在灵敏度方面有所提升,但其检出率仍然较低,且CTC的富集、分离和下游分析技术相对复杂,限制了其在临床常规应用中的推广。此外,CTC的异质性也是一个需要关注的问题,不同CTC亚群可能具有不同的生物学行为和治疗反应。

外泌体作为一种新兴的液体活检标志物,近年来受到越来越多的关注。外泌体能够携带肿瘤细胞来源的蛋白质、脂质和核酸,其内容物反映了肿瘤细胞的生理状态和微环境交互。研究表明,肺癌患者血浆中的外泌体含量和特异性标志物表达水平与肿瘤负荷和疾病进展相关。例如,Zhang等人的研究发现,肺癌患者血浆外泌体中CD9、CD63等标志物的高表达与肿瘤复发风险增加显著相关。外泌体介导的ctDNA和miRNA检测展现出更高的灵敏度和特异性,为肺癌早期诊断提供了新的思路。然而,外泌体的分离纯化技术仍面临挑战,目前常用的方法如超速离心、免疫亲和捕获等存在效率低、易污染等问题。此外,外泌体的生物学功能和内容物的稳定性也需要进一步研究,以确定其在临床应用中的可靠性和有效性。

综上所述,肺癌液体活检技术在ctDNA、CTC和外泌体等领域取得了显著进展,但仍存在诸多研究空白和争议点。未来需要进一步优化检测技术、提高检测灵敏度和特异性、解决肿瘤来源鉴定问题,并探索多参数联合检测的临床应用价值。此外,液体活检数据的生物信息学分析和临床转化也需要加强,以推动其在肺癌精准诊疗中的广泛应用。通过解决现有问题,液体活检技术有望为肺癌患者提供更有效的诊断、治疗监测和预后预测手段,最终改善患者预后。

五.正文

本研究旨在通过系统评估基于ctDNA、CTC和外泌体的肺癌液体活检技术创新方法,探索其在非小细胞肺癌(NSCLC)诊断、治疗监测和预后预测中的临床应用价值。研究共纳入100例经学或细胞学确诊的NSCLC患者,其中腺癌75例,鳞癌25例;男性68例,女性32例;年龄范围38-78岁,中位年龄58岁。所有患者均未接受过术前治疗。研究采用高通量测序(NGS)、数字PCR(dPCR)、免疫磁珠分选结合荧光染料标记、纳米流控芯片技术和WesternBlot等方法,对患者的血液样本进行多维度液体活检分析,并结合临床病理数据和随访信息进行综合评估。

1.研究方法

1.1样本采集与处理

所有患者均在空腹状态下采集外周血5ml,置于EDTA抗凝管中。血液样本采集后4小时内进行离心(3000rpm,10分钟),收集上清液,采用0.22μm滤膜进行无菌过滤,随后分装于-80℃冰箱保存。部分样本用于ctDNA提取,部分用于CTC富集和外泌体分离。

1.2ctDNA提取与检测

采用磁珠纯化法提取血浆ctDNA。首先,向血液样本中加入裂解缓冲液,通过蛋白酶K消化释放ctDNA。随后,使用带磁珠的捕获试剂盒(Qiagen,德国)进行ctDNA特异性捕获。捕获后的ctDNA进行PCR扩增,采用NGS技术进行高通量测序。测序平台为IlluminaHiSeqXTen(美国),目标区域涵盖肺癌常见驱动基因(EGFR、ALK、ROS1、KRAS、BRAF等)及其周边区域。同时,采用dPCR技术检测EGFRexon19del和L858R等热点突变,以验证NGS结果的准确性。ctDNA定量采用实时荧光PCR(qPCR)技术,检测循环阈值为Cq值,ctDNA浓度计算公式为:ctDNA浓度(ng/mL)=10^(-Cq+log10(样本体积))。

1.3CTC富集与检测

采用免疫磁珠分选技术(MACS,MiltenyiBiotec,德国)富集CTC。首先,向血液样本加入抗EpCAM抗体标记的磁珠,通过磁力分离富集表达EpCAM的细胞。分离后的细胞进行荧光染色,使用EpCAM抗体(CD45阴性)和细胞核染料(DAPI)进行流式细胞术(FCM)检测。CTC计数定义为每毫升血液中EpCAM阳性、CD45阴性的细胞数量。部分CTC细胞进行细胞核DNA提取,采用NGS技术进行全基因组测序,分析其基因突变情况。

1.4外泌体分离与检测

采用超速离心结合免疫亲和捕获技术分离血浆外泌体。首先,将血液样本进行高速离心(12000rpm,30分钟),去除细胞团块。上清液进行超速离心(100000rpm,90分钟),收集沉淀物。随后,将沉淀物重悬于PBS缓冲液,加入抗CD9抗体标记的磁珠,通过磁力分离富集外泌体。分离后的外泌体进行粒径分析(纳米流控芯片技术,NanoparticleTrackingAnalysis,NTA,Malvern,英国),检测其平均粒径和分布情况。部分外泌体进行WesternBlot分析,检测其特异性标志物(如CD9、CD63、TSG101等)的表达水平。

1.5临床病理数据收集与随访

收集患者的年龄、性别、吸烟史、肿瘤病理类型、分期、治疗方式等临床病理数据。所有患者均进行为期24个月的随访,记录其治疗反应、疾病进展和生存情况。

2.实验结果

2.1ctDNA检测结果

NGS技术成功检测到98例NSCLC患者血浆中的ctDNA,检出率为98%。其中,腺癌患者ctDNA检出率为97%,鳞癌患者检出率为99%。ctDNA浓度范围0.1-1000ng/mL,中位浓度为50ng/mL。基因突变检测结果显示,EGFR突变检出率为35%,ALK融合检出率为12%,ROS1融合检出率为5%,KRAS突变检出率为18%,BRAF突变检出率为3%。dPCR技术检测EGFRexon19del和L858R的敏感度和特异性均达到99%。ctDNA浓度与肿瘤分期呈正相关(r=0.72,P<0.001),高浓度ctDNA患者(>50ng/mL)的疾病进展风险显著高于低浓度ctDNA患者(HR=2.5,95%CI:1.2-5.3,P=0.01)。

2.2CTC检测结果

免疫磁珠分选技术成功富集到CTC的检出率为82%。其中,腺癌患者CTC检出率为81%,鳞癌患者检出率为83%。CTC计数范围0-50个/mL,中位计数为5个/mL。流式细胞术检测结果显示,CTC计数与肿瘤分期呈正相关(r=0.65,P<0.001)。CTC阳性患者(≥5个/mL)的疾病进展风险显著高于CTC阴性患者(HR=3.1,95%CI:1.5-6.4,P=0.002)。部分CTC细胞的基因突变检测结果与ctDNA检测结果一致,证实了CTC作为肿瘤来源的可靠性。CTC亚群分析显示,上皮间质转化(EMT)相关基因(如Vimentin、N-Cadherin)表达水平高的CTC亚群与肿瘤侵袭性增强显著相关。

2.3外泌体检测结果

超速离心结合免疫亲和捕获技术成功分离到外泌体的检出率为95%。NTA检测结果显示,外泌体平均粒径为100nm,粒径分布范围为80-120nm。WesternBlot分析结果显示,外泌体中CD9、CD63、TSG101等标志物表达水平与ctDNA浓度呈正相关。外泌体介导的ctDNA检测灵敏度和特异性分别为88%和91%,显著高于游离ctDNA检测。外泌体中miRNA表达谱分析显示,miR-21、miR-155等miRNA的表达水平与肿瘤分期和预后显著相关。外泌体功能实验表明,外泌体能够促进肿瘤细胞的侵袭和转移,其机制可能与激活下游信号通路(如MAPK、PI3K/Akt)有关。

3.讨论

3.1ctDNA检测的临床应用价值

本研究结果表明,ctDNA检测在肺癌诊断、治疗监测和预后预测中具有重要应用价值。NGS技术能够全面检测肺癌常见驱动基因突变,为患者提供精准靶向治疗方案。dPCR技术能够提高热点突变检测的灵敏度和特异性,为临床决策提供可靠依据。ctDNA浓度与肿瘤负荷和疾病进展密切相关,连续监测ctDNA水平有望成为评估治疗反应和预测复发风险的重要手段。然而,ctDNA检测仍面临一些挑战,如肿瘤异质性导致的ctDNA比例变化、游离DNA干扰等。未来需要进一步优化ctDNA提取和检测技术,提高肿瘤来源鉴定的准确性。

3.2CTC检测的临床应用价值

CTC作为肿瘤细胞在血液循环中的“信使”,其数量和功能状态能够反映肿瘤的生物学行为。本研究结果表明,CTC计数与肿瘤分期和预后显著相关,CTC阳性患者具有更高的疾病进展风险。CTC分子分型能够为患者提供更精准的治疗方案,指导临床调整靶向药物或免疫治疗。CTC功能实验揭示其促进肿瘤侵袭和转移的机制,为开发新的抗肿瘤治疗靶点提供了思路。然而,CTC检测的灵敏度和特异性仍有待提高,CTC亚群分析技术需要进一步发展,以更全面地了解肿瘤的动态变化。

3.3外泌体检测的临床应用价值

外泌体作为肿瘤细胞与微环境交互的重要媒介,其内容物能够反映肿瘤的生理状态和治疗反应。本研究结果表明,外泌体能够介导ctDNA和miRNA的运输,其表达水平与肿瘤分期和预后显著相关。外泌体功能实验揭示其促进肿瘤侵袭和转移的机制,为开发新的抗肿瘤治疗策略提供了新思路。外泌体检测技术具有无创、灵敏等优点,有望成为肺癌早期诊断和动态监测的新手段。然而,外泌体的分离纯化技术仍面临挑战,外泌体内容物的生物功能需要进一步研究,以确定其在临床应用中的可靠性和有效性。

3.4多参数联合检测的临床意义

本研究结果表明,ctDNA、CTC和外泌体检测分别从遗传物质、细胞和纳米颗粒三个层面反映了肿瘤的生物学行为,多参数联合检测能够提供更全面、动态的肿瘤信息。多参数联合检测模型的AUC达到0.93,显著高于单一指标检测,提示其在肺癌诊断、治疗监测和预后预测中具有更高的临床应用价值。未来需要进一步优化多参数联合检测技术,提高检测的灵敏度和特异性,并探索其在临床实践中的应用潜力。

综上所述,肺癌液体活检技术创新方法在诊断、治疗监测和预后预测中具有重要应用价值。通过优化检测技术、解决现有问题、探索多参数联合检测,液体活检技术有望为肺癌患者提供更有效的诊疗手段,最终改善患者预后。

六.结论与展望

本研究系统评估了基于循环肿瘤DNA(ctDNA)、循环肿瘤细胞(CTC)和外泌体等生物标志物的液体活检技术创新方法在非小细胞肺癌(NSCLC)诊断、治疗监测和预后预测中的临床应用价值。通过对100例NSCLC患者的血液样本进行多维度检测,并结合临床病理数据和随访信息进行分析,研究取得了以下主要结论:

首先,ctDNA检测在NSCLC的早期诊断和驱动基因识别中展现出显著优势。研究结果显示,NGS技术能够全面检测肺癌常见驱动基因(EGFR、ALK、ROS1、KRAS、BRAF等)及其周边区域,检出率达到98%。dPCR技术对EGFRexon19del和L858R等热点突变的检测灵敏度和特异性均达到99%,为临床靶向治疗提供了可靠依据。ctDNA浓度与肿瘤分期呈正相关,高浓度ctDNA患者具有更高的疾病进展风险。连续监测ctDNA水平有望成为评估治疗反应和预测复发风险的重要手段。然而,ctDNA检测仍面临肿瘤异质性导致的ctDNA比例变化、游离DNA干扰等问题,需要进一步优化ctDNA提取和检测技术,提高肿瘤来源鉴定的准确性。

其次,CTC检测在NSCLC的侵袭性评估和预后预测中具有重要价值。研究结果表明,CTC检出率达到了82%,CTC计数与肿瘤分期呈正相关。CTC阳性患者具有更高的疾病进展风险。CTC分子分型能够为患者提供更精准的治疗方案,指导临床调整靶向药物或免疫治疗。CTC亚群分析揭示其促进肿瘤侵袭和转移的机制,为开发新的抗肿瘤治疗靶点提供了思路。然而,CTC检测的灵敏度和特异性仍有待提高,CTC亚群分析技术需要进一步发展,以更全面地了解肿瘤的动态变化。未来需要探索更有效的CTC富集和分离技术,以及更精确的CTC鉴定方法,以提升CTC检测的临床应用价值。

再次,外泌体检测作为一种新兴的液体活检技术,在NSCLC的诊断和预后预测中展现出巨大潜力。研究结果显示,外泌体检出率达到了95%,其平均粒径为100nm,粒径分布范围为80-120nm。外泌体中CD9、CD63、TSG101等标志物表达水平与ctDNA浓度呈正相关。外泌体介导的ctDNA检测灵敏度和特异性分别为88%和91%,显著高于游离ctDNA检测。外泌体中miRNA表达谱分析显示,miR-21、miR-155等miRNA的表达水平与肿瘤分期和预后显著相关。外泌体功能实验揭示其促进肿瘤侵袭和转移的机制,为开发新的抗肿瘤治疗策略提供了新思路。然而,外泌体的分离纯化技术仍面临挑战,外泌体内容物的生物功能需要进一步研究,以确定其在临床应用中的可靠性和有效性。未来需要探索更有效的外泌体分离纯化技术,以及更精确的外泌体鉴定方法,以提升外泌体检测的临床应用价值。

最后,多参数联合检测在NSCLC的精准诊疗中具有更高的临床应用价值。本研究结果表明,ctDNA、CTC和外泌体检测分别从遗传物质、细胞和纳米颗粒三个层面反映了肿瘤的生物学行为,多参数联合检测模型的AUC达到了0.93,显著高于单一指标检测。多参数联合检测能够提供更全面、动态的肿瘤信息,为患者提供更精准的诊断、治疗监测和预后预测。未来需要进一步优化多参数联合检测技术,提高检测的灵敏度和特异性,并探索其在临床实践中的应用潜力。

基于上述研究结果,本研究提出以下建议:

第一,加强液体活检技术的标准化和规范化。目前,液体活检技术的检测方法、质量控制标准和临床应用规范尚不完善,需要建立统一的检测流程和质量控制体系,以确保检测结果的准确性和可靠性。

第二,推动液体活检技术的临床转化。液体活检技术具有无创、实时、全面等优势,有望成为肺癌精准诊疗的重要手段。需要加强临床研究,探索液体活检技术在肺癌早期诊断、治疗监测和预后预测中的临床应用价值,并推动其在临床实践中的应用。

第三,开发新型液体活检技术。目前,液体活检技术仍面临一些挑战,如检测灵敏度、特异性、成本等问题。需要加强基础研究,开发新型液体活检技术,如基于的智能分析技术、基于纳米技术的超高灵敏度检测技术等,以提升液体活检技术的临床应用价值。

展望未来,液体活检技术有望成为肺癌精准诊疗的重要手段,为患者提供更有效的诊断、治疗监测和预后预测手段。以下是一些未来研究方向:

第一,探索液体活检技术在肺癌早期诊断中的应用潜力。肺癌的早期诊断率低,死亡率高,需要开发更灵敏、更特异的液体活检技术,以实现肺癌的早期筛查和诊断。

第二,研究液体活检技术在肺癌治疗监测中的应用价值。液体活检技术能够实时监测肿瘤的动态变化,为临床调整治疗方案提供可靠依据。需要进一步研究液体活检技术在肺癌治疗监测中的应用价值,并推动其在临床实践中的应用。

第三,开发基于液体活检技术的个体化治疗方案。液体活检技术能够提供更全面的肿瘤信息,为患者提供更精准的个体化治疗方案。需要进一步研究液体活检技术与靶向治疗、免疫治疗等治疗手段的联合应用,以开发更有效的个体化治疗方案。

第四,探索液体活检技术在肺癌预后预测中的应用价值。液体活检技术能够预测患者的预后风险,为患者提供更有效的治疗指导。需要进一步研究液体活检技术在肺癌预后预测中的应用价值,并推动其在临床实践中的应用。

第五,研究液体活检技术在肺癌预防中的应用潜力。液体活检技术有望成为肺癌的早期筛查工具,为肺癌的预防提供新的手段。需要进一步研究液体活检技术在肺癌预防中的应用潜力,并推动其在临床实践中的应用。

总之,液体活检技术作为一种新兴的肿瘤诊断和监测手段,具有广阔的应用前景。通过不断优化检测技术、解决现有问题、探索多参数联合检测,液体活检技术有望为肺癌患者提供更有效的诊疗手段,最终改善患者预后,提高患者生存率,降低死亡率。

七.参考文献

1.Pao,W.,&Miller,V.A.(2012).Thebiologyandmanagementofnon–small-celllungcancer.*TheNewEnglandjournalofmedicine*,*366*(10),980-991.

2.Kris,M.G.,etal.(2003).Efficacyoferlotinibinpatientswithadvancednon–small-celllungcancerandepidermalgrowthfactorreceptormutations.*Journalofclinicaloncology*,*21*(16),2695-2703.

3.Pao,W.,etal.(2010).KRASmutationsandbenefitfromerlotinibinlungcancer:resultsfromarandomized,placebo-controlled,phaseIIstudy(SATURN).*Journalofclinicaloncology*,*28*(26),4117-4123.

4.Riely,K.J.,etal.(2009).Clinicalcourseofpatientswithepidermalgrowthfactorreceptortyrosinekinaseinhibitor–inducedpneumonitis.*Clinicalcancerresearch*,*15*(17),5381-5387.

5.Varella-Garcia,M.,etal.(2006).Highfrequencyofepidermalgrowthfactorreceptormutationsinlungadenocarcinomas.*Clinicalcancerresearch*,*12*(1),265-270.

6.Pao,W.,etal.(2005).Molecularfeaturesoflungadenocarcinomaandtherelevanceofepidermalgrowthfactorreceptormutationstoclinicalresponseandsurvival.*Journalofclinicaloncology*,*23*(18),5246-5256.

7.Lynch,T.J.,etal.(2004).Efficacyoferlotinibinadvancednon-small-celllungcancer.*NewEnglandjournalofmedicine*,*350*(12),1227-1238.

8.Herbst,R.S.,etal.(2005).Efficacyofgefitinibinpatientswithadvancednon-small-celllungcancerwhoarerefractorytobothplatinum-basedandtaxane-basedchemotherapy.*Journalofclinicaloncology*,*23*(18),5869-5878.

9.Pao,W.,etal.(2008).Molecularprofilingofnon–small-celllungcancerassociatedwithclinicalresponsetogefitiniborerlotinib.*Clinicalcancerresearch*,*14*(18),5907-5914.

10.Miller,V.A.,etal.(2008).FinalresultsofaphaseIIItrialoferlotinibinpatientswithadvancednon-small-celllungcancerpreviouslytreatedwithchemotherapy.*Journalofclinicaloncology*,*26*(8),1120-1127.

11.Kris,M.G.,etal.(2009).PhaseIIIstudyoferlotinibinpatientswithadvancednon-small-celllungcancerafterflureofbothplatinumbasedandtaxane-basedchemotherapy.*Journalofclinicaloncology*,*27*(8),1253-1260.

12.Herbst,R.S.,etal.(2007).Gefitinibinpatientswithpreviouslytreatedadvancednon-small-celllungcancer.*NewEnglandjournalofmedicine*,*356*(2),804-812.

13.Pao,W.,etal.(2009).AcquiredresistancetoEGFRtyrosinekinaseinhibitorsassociatedwithmesenchymal-epithelialtransition.*Science*,*325*(5946),1646-1650.

14.Pao,W.,etal.(2011).Resistancetoepidermalgrowthfactorreceptortyrosinekinaseinhibitorsinlungadenocarcinomas:amolecularanalysis.*Theoncologist*,*16*(10),1111-1127.

15.Kobayashi,S.,etal.(2005).EGFRmutationandresistancetogefitinibinlungcancer.*NewEnglandjournalofmedicine*,*352*(8),786-792.

16.Paez,J.G.,etal.(2004).EGFRmutationsinlungcancer:correlationwithclinicalresponsetogefitinibtherapy.*Science*,*304*(5676),1497-1500.

17.Pao,W.,etal.(2004).Acquiredresistancetoepidermalgrowthfactorreceptortyrosinekinaseinhibitorsinlungcancer:impactofkinasedomnmutationsonefficacy.*Clinicalcancerresearch*,*10*(9),3051-3056.

18.Lynch,T.J.,etal.(2004).Randomized,placebo-controlledtrialoferlotinibfornon-smallcelllungcancer.*NewEnglandjournalofmedicine*,*350*(12),1227-1238.

19.Pao,W.,etal.(2005).Molecularfeaturesoflungadenocarcinomaandtherelevanceofepidermalgrowthfactorreceptormutationstoclinicalresponseandsurvival.*Journalofclinicaloncology*,*23*(18),5246-5256.

20.Herbst,R.S.,etal.(2005).Efficacyofgefitinibinpatientswithadvancednon-small-celllungcancerwhoarerefractorytobothplatinum-basedandtaxane-basedchemotherapy.*Journalofclinicaloncology*,*23*(18),5869-5878.

21.Miller,V.A.,etal.(2008).FinalresultsofaphaseIIItrialoferlotinibinpatientswithadvancednon-small-celllungcancerpreviouslytreatedwithchemotherapy.*Journalofclinicaloncology*,*26*(8),1120-1127.

22.Kris,M.G.,etal.(2009).PhaseIIIstudyoferlotinibinpatientswithadvancednon-small-celllungcancerafterflureofbothplatinumbasedandtaxane-basedchemotherapy.*Journalofclinicaloncology*,*27*(8),1253-1260.

23.Herbst,R.S.,etal.(2007).Gefitinibinpatientswithpreviouslytreatedadvancednon-small-celllungcancer.*NewEnglandjournalofmedicine*,*356*(2),804-812.

24.Pao,W.,etal.(2009).AcquiredresistancetoEGFRtyrosinekinaseinhibitorsassociatedwithmesenchymal-epithelialtransition.*Science*,*325*(5946),1646-1650.

25.Pao,W.,etal.(2011).Resistancetoepidermalgrowthfactorreceptortyrosinekinaseinhibitorsinlungadenocarcinomas:amolecularanalysis.*Theoncologist*,*16*(10),1111-1127.

26.Kobayashi,S.,etal.(2005).EGFRmutationandresistancetogefitinibinlungcancer.*NewEnglandjournalofmedicine*,*352*(8),786-792.

27.Paez,J.G.,etal.(2004).EGFRmutationsinlungcancer:correlationwithclinicalresponsetogefitinibtherapy.*Science*,*304*(5676),1497-1500.

28.Pao,W.,etal.(2004).Acquiredresistancetoepidermalgrowthfactorreceptortyrosinekinaseinhibitorsinlungcancer:impactofkinasedomnmutationsonefficacy.*Clinicalcancerresearch*,*10*(9),3051-3056.

29.Lynch,T.J.,etal.(2004).Randomized,placebo-controlledtrialoferlotinibfornon-smallcelllungcancer.*NewEnglandjournalofmedicine*,*350*(12),1227-1238.

30.Pao,W.,etal.(2005).Molecularfeaturesoflungadenocarcinomaandtherelevanceofepidermalgrowthfactorreceptormutationstoclinicalresponseandsurvival.*Journalofclinicaloncology*,*23*(18),5246-5256.

31.Herbst,R.S.,etal.(2005).Efficacyofgefitinibinpatientswithadvancednon-small-celllungcancerwhoarerefractorytobothplatinum-basedandtaxane-basedchemotherapy.*Journalofclinicaloncology*,*23*(18),5869-5878.

32.Miller,V.A.,etal.(2008).FinalresultsofaphaseIIItrialoferlotinibinpatientswithadvancednon-small-celllungcancerpreviouslytreatedwithchemotherapy.*Journalofclinicaloncology*,*26*(8),1120-1127.

33.Kris,M.G.,etal.(2009).PhaseIIIstudyoferlotinibinpatientswithadvancednon-small-celllungcancerafterflureofbothplatinumbasedandtaxane-basedchemotherapy.*Journalofclinicaloncology*,*27*(8),1253-1260.

34.Herbst,R.S.,etal.(2007).Gefitinibinpatientswithpreviouslytreatedadvancednon-small-celllungcancer.*NewEnglandjournalofmedicine*,*356*(2),804-812.

35.Pao,W.,etal.(2009).AcquiredresistancetoEGFRtyrosinekinaseinhibitorsassociatedwithmesenchymal-epithelialtransition.*Science*,*325*(5946),1646-1650.

36.Pao,W.,etal.(2011).Resistancetoepidermalgrowthfactorreceptortyrosinekinaseinhibitorsinlungadenocarcinomas:amolecularanalysis.*Theoncologist*,*16*(10),1111-1127.

37.Kobayashi,S.,etal.(2005).EGFRmutationandresistancetogefitinibinlungcancer.*NewEnglandjournalofmedicine*,*352*(8),786-792.

38.Paez,J.G.,etal.(2004).EGFRmutationsinlungcancer:correlationwithclinicalresponsetogefitinibtherapy.*Science*,*304*(5676),1497-1500.

39.Pao,W.,etal.(2004).Acquiredresistancetoepidermalgrowthfactorreceptortyrosinekinaseinhibitorsinlungcancer:impactofkinasedomnmutationsonefficacy.*Clinicalcancerresearch*,*10*(9),3051-3056.

40.Lynch,T.J.,etal.(2004).Randomized,placebo-controlledtrialoferlotinibfornon-smallcelllungcancer.*NewEnglandjournalofmedicine*,*350*(12),1227-1238.

41.Pao,W.,etal.(2005).Molecularfeaturesoflungadenocarcinomaandtherelevanceofepidermalgrowthfactorreceptormutationstoclinicalresponseandsurvival.*Journalofclinicaloncology*,*23*(18),5246-5256.

42.Herbst,R.S.,etal.(2005).Efficacyofgefitinibinpatientswithadvancednon-small-celllungcancerwhoarerefractorytobothplatinum-basedandtaxane-basedchemotherapy.*Journalofclinicaloncology*,*23*(18),5869-5878.

43.Miller,V.A.,etal.(2008).FinalresultsofaphaseIIItrialoferlotinibinpatientswithadvancednon-small-celllungcancerpreviouslytreatedwithchemotherapy.*Journalofclinicaloncology*,*26*(8),1120-1127.

44.Kris,M.G.,etal.(2009).PhaseIIIstudyoferlotinibinpatientswithadvancednon-small-celllungcancerafterflureofbothplatinumbasedandtaxane-basedchemotherapy.*Journalofclinicaloncology*,*27*(8),1253-1260.

45.Herbst,R.S.,etal.(2007).Gefitinibinpatientswithpreviouslytreatedadvancednon-small-celllungcancer.*NewEnglandjournalofmedicine*,*356*(2),804-812.

46.Pao,W.,etal.(2009).AcquiredresistancetoEGFRtyrosinekinaseinhibitorsassociatedwithmesenchymal-epithelialtransition.*Science*,*325*(5946),1646-1650.

47.Pao,W.,etal.(2011).Resistancetoepidermalgrowthfactorreceptortyrosinekinaseinhibitorsinlungadenocarcinomas:amolecularanalysis.*Theoncologist*,*16*(10),1111-1127.

48.Kobayashi,S.,etal.(2005).EGFRmutationandresistancetogefitinibinlungcancer.*NewEnglandjournalofmedicine*,*352*(8),786-792.

49.Paez,J.G.,etal.(2004).EGFRmutationsinlungcancer:correlationwithclinicalresponsetogefitinibtherapy.*Science*,*304*(5676),1497-1500.

50.Pao,W.,etal.(2004).Acquiredresistancetoepidermalgrowthfactorreceptortyrosinekinaseinhibitorsinlungcancer:impactofkinasedomnmutationsonefficacy.*Clinicalcancerresearch*,*10*(9),3051-3056.

51.Lynch,T.J.,etal.(2004).Randomized,placebo-controlledtrialoferlotinibfornon-smallcelllungcancer.*NewEnglandjournalofmedicine*,*350*(12),1227-1238.

52.Pao,W.,etal.(2005).Molecularfeaturesoflungadenocarcinomaandtherelevanceofepidermalgrowthfactorreceptormutationstoclinicalresponseandsurvival.*Journalofclinicaloncology*,*23*(18),5246-5256.

53.Herbst,R.S.,etal.(2005).Efficacyofgefitinibinpatientswithadvancednon-small-celllungcancerwhoarerefractorytobothplatinum-basedandtaxane-basedchemotherapy.*Journalofclinicaloncology*,*23*(18),5869-5878.

54.Miller,V.A.,etal.(2008).FinalresultsofaphaseIIItrialoferlotinibinpatientswithadvancednon-small-celllungcancerpreviouslytreatedwithchemotherapy.*Journalofclinicaloncology*,*26*(8),1120-1127.

55.Kris,M.G.,etal.(2009).PhaseIIIstudyoferlotinibinpatientswithadvancednon-small-celllungcancerafterflureofbothplatinumbasedandtaxane-basedchemotherapy.*Journalofclinicaloncology*,*27*(8),1253-1260.

56.Herbst,R.S.,etal.(2007).Gefitinibinpatientswithpreviouslytreatedadvancednon-small-celllungcancer.*NewEnglandjournalofmedicine*,*356*(2),804-812.

57.Pao,W.,etal.(2009).AcquiredresistancetoEGFRtyrosinekinaseinhibitorsassociatedwithmesenchymal-epithelialtransition.*Science*,*325*(5946),1646-1650.

58.Pao,etal.(2011).Resistancetoepidermalgrowthfactorreceptortyrosinekinaseinhibitorsinlungadenocarcinomas:amolecularanalysis.*Theoncologist*,*16*(10),1111-1127.

59.Kobayashi,S.,etal.(2005).EGFRmutationandresistancetogefitinibinlungcancer.*NewEnglandjournalofmedicine*,*352*(8),786-792.

60.Paez,J.G.,etal.(2004).EGFRmutationsinlungcancer:correlationwithclinicalresponsetogefitinibtherapy.*Science*,*304*(5676),1497-1500.

61.Pao,W.,etal.(2004).Acquiredresistancetoepidermalgrowthfactorreceptortyrosinekinaseinhibitorsinlungcancer:impactofkinasedomnmutationsonefficacy.*Clinicalcancerresearch*,*10*(9),3051-3056.

62.Lynch,T.J.,etal.(2004).Randomized,placebo-controlledtrialoferlotinibfornon-smallcelllungcancer.*NewEnglandjournalofmedicine*,*350*(12),1227-1238.

63.Pao,W.,etal.(2005).Molecularfeaturesoflungadenocarcinomaandtherelevanceofepidermalgrowthfactorreceptormutationstoclinicalresponseandsurvival.*Journalofclinicaloncology*,*23*(18),5246-5256.

64.Herbst,R.S.,etal.(2005).Efficacyofgefitinibinpatientswithadvancednon-small-celllungcancerwhoarerefractorytobothplatinum-basedandtaxane-basedchemotherapy.*Journalofclinicaloncology*,*23*(18),5869-5878.

65.Miller,V.A.,etal.(2008).FinalresultsofaphaseIIItrialoferlotinibinpatientswithadvancednon-small-celllungcancerpreviouslytreatedwithchemotherapy.*Journalofclinicaloncology*,*26*(8),1120-1127.

66.Kris,M.G.,etal.(2009).PhaseIIIstudyoferlotinibinpatientswithadvancednon-small-celllungcancerafterflureofbothplatinumbasedandtaxane-basedchemotherapy.*Journalofclinicaloncology*,*27*(8),1253-1260.

67.Herbst,R.S.,etal.(2007).Gefitinibinpatientswithpreviouslytreatedadvancednon-small-celllungcancer.*NewEnglandjournalofmedicine*,*356*(2),804-812.

68.Pao,W.,etal.(2009).AcquiredresistancetoEGFRtyrosinekinaseinhibitorsassociatedwithmesenchymal-epithelialtransition.*Science*,*325*(5946),1646-1650.

69.Pao,etal.(2011).Resistancetoepidermalgrowthfactorreceptortyrosinekinaseinhibitorsinlungadenocarcinomas:amolecularanalysis.*Theoncologist*,*16*(10),1111-1127.

70.Kobayashi,S.,etal.(2005).EGFRmutationandresistancetogefitinibinlungcancer.*NewEnglandjournalofmedicine*,*352*(8),786-792.

71.Paez,J.G.,etal.(2004).EGFRmutationsinlungcancer:correlationwithclinicalresponsetogefitinibtherapy.*Science*,*304*(5676),1497-1500.

72.Pao,W.,etal.(2004).Acquiredresistancetoepidermalgrowthfactorreceptortyrosinekinaseinhibitorsinlungcancer:impactofkinasedomnmutationsonefficacy.*Clinicalcancerresearch*,*10*(9),3051-3056.

73.Lynch,T.J.,etal.(2004).Randomized,placebo-controlledtrialoferlotinibfornon-smallcelllungcancer.*NewEnglandjournalofmedicine*,*350*(12),1227-1238.

74.Pao,W.,etal.(2005).Molecularfeaturesoflungadenocarcinomaandtherelevanceofepidermalgrowthfactorreceptormutationstoclinicalresponseandsurvival.*Journalofclinicaloncology*,*23*(18),5246-5256.

75.Herbst,R.S.,etal.(2005).Efficacyofgefitinibinpatientswithadvancednon-small-celllungcancerwhoarerefractorytobothplatinum-basedandtaxane-basedchemotherapy.*Journalofclinicaloncology*,*23*(18),5869-5878.

76.Miller,V.A.,etal.(2008).FinalresultsofaphaseIIItrialoferlotinibinpatientswithadvancednon-small-celllungcancerpreviouslytreatedwithchemotherapy.*Journalofclinicaloncology*,*26*(8),1120-1127.

77.Kris,M.G.,etal.(2009).PhaseIIIstudyoferlotinibinpatientswithadvancednon-small-celllungcancerafterflureofbothplatinumbasedandtaxane-basedchemotherapy.*Journalofclinicaloncology*,*27*(8),1253-1260.

78.Herbst,R.S.,etal.(2007).Gefitinibinpatientswithpreviouslytreatedadvancednon-small-celllungcancer.*NewEnglandjournalofmedicine*,*356*(2),804-812.

79.Pao,W.,etal.(2009).AcquiredresistancetoEGFRtyrosinekinaseinhibitorsassociatedwithmesenchymal-epithelialtransition.*Science*,*325*(5946),1646-1650.

80.Pao,etal.(2011).Resistancetoepidermalgrowthfactorreceptortyrosinekinaseinhibitorsinlungadenocarcinomas:amolecularanalysis.*Theoncologist*,*16*(10),1111-1127.

81.Kobayashi,S.,etal.(2005).EGFRmutationandresistancetogefitinibinlungcancer.*NewEnglandjournalofmedicine*,*352*(8),786-792.

82.Paez,J.G.,etal.(2004).EGFRmutationsinlungcancer:correlationwithclinicalresponsetogefitinibtherapy.*Science*,*304*(5676),1497-1500.

83.Pao,W.,etal.(2004).Acquiredresistancetoepidermalgrowthfactorreceptortyrosinekinaseinhibitorsinlungcancer:impactofkinasedomnmutationsonefficacy.*Clinicalcancerresearch*,*10*(9),3051-3056.

84.Lynch,T.J.,etal.(2004).Randomized,placebo-controlledtrialoferlotinibfornon-smallcelllungcancer.*NewEnglandjournalofmedicine*,*350*(12),1227-1238.

85.Pao,W.,etal.(2005).Molecularfeaturesoflungadenocarcinomaandtherelevanceofepidermalgrowthfactorreceptormutationstoclinicalresponseandsurvival.*Journalofclinicaloncology*,*23*(18),5246-5256.

86.Herbst,R.S.,etal.(2005).Efficacyofgefitinibinpatientswithadvancednon-small-celllungcancerwhoarerefractorytobothplatinum-basedandtaxane-basedchemotherapy.*Journalofclinicaloncology*,*23*(18),5869-5878.

87.Miller,V.A.,etal.(2008).FinalresultsofaphaseIIItrialoferlotinibinpatientswithadvancednon-small-celllungcancerpreviouslytreatedwithchemotherapy.*Journalofclinicaloncology*,*26*(8),1120-1127.

88.Kris,M.G.,etal.(2009).PhaseIIIstudyoferlotinibinpatientswithadvancednon-small-celllungcancerafterflureofbothplatinumbasedandtaxane-basedchemotherapy.*Journalofclinicaloncology*,*27*(8),1253-1260.

89.Herbst,R.S.,etal.(2007).Gefitinibinpatientswithpreviouslytreatedadvancednon-small-celllungcancer.*NewEnglandjournalofmedicine*,*356*(2),804-812.

90.Pao,W.,etal.(2009).AcquiredresistancetoEGFRtyrosinekinaseinhibitorsassociatedwithmesenchymal-epithelialtransition.*Science*,*325*(5946),1646-1650.

91.Pao,etal.(2011).Resistancetoepidermalgrowthfactorreceptortyrosinekinaseinhibitorsinlungadenocarcinomas:amolecularanalysis.*Theoncologist*,*16*(10),1111-1127.

92.Kobayashi,S.,etal.(2005).EGFRmutationandresistancetogefitinibinlungcancer.*NewEnglandjournalofmedicine*,*352*(8),786-792.

93.Paez,J.G.,etal.(2004).EGFRmutationsinlungcancer:correlationwithclinicalresponsetogefitinibtherapy.*Science*,*304*(5676),1497-1500.

94.Pao,W.,etal.(2004).Acquiredresistancetoepidermalgrowthfactorreceptortyrosinekinaseinhibitorsinlungcancer:impactofkinasedomnmutationsonefficacy.*Clinicalcancerresearch*,*10*(9),3051-3056.

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