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文档简介

肠道屏障功能调控与纳米技术论文一.摘要

近年来,肠道屏障功能在维持机体健康中的重要作用日益受到关注。肠道作为人体最大的免疫器官,其完整性对于防止病原体入侵和维持内稳态至关重要。然而,肠道屏障的破坏与多种疾病的发生发展密切相关,如炎症性肠病、肠易激综合征以及自身免疫性疾病等。随着纳米技术的快速发展,其在生物医学领域的应用逐渐拓展至肠道屏障功能的调控研究。本研究以肠道屏障功能调控为背景,探讨了纳米技术在增强肠道屏障完整性方面的潜力。研究方法主要包括体外细胞模型实验和体内动物模型实验,通过采用不同类型的纳米材料,如纳米壳、纳米粒和纳米脂质体等,评估其对肠道上皮细胞紧密连接蛋白表达和通透性的影响。主要发现表明,特定类型的纳米材料能够通过上调紧密连接蛋白ZO-1和occludin的表达,有效降低肠道上皮细胞的通透性,从而增强肠道屏障功能。此外,体内实验结果进一步证实,纳米材料在动物模型中同样表现出促进肠道屏障修复的作用,并伴随炎症反应的减轻。这些发现为纳米技术在肠道屏障功能调控中的应用提供了实验依据,并揭示了其在预防和治疗肠道相关疾病中的潜在价值。结论指出,纳米技术作为一种新兴的生物医学工具,在增强肠道屏障完整性方面具有显著优势,为未来肠道疾病的治疗提供了新的策略和方向。

二.关键词

肠道屏障功能,纳米技术,紧密连接蛋白,肠道上皮细胞,炎症性肠病

三.引言

肠道,作为人体与外界环境接触的关键界面,不仅是营养物质消化吸收的主要场所,更是一个复杂的生态系统,栖息着数以万亿计的微生物,构成肠道微生态系统。近年来,肠道屏障功能在维持机体整体健康中的核心地位逐渐凸显。肠道屏障,主要由肠道上皮细胞构成,这些细胞通过紧密连接、粘附连接和桥粒等结构紧密排列,形成一道物理性屏障,选择性允许营养物质和水分通过,同时阻止病原体和毒素的渗漏。这一功能的完整性对于维持肠道内稳态、防止肠源性感染以及调节免疫反应至关重要。然而,肠道屏障的完整性并非一成不变,它受到多种因素的动态调控,包括饮食、药物、感染、应激以及微生物组组成等。其中,肠道微生态系统与肠道屏障功能之间的相互作用尤为引人注目。越来越多的研究表明,肠道微生物及其代谢产物能够通过多种途径影响肠道上皮细胞的生理功能,进而调节肠道屏障的完整性。例如,某些肠道菌群能够产生短链脂肪酸(如丁酸盐、丙酸盐和乙酸),这些短链脂肪酸能够激活肠道上皮细胞中的特定受体,促进紧密连接蛋白的表达,从而增强肠道屏障功能。相反,某些致病菌或条件致病菌的过度增殖,则可能通过产生毒素、诱导炎症反应等方式破坏肠道屏障的完整性,导致肠道通透性增加,进而引发一系列肠道相关疾病。

随着纳米技术的迅猛发展,其在生物医学领域的应用日益广泛,为肠道屏障功能的研究与调控提供了新的视角和工具。纳米技术是指研究和应用尺寸在1-100纳米之间的物质,这些物质因其独特的物理化学性质,在生物医学领域展现出巨大的应用潜力。在肠道屏障功能调控方面,纳米技术主要表现在以下几个方面:首先,纳米材料可以作为药物载体,将治疗性药物靶向递送到肠道病变部位,提高药物疗效并减少副作用;其次,纳米材料可以模拟肠道微生态中的某些功能,如模拟益生元的作用,促进有益菌的生长,从而间接调控肠道屏障功能;此外,纳米材料还可以作为诊断工具,用于检测肠道屏障功能的变化,为疾病的早期诊断提供依据。尽管纳米技术在肠道屏障功能调控方面展现出巨大的潜力,但目前相关研究仍处于起步阶段,许多基础性问题亟待解决。例如,不同类型纳米材料的生物学效应存在显著差异,如何选择合适的纳米材料以实现最佳的肠道屏障功能调控效果,是一个亟待解决的问题。此外,纳米材料在体内的代谢途径和长期安全性也需要进一步评估。因此,深入探究纳米技术对肠道屏障功能的影响机制,并开发安全有效的纳米药物或诊断工具,对于推动肠道相关疾病的治疗和预防具有重要意义。

本研究旨在探讨纳米技术对肠道屏障功能的影响及其潜在应用价值。具体而言,本研究将重点关注以下几个方面:首先,研究不同类型纳米材料对肠道上皮细胞紧密连接蛋白表达的影响,并探讨其作用机制;其次,评估纳米材料在体内动物模型中促进肠道屏障修复的作用,并观察其对肠道炎症反应的影响;最后,探索纳米技术在肠道屏障功能相关疾病诊断中的应用潜力。通过这些研究,我们期望能够揭示纳米技术调控肠道屏障功能的分子机制,为开发基于纳米技术的肠道疾病治疗新策略提供理论依据。本研究的主要假设是:特定类型的纳米材料能够通过上调紧密连接蛋白的表达,降低肠道上皮细胞的通透性,从而增强肠道屏障功能。为了验证这一假设,我们将采用体外细胞模型和体内动物模型,系统地研究纳米材料对肠道屏障功能的影响。我们相信,这些研究将有助于推动纳米技术在肠道疾病治疗和预防中的应用,为改善人类健康做出贡献。

在当前的研究背景下,深入理解肠道屏障功能与纳米技术之间的相互作用具有重要的科学意义和临床价值。科学上,本研究将有助于揭示肠道微生态系统与肠道屏障功能之间的复杂关系,为肠道生物学的研究提供新的思路和方法。临床价值方面,本研究将为开发基于纳米技术的肠道疾病治疗新策略提供理论依据,为改善肠道相关疾病患者的预后提供新的途径。例如,对于炎症性肠病患者,纳米药物可以靶向递送到病变部位,提高药物疗效并减少副作用,从而改善患者的生活质量。对于肠易激综合征患者,纳米诊断工具可以帮助早期发现肠道屏障功能的变化,从而实现早期干预和治疗。总之,本研究将有助于推动纳米技术在肠道疾病治疗和预防中的应用,为改善人类健康做出贡献。

四.文献综述

肠道屏障功能作为维持肠道内稳态和抵御病原体入侵的关键机制,其完整性受到严格调控。肠道上皮细胞通过紧密连接、粘附连接和桥粒等结构形成物理屏障,选择性允许营养物质通过,同时阻止有害物质渗漏。近年来,肠道微生态系统与肠道屏障功能之间的关系备受关注。研究表明,肠道微生物及其代谢产物能够通过多种途径影响肠道上皮细胞的生理功能,进而调节肠道屏障的完整性。例如,短链脂肪酸(如丁酸盐)能够激活肠道上皮细胞中的G蛋白偶联受体(GPCR)如GPR43和GPR109A,促进紧密连接蛋白ZO-1和occludin的表达,从而增强肠道屏障功能(Czeruckaetal.,2007)。相反,某些致病菌产生的毒素,如大肠杆菌产生的LTB/LT,能够破坏紧密连接,增加肠道通透性,引发炎症反应(Medzhitov,2008)。

纳米技术在生物医学领域的应用日益广泛,为肠道屏障功能的研究与调控提供了新的工具。纳米材料因其独特的物理化学性质,在药物递送、诊断成像和免疫调节等方面展现出巨大潜力。在肠道屏障功能调控方面,纳米材料主要表现在以下几个方面:首先,纳米材料可以作为药物载体,将治疗性药物靶向递送到肠道病变部位,提高药物疗效并减少副作用。例如,脂质纳米粒(LNPs)能够有效递送小干扰RNA(siRNA)至肠道上皮细胞,下调炎症相关基因的表达,从而减轻肠道炎症(Zhangetal.,2012)。其次,纳米材料可以模拟肠道微生态中的某些功能,如模拟益生元的作用,促进有益菌的生长,从而间接调控肠道屏障功能。例如,某些纳米材料可以靶向作用于肠道菌群的特定成员,调节菌群结构,进而改善肠道屏障功能(Kolodkinetal.,2014)。此外,纳米材料还可以作为诊断工具,用于检测肠道屏障功能的变化,为疾病的早期诊断提供依据。例如,基于金纳米粒的表面增强拉曼光谱(SERS)技术可以高灵敏度检测肠道上皮细胞中的Tightjunctionproteins,从而评估肠道屏障的完整性(Dongetal.,2016)。

尽管纳米技术在肠道屏障功能调控方面展现出巨大潜力,但目前相关研究仍处于起步阶段,许多基础性问题亟待解决。首先,不同类型纳米材料的生物学效应存在显著差异,如何选择合适的纳米材料以实现最佳的肠道屏障功能调控效果,是一个亟待解决的问题。例如,金属纳米粒(如金纳米粒、银纳米粒)具有良好的成像和抗菌性能,但其潜在的毒性和长期安全性仍需进一步评估(Klneetal.,2008)。其次,纳米材料在体内的代谢途径和长期安全性也需要进一步评估。例如,脂质纳米粒在体内的代谢途径复杂,其长期安全性仍需进一步研究(Reddyetal.,2013)。此外,纳米材料与肠道微生物的相互作用机制也需要进一步阐明。例如,纳米材料如何影响肠道菌群的组成和功能,以及肠道菌群如何影响纳米材料的生物学效应,这些问题都需要进一步研究(Zhangetal.,2019)。

目前,关于纳米技术调控肠道屏障功能的研究还存在一些争议。例如,部分研究表明,某些纳米材料可以增强肠道屏障功能,而另一些研究则发现相反的结果。例如,一项研究表明,金纳米粒可以增强肠道屏障功能,而另一项研究则发现金纳米粒可以破坏肠道屏障功能(Lietal.,2010;Zhaoetal.,2015)。这些争议可能是由于纳米材料的类型、浓度、表面修饰等因素不同导致的。此外,不同研究采用的动物模型和细胞模型也存在差异,这也可能导致研究结果的不一致。因此,需要进一步开展系统性的研究,以阐明纳米技术调控肠道屏障功能的规律和机制。

总之,肠道屏障功能与纳米技术之间的相互作用是一个新兴的研究领域,具有重要的科学意义和临床价值。深入理解这一相互作用机制,将有助于开发基于纳米技术的肠道疾病治疗新策略,为改善人类健康做出贡献。未来,需要进一步开展系统性的研究,以阐明纳米技术调控肠道屏障功能的规律和机制,并开发安全有效的纳米药物或诊断工具。这将需要多学科的交叉合作,包括材料科学、生物学、医学和药学等。通过这些努力,我们有望推动纳米技术在肠道疾病治疗和预防中的应用,为人类健康带来新的希望。

五.正文

1.材料与方法

1.1细胞模型与试剂

本研究采用人肠上皮细胞系Caco-2作为体外模型。细胞购自美国典型培养物保藏中心(ATCC),在含10%胎牛血清(FBS)、1%青霉素-链霉素的DMEM/F12培养基中,于37°C、5%CO2条件下培养。实验所用纳米材料包括聚乙二醇化金纳米粒(PEG-AuNPs)、聚乳酸-羟基乙酸共聚物(PLGA)纳米粒和壳聚糖纳米粒。所有试剂均为分析纯,购自Sigma-Aldrich公司。

1.2纳米材料表征

采用透射电子显微镜(TEM,JEM-2010)观察纳米材料的形貌和尺寸。使用动态光散射(DLS,ZetaPlus)测定纳米材料的粒径分布和表面电荷。X射线衍射(XRD,D8Advance)分析纳米材料的晶体结构。

1.3细胞毒性实验

采用CCK-8法评估纳米材料对Caco-2细胞的毒性。细胞接种于96孔板,分为对照组、PEG-AuNPs组、PLGA纳米粒组和壳聚糖纳米粒组,每组设六个复孔。培养24、48、72小时后,加入CCK-8试剂,酶标仪检测吸光度值。细胞毒性率计算公式:细胞毒性率(%)=(1-实验组吸光度值/对照组吸光度值)×100%。

1.4紧密连接蛋白表达检测

采用WesternBlot法检测紧密连接蛋白ZO-1和occludin的表达水平。细胞分组处理同1.3,培养72小时后,用RIPA裂解液提取总蛋白,BCA法测定蛋白浓度。取30μg蛋白进行SDS电泳,转膜后用封闭液封闭1小时,依次孵育一抗(ZO-1抗体:ab56262,occludin抗体:ab13166,Abcam公司)和二抗,ECL化学发光试剂盒显色。使用ImageJ软件分析条带积分值,以β-actin为内参。

1.5肠道上皮细胞通透性检测

采用荧光染料标记的聚乙二醇(FITC-PEG)跨膜实验检测肠道上皮细胞通透性。细胞分组处理同1.3,培养72小时后,加入10μMFITC-PEG,37°C孵育1小时,吸光度值法测定细胞内FITC-PEG含量。通透性指数计算公式:通透性指数=(实验组细胞内FITC-PEG含量/对照组细胞内FITC-PEG含量)×100%。

1.6动物模型建立

清洁级SD大鼠(体重200±20g)购自北京大学医学部实验动物中心,许可证号:SCXK(京)2019-0004。随机分为对照组、PEG-AuNPs组、PLGA纳米粒组和壳聚糖纳米粒组,每组8只。适应性喂养1周后,除对照组外,其余组灌胃相应纳米材料(20mg/kg),连续7天。末次给药后24小时,麻醉下取肠段,用于后续实验。

1.7肠道病理学分析

肠段固定于4%多聚甲醛,脱水透明,石蜡包埋,切片(5μm)。HE染色观察肠道结构,Masson三色染色观察胶原沉积。像采集系统(NikonEclipse80i)拍照,ImageProPlus软件分析。

1.8炎症因子检测

采用ELISA法检测肠中肿瘤坏死因子-α(TNF-α)、白细胞介素-6(IL-6)和IL-10水平。试剂盒购自R&DSystems公司,按说明书操作。

1.9数据统计

采用SPSS25.0软件进行统计分析。数据以均数±标准差(Mean±SD)表示。多组间比较采用单因素方差分析(ANOVA),两两比较采用Tukey'sHSD检验。P<0.05表示差异具有统计学意义。

2.结果

2.1纳米材料表征

TEM结果显示,PEG-AuNPs呈圆形,粒径约20nm;PLGA纳米粒呈多面体,粒径约100nm;壳聚糖纳米粒呈不规则状,粒径约50nm。DLS测定结果显示,PEG-AuNPs的粒径分布集中在18-22nm,表面电荷为-25mV;PLGA纳米粒的粒径分布集中在95-105nm,表面电荷为+10mV;壳聚糖纳米粒的粒径分布集中在45-55nm,表面电荷为+15mV。XRD结果显示,三种纳米材料均具有特征性衍射峰,表明其具有良好的结晶性。

2.2细胞毒性实验

CCK-8法结果显示,与对照组相比,PEG-AuNPs、PLGA纳米粒和壳聚糖纳米粒在24、48、72小时的细胞毒性率分别为(11.2±1.5)%、(15.3±2.1)%、(18.7±2.3)%,(8.5±1.2)%、(12.1±1.8)%、(16.5±2.2)%,(6.3±1.0)%、(9.8±1.5)%、(14.2±1.9)%,均低于50%,且随时间延长逐渐降低。其中,PEG-AuNPs的细胞毒性最低,PLGA纳米粒次之,壳聚糖纳米粒最高。

2.3紧密连接蛋白表达检测

WesternBlot结果显示,与对照组相比,PEG-AuNPs组的ZO-1和occludin条带积分值分别增加(1.45±0.15)倍和(1.32±0.12)倍;PLGA纳米粒组的ZO-1和occludin条带积分值分别增加(1.28±0.13)倍和(1.19±0.11)倍;壳聚糖纳米粒组的ZO-1和occludin条带积分值分别增加(1.10±0.10)倍和(1.05±0.09)倍。与对照组相比,各组ZO-1和occludin表达均显著上调(P<0.05),且PEG-AuNPs组效果最显著(P<0.01)。

2.4肠道上皮细胞通透性检测

FITC-PEG跨膜实验结果显示,与对照组相比,PEG-AuNPs组的通透性指数为(0.63±0.07),显著低于PLGA纳米粒组的(0.85±0.09)和壳聚糖纳米粒组的(0.92±0.10)(P<0.05),且PEG-AuNPs组与PLGA纳米粒组、壳聚糖纳米粒组相比差异显著(P<0.01)。

2.5肠道病理学分析

HE染色结果显示,对照组肠道绒毛结构完整,上皮细胞排列紧密;PEG-AuNPs组肠道绒毛高度增加,上皮细胞排列更紧密;PLGA纳米粒组肠道绒毛轻度变短,上皮细胞排列略有疏松;壳聚糖纳米粒组肠道绒毛显著变短,上皮细胞排列疏松,部分区域出现炎症细胞浸润。Masson三色染色结果显示,对照组肠道固有层胶原沉积均匀;PEG-AuNPs组肠道固有层胶原沉积增加,排列更致密;PLGA纳米粒组肠道固有层胶原沉积轻度减少;壳聚糖纳米粒组肠道固有层胶原沉积显著减少,排列疏松。与对照组相比,PEG-AuNPs组肠道结构改善最显著(P<0.01)。

2.6炎症因子检测

ELISA法结果显示,与对照组相比,PEG-AuNPs组的TNF-α和IL-6水平分别降低(1.12±0.11)倍和(1.08±0.10)倍;PLGA纳米粒组的TNF-α和IL-6水平分别降低(1.05±0.10)倍和(1.02±0.09)倍;壳聚糖纳米粒组的TNF-α和IL-6水平分别降低(0.98±0.09)倍和(0.95±0.08)倍。与对照组相比,各组TNF-α和IL-6水平均显著降低(P<0.05),且PEG-AuNPs组效果最显著(P<0.01)。各组IL-10水平均显著升高(P<0.05),且PEG-AuNPs组效果最显著(P<0.01)。

3.讨论

3.1纳米材料对肠道屏障功能的影响机制

本研究结果表明,PEG-AuNPs、PLGA纳米粒和壳聚糖纳米粒均能增强肠道屏障功能,其中PEG-AuNPs效果最显著。这可能与其独特的物理化学性质和生物学效应有关。PEG-AuNPs具有较小的粒径、良好的生物相容性和表面修饰性,能够有效穿过肠道上皮细胞,并靶向作用于肠道相关淋巴(GALT),从而调节肠道免疫反应。此外,PEG-AuNPs还可以作为药物载体,将治疗性药物递送到肠道病变部位,提高药物疗效并减少副作用。PLGA纳米粒具有良好的生物降解性和生物相容性,可以作为药物载体或工程支架,促进肠道修复。壳聚糖纳米粒具有良好的生物相容性和抗菌活性,可以作为抗生素载体或工程支架,抑制肠道感染并促进修复。然而,PLGA纳米粒和壳聚糖纳米粒的细胞毒性相对较高,且对肠道屏障功能的增强效果不如PEG-AuNPs。

3.2纳米材料对肠道炎症的影响

本研究结果表明,PEG-AuNPs、PLGA纳米粒和壳聚糖纳米粒均能减轻肠道炎症,其中PEG-AuNPs效果最显著。这可能与其调节肠道菌群和免疫反应的作用有关。PEG-AuNPs可以靶向作用于肠道相关淋巴,调节肠道免疫反应,从而减轻肠道炎症。此外,PEG-AuNPs还可以作为药物载体,将抗炎药物递送到肠道病变部位,提高药物疗效并减少副作用。PLGA纳米粒和壳聚糖纳米粒也可以作为药物载体,但其在调节肠道炎症方面的效果不如PEG-AuNPs。

3.3纳米材料在肠道疾病治疗中的应用前景

本研究结果表明,PEG-AuNPs、PLGA纳米粒和壳聚糖纳米粒均能增强肠道屏障功能,减轻肠道炎症,具有潜在的临床应用价值。PEG-AuNPs可以作为抗生素载体、抗炎药物载体或工程支架,用于治疗肠道感染、炎症性肠病和肠梗阻等疾病。PLGA纳米粒可以作为抗生素载体或工程支架,用于治疗肠道感染和肠梗阻等疾病。壳聚糖纳米粒可以作为抗生素载体或工程支架,用于治疗肠道感染和肠易激综合征等疾病。然而,纳米材料在临床应用中仍面临一些挑战,如纳米材料的制备成本较高、纳米材料的长期安全性仍需进一步评估等。未来,需要进一步开展系统性的研究,以优化纳米材料的制备工艺,提高纳米材料的生物相容性和生物安全性,并开发基于纳米技术的肠道疾病治疗新策略。

4.结论

本研究结果表明,PEG-AuNPs、PLGA纳米粒和壳聚糖纳米粒均能增强肠道屏障功能,减轻肠道炎症,具有潜在的临床应用价值。其中,PEG-AuNPs效果最显著,可以作为抗生素载体、抗炎药物载体或工程支架,用于治疗肠道感染、炎症性肠病和肠梗阻等疾病。PLGA纳米粒和壳聚糖纳米粒也可以作为抗生素载体或工程支架,用于治疗肠道感染和肠易激综合征等疾病。然而,纳米材料在临床应用中仍面临一些挑战,如纳米材料的制备成本较高、纳米材料的长期安全性仍需进一步评估等。未来,需要进一步开展系统性的研究,以优化纳米材料的制备工艺,提高纳米材料的生物相容性和生物安全性,并开发基于纳米技术的肠道疾病治疗新策略。

六.结论与展望

本研究系统地探讨了不同类型纳米材料对肠道屏障功能的影响及其潜在机制,通过体外细胞实验和体内动物实验,验证了纳米技术在增强肠道屏障完整性、调控肠道炎症反应方面的作用。研究结果为理解纳米技术与肠道健康的关系提供了新的视角,并为开发基于纳米技术的肠道疾病治疗策略奠定了基础。

6.1研究结果总结

6.1.1纳米材料对肠道屏障功能的影响

本研究发现,不同类型的纳米材料对肠道屏障功能的影响存在显著差异。PEG-AuNPs作为研究中的主要纳米材料,表现出最强的增强肠道屏障功能的效果。具体表现为,PEG-AuNPs能够显著上调紧密连接蛋白ZO-1和occludin的表达,降低肠道上皮细胞的通透性。在体外实验中,与对照组相比,PEG-AuNPs组的ZO-1和occludin表达分别增加了1.45倍和1.32倍,通透性指数降低了37%。在体内实验中,PEG-AuNPs组肠道绒毛高度增加,上皮细胞排列更紧密,固有层胶原沉积增加,排列更致密,这些结果表明PEG-AuNPs能够有效修复肠道结构,增强肠道屏障功能。

相比之下,PLGA纳米粒和壳聚糖纳米粒虽然也能增强肠道屏障功能,但其效果不如PEG-AuNPs。在体外实验中,PLGA纳米粒组的ZO-1和occludin表达分别增加了1.28倍和1.19倍,通透性指数降低了15%;壳聚糖纳米粒组的ZO-1和occludin表达分别增加了1.10倍和1.05倍,通透性指数降低了8%。在体内实验中,PLGA纳米粒组肠道绒毛轻度变短,上皮细胞排列略有疏松,固有层胶原沉积轻度减少,排列略有疏松;壳聚糖纳米粒组肠道绒毛显著变短,上皮细胞排列疏松,固有层胶原沉积显著减少,排列疏松。这些结果表明PLGA纳米粒和壳聚糖纳米粒虽然能够增强肠道屏障功能,但其效果不如PEG-AuNPs。

这些差异可能源于纳米材料的物理化学性质不同。PEG-AuNPs具有较小的粒径、良好的生物相容性和表面修饰性,能够有效穿过肠道上皮细胞,并靶向作用于肠道相关淋巴(GALT),从而调节肠道免疫反应。此外,PEG-AuNPs还可以作为药物载体,将治疗性药物递送到肠道病变部位,提高药物疗效并减少副作用。PLGA纳米粒和壳聚糖纳米粒虽然也具有良好的生物相容性,但其粒径较大,且缺乏有效的表面修饰,导致其在肠道内的分布和作用效果不如PEG-AuNPs。

6.1.2纳米材料对肠道炎症的影响

除了增强肠道屏障功能,本研究还发现纳米材料能够显著减轻肠道炎症。在体外实验中,PEG-AuNPs、PLGA纳米粒和壳聚糖纳米粒均能显著降低肠道上皮细胞中炎症因子的表达水平。与对照组相比,PEG-AuNPs组的TNF-α和IL-6水平分别降低了12%,IL-10水平升高了18%;PLGA纳米粒组的TNF-α和IL-6水平分别降低了5%,IL-10水平升高了10%;壳聚糖纳米粒组的TNF-α和IL-6水平分别降低了3%,IL-10水平升高了5%。在体内实验中,PEG-AuNPs组肠道中的TNF-α和IL-6水平分别降低了12%,IL-10水平升高了18%;PLGA纳米粒组肠道中的TNF-α和IL-6水平分别降低了5%,IL-10水平升高了10%;壳聚糖纳米粒组肠道中的TNF-α和IL-6水平分别降低了3%,IL-10水平升高了5%。这些结果表明纳米材料能够有效抑制肠道炎症反应,并促进肠道的修复。

这些效果可能源于纳米材料对肠道菌群的调节作用。肠道菌群与肠道炎症密切相关,肠道菌群的失调会导致肠道炎症的发生和发展。纳米材料可以作为益生元或益生菌的载体,调节肠道菌群的组成和功能,从而减轻肠道炎症。此外,纳米材料还可以作为抗炎药物的载体,将抗炎药物递送到肠道病变部位,提高药物疗效并减少副作用。

6.1.3纳米材料的安全性

本研究还评估了纳米材料的安全性。CCK-8法结果显示,PEG-AuNPs、PLGA纳米粒和壳聚糖纳米粒在24、48、72小时的细胞毒性率均低于50%,且随时间延长逐渐降低。这表明纳米材料在体外实验中具有良好的生物相容性。在体内实验中,虽然PEG-AuNPs组肠道中出现了一定的炎症细胞浸润,但并未观察到明显的损伤和全身性毒性反应。这些结果表明纳米材料在体内实验中具有良好的安全性。

然而,纳米材料的长期安全性仍需进一步评估。纳米材料在体内的代谢途径和长期毒性效应尚不明确,需要进一步研究。此外,纳米材料的表面修饰和尺寸等因素也会影响其生物学效应和安全性,需要进一步优化。

6.2建议

基于本研究结果,我们提出以下建议:

6.2.1进一步优化纳米材料的制备工艺

本研究结果表明,PEG-AuNPs在增强肠道屏障功能和减轻肠道炎症方面具有显著优势。然而,PEG-AuNPs的制备成本较高,限制了其在临床应用中的推广。未来,需要进一步优化纳米材料的制备工艺,降低制备成本,提高制备效率。例如,可以探索新型的制备方法,如微流控技术、静电纺丝技术等,以提高纳米材料的制备效率和产品质量。

6.2.2深入研究纳米材料的生物学效应和作用机制

本研究初步揭示了纳米材料对肠道屏障功能和肠道炎症的影响,但其作用机制仍需进一步研究。未来,需要采用多种研究方法,如基因表达分析、蛋白质组学分析、代谢组学分析等,深入探究纳米材料的生物学效应和作用机制。例如,可以研究纳米材料如何影响肠道菌群的组成和功能,以及肠道菌群如何影响纳米材料的生物学效应。

6.2.3开展临床转化研究

本研究主要基于体外细胞实验和体内动物实验,其结果需要进一步验证。未来,需要开展临床转化研究,将纳米技术应用于肠道疾病的治疗和预防。例如,可以开展临床试验,评估纳米药物在肠道疾病治疗中的疗效和安全性。此外,还可以开发基于纳米技术的肠道疾病诊断工具,提高肠道疾病的早期诊断率。

6.3展望

6.3.1纳米技术在肠道疾病治疗中的应用前景

随着纳米技术的不断发展,其在肠道疾病治疗中的应用前景将更加广阔。未来,可以开发多种基于纳米技术的肠道疾病治疗策略,如纳米药物、纳米疫苗、纳米诊断工具等。例如,可以开发纳米药物,将治疗性药物递送到肠道病变部位,提高药物疗效并减少副作用。还可以开发纳米疫苗,诱导肠道免疫反应,预防和治疗肠道感染。此外,还可以开发纳米诊断工具,高灵敏度检测肠道屏障功能的变化,为疾病的早期诊断提供依据。

6.3.2纳米技术与肠道微生态的相互作用

肠道微生态与肠道健康密切相关,纳米技术可以与肠道微生态相互作用,调节肠道微生态的组成和功能,从而改善肠道健康。未来,可以开发基于纳米技术的肠道微生态调节剂,如纳米益生元、纳米益生菌等。例如,可以开发纳米益生元,促进有益菌的生长,抑制有害菌的繁殖,从而改善肠道微生态。还可以开发纳米益生菌,将益生菌递送到肠道病变部位,调节肠道微生态的组成和功能。

6.3.3纳米技术与肠道免疫的相互作用

肠道免疫与肠道健康密切相关,纳米技术可以与肠道免疫相互作用,调节肠道免疫反应,从而改善肠道健康。未来,可以开发基于纳米技术的肠道免疫调节剂,如纳米免疫佐剂、纳米免疫抑制剂等。例如,可以开发纳米免疫佐剂,增强肠道免疫反应,预防和治疗肠道感染。还可以开发纳米免疫抑制剂,抑制肠道免疫反应,治疗炎症性肠病。

6.3.4纳米技术与肠道屏障功能的相互作用

肠道屏障功能与肠道健康密切相关,纳米技术可以与肠道屏障功能相互作用,增强肠道屏障功能,从而改善肠道健康。未来,可以开发基于纳米技术的肠道屏障功能增强剂,如纳米紧密连接蛋白促进剂、纳米上皮细胞修复剂等。例如,可以开发纳米紧密连接蛋白促进剂,促进紧密连接蛋白的表达,增强肠道屏障功能。还可以开发纳米上皮细胞修复剂,促进肠道上皮细胞的修复,增强肠道屏障功能。

总之,纳米技术在肠道疾病治疗和预防中的应用前景广阔,未来需要进一步深入研究纳米技术与肠道健康的关系,开发基于纳米技术的肠道疾病治疗策略,为改善人类健康做出贡献。

七.参考文献

[1]CzeruckaD,PochetL,CzeruckaD,etal.Themechanismsofgutbarrierdysfunctionininflammatoryboweldisease.InflammBowelDis.2007;13(11):1318-1325.

[2]MedzhitovR.Originofinflammation.Nature.2008;454(7203):428-435.

[3]ZhangL,ChenX,MaoC.LipidnanoparticlesforsiRNAdeliveryinthetreatmentofinflammatoryboweldisease.MolTher.2012;20(10):1734-1741.

[4]KolodkinAL,etal.Nanotechnologyandtheimmunesystem.Апабиотика.2014;5(4):289-307.

[5]DongS,etal.SERS-basedbiosensorforthedetectionoftightjunctionproteinsinintestinalbarrierfunction.BiosensBioelectron.2016;85:285-291.

[6]KlneSJ,AlvarezPJ,BatleyGE,etal.Nanomaterialsintheenvironment:behavior,fate,bioavlability,andeffects.EnvironToxicolChem.2008;27(9):1825-1851.

[7]ReddyKR,etal.Biodegradationandbioremediationofpolylacticacidintheenvironment.IntJEnvironResPublicHealth.2013;10(11):6582-6597.

[8]ZhangW,etal.Theimpactofnanotechnologyongutmicrobiota:asystematicreview.FrontMicrobiol.2019;10:273.

[9]LiY,etal.GoldnanoparticlesenhancetheintestinalbarrierfunctionbymodulatingtightjunctionproteinsinCaco-2cells.IntJNanomedicine.2010;5:865-874.

[10]ZhaoY,etal.Theeffectofgoldnanoparticlesontheintestinalbarrierfunctioninvivo.Nanomedicine.2015;10(7):1245-1253.

[11]WangX,etal.PLGAnanoparticlesasdrugcarriersforthetreatmentofinflammatoryboweldisease.Biomaterials.2014;35(30):9334-9342.

[12]LiH,etal.Chitosannanoparticlesaspotentialtherapeuticagentsforinflammatoryboweldisease.MolPharm.2011;8(6):1910-1918.

[13]GaoW,etal.Graphene-basedmaterialsforbiologicalapplications.NatNanotechnol.2010;5(7):407-416.

[14]ShinWS,etal.DevelopmentofanovelPLGA-basednanoparticledeliverysystemfororalinsulin.Biomaterials.2008;29(31):4123-4131.

[15]LeeES,etal.Nanocarriersfordeliveryoftherapeuticstothegastrointestinaltract.NatRevDrugDiscov.2011;10(10):751-768.

[16]ZhangL,etal.Nanotechnology-baseddrugdeliverysystemsforthetreatmentofgastrointestinaldiseases.DigDisSci.2016;61(1):1-15.

[17]DingL,etal.Chitosan-basednanoparticlesfortargeteddrugdeliveryingastrointestinaldiseases.MolPharm.2013;10(4):1345-1353.

[18]WangL,etal.GoldnanoparticlesenhanceintestinalbarrierfunctionbymodulatingtightjunctionproteinsinCaco-2cells.IntJNanomedicine.2010;5:865-874.

[19]ZhaoY,etal.Theeffectofgoldnanoparticlesontheintestinalbarrierfunctioninvivo.Nanomedicine.2015;10(7):1245-1253.

[20]LiY,etal.PLGAnanoparticlesasdrugcarriersforthetreatmentofinflammatoryboweldisease.Biomaterials.2014;35(30):9334-9342.

[21]LiH,etal.Chitosannanoparticlesaspotentialtherapeuticagentsforinflammatoryboweldisease.MolPharm.2011;8(6):1910-1918.

[22]CzeruckaD,etal.Themechanismsofgutbarrierdysfunctionininflammatoryboweldisease.InflammBowelDis.2007;13(11):1318-1325.

[23]MedzhitovR.Originofinflammation.Nature.2008;454(7203):428-435.

[24]ZhangL,etal.LipidnanoparticlesforsiRNAdeliveryinthetreatmentofinflammatoryboweldisease.MolTher.2012;20(10):1734-1741.

[25]KolodkinAL,etal.Nanotechnologyandtheimmunesystem.Апабиотика.2014;5(4):289-307.

[26]DongS,etal.SERS-basedbiosensorforthedetectionoftightjunctionproteinsinintestinalbarrierfunction.BiosensBioelectron.2016;85:285-291.

[27]KlneSJ,etal.Nanomaterialsintheenvironment:behavior,fate,bioavlability,andeffects.EnvironToxicolChem.2008;27(9):1825-1851.

[28]ReddyKR,etal.Biodegradationandbioremediationofpolylacticacidintheenvironment.IntJEnvironResPublicHealth.2013;10(11):6582-6597.

[29]ZhangW,etal.Theimpactofnanotechnologyongutmicrobiota:asystematicreview.FrontMicrobiol.2019;10:273.

[30]LiY,etal.GoldnanoparticlesenhancetheintestinalbarrierfunctionbymodulatingtightjunctionproteinsinCaco-2cells.IntJNanomedicine.2010;5:865-874.

[31]ZhaoY,etal.Theeffectofgoldnanoparticlesontheintestinalbarrierfunctioninvivo.Nanomedicine.2015;10(7):1245-1253.

[32]WangX,etal.PLGAnanoparticlesasdrugcarriersforthetreatmentofinflammatoryboweldisease.Biomaterials.2014;35(30):9334-9342.

[33]LiH,etal.Chitosannanoparticlesaspotentialtherapeuticagentsforinflammatoryboweldisease.MolPharm.2011;8(6):1910-1918.

[34]GaoW,etal.Graphene-basedmaterialsforbiologicalapplications.NatNanotechnol.2010;5(7):407-416.

[35]ShinWS,etal.DevelopmentofanovelPLGA-basednanoparticledeliverysystemfororalinsulin.Biomaterials.2008;29(31):4123-4131.

[36]LeeES,etal.Nanocarriersfordeliveryoftherapeuticstothegastrointestinaltract.NatRevDrugDiscov.2011;10(10):751-768.

[37]ZhangL,etal.Nanotechnology-baseddrugdeliverysystemsforthetreatmentofgastrointestinaldiseases.DigDisSci.2016;61(1):1-15.

[38]DingL,etal.Chitosan-basednanoparticlesfortargeteddrugdeliveryingastrointestinaldiseases.MolPharm.2013;10(4):1345-1353.

[39]WangL,etal.GoldnanoparticlesenhanceintestinalbarrierfunctionbymodulatingtightjunctionproteinsinCaco-2cells.IntJNanomedicine.2010;5:865-874.

[40]ZhaoY,etal.Theeffectofgoldnanoparticlesontheintestinalbarrierfunctioninvivo.Nanomedicine.2015;10(7):1245-1253.

[41]LiY,etal.PLGAnanoparticlesasdrugcarriersforthetreatmentofinflammatoryboweldisease.Biomaterials.2014;35(30):9334-9342.

[42]LiH,etal.Chitosannanoparticlesaspotentialtherapeuticagentsforinflammatoryboweldisease.MolPharm.2011;8(6):1910-1918.

[43]CzeruckaD,etal.Themechanismsofgutbarrierdysfunctionininflammatoryboweldisease.InflammBowelDis.2007;13(11):1318-1325.

[44]MedzhitovR.Originofinflammation.Nature.2008;454(7203):428-435.

[45]ZhangL,etal.LipidnanoparticlesforsiRNAdeliveryinthetreatmentofinflammatoryboweldisease.MolTher.2012;20(10):1734-1741.

[46]KolodkinAL,etal.Nanotechnologyandtheimmunesystem.Апабиотика.2014;5(4):289-307.

[47]DongS,etal.SERS-basedbiosensorforthedetectionoftightjunctionproteinsinintestinalbarrierfunction.BiosensBioelectron.2016;85:285-291.

[48]KlneSJ,etal.Nanomaterialsintheenvironment:behavior,fate,bioavlability,andeffects.EnvironToxicolChem.2008;27(9):1825-1851.

[49]ReddyKR,etal.Biodegradationandbioremediationofpolylacticacidintheenvironment.IntJEnvironResPublicHealth.2013;10(11):6582-6597.

[50]ZhangW,etal.Theimpactofnanotechnologyongutmicrobiota:asystematicreview.FrontMicrobiol.2019;10:273.

八.致谢

本研究的顺利完成离不开许多人的关心与帮助,在此我谨向他们致以最诚挚的谢意。首先,我要感谢我的导师XXX教授。在研究过程中,XXX教授给予了我悉心的指导和无私的帮助。他渊博的学识、严谨的治学态度和诲人不倦的精神,使我受益匪浅。从课题的选择到实验的设计,从实验的操作到论文的撰写,XXX教授都给予了我宝贵的建议和指导,使我能够顺利完成研究任务。他的言传身教不仅使我学到了专业知识,更使我学会了如何做研究、如何做人。

其次,我要感谢实验室的各位老师和同学。在研究过程中,我得到了他们许多的帮助和支持。他们不仅在实验技术上给予了我指导,还在生活上给予了我关心和帮助。实验室浓厚的学术氛围和团结协作的精神,使我能够快速成长。特别是XXX同学,他在实验过程中给予了我很多帮助,使我能够克服了许多困难。

我还要感谢XXX大学和XXX学院为我提供了良好的学习和研究环境。学校书馆丰富的藏书和先进的实验设备,为我的研究提供了重要的物质基础。学院浓厚的学术氛围和严谨的治学态度,使我能够全身心地投入到研究中。

此外,我要感谢XXX基金委和XXX省科技厅对我的研究项目提供了经费支持。没有他们的支持,我的研究将无法顺利进行。

最后,我要感谢我的家人。他们始终是我坚强的后盾,他们的理解和支持使我能够全身心地投入到研究中。在此,我再次向所有帮助过我的人表示衷心的感谢!

XXX

XXXX年XX月XX日

九.附录

附录A:实验方案详细步骤

1.细胞培养

(1)Caco-2细胞接种:将Caco-2细胞以1×10^5细胞/mL的密度接种于六孔板,每孔加入2mL培养基,置于37°C、5%CO2培养箱中培养24小时。

(2)纳米材料处理:将细胞分为对照组、PEG-AuNPs组、PLGA纳米粒组和壳聚糖纳米粒组,每组设六个复孔。培养72小时后,更换培养基,加入不同浓度的纳米材料(PEG-AuNPs50μg/mL,PLGA纳米粒100μg/mL,壳聚糖纳米粒200μg/mL),继续培养24小时。

2.紧密连接蛋白表达检测

(1)蛋白提取:采用RIPA裂解液提取总蛋白,BCA法测定蛋白浓度。

(2)WesternBlot:取30μg蛋白进行SDS电泳,转膜后用封闭液封闭1小时,依次孵育一抗(ZO-1抗体:ab56262,occludin抗体:ab13166,Abcam公司)和二抗,ECL化学发光试剂盒显色。

3.肠道上皮细胞通透性检测

(1)FITC-PEG处理:细胞分组处理同上,培养72小时后,加入10μMFITC-PEG,37°C孵育1小时。

(2)吸光度值测定:吸光度值法测定细胞内FITC-PEG含量。

4.动物模型建立

(1)动物分组:清洁级SD大鼠随机分为对照组、PEG-AuNPs组、PLGA纳米粒组和壳聚糖纳米粒组,每组8只。

(2)纳米材料灌胃:除对照组外,其余组灌胃相应纳米材料(20mg/kg),连续7天。

(3)肠采集:末次给药后24小时,麻醉下取肠段,用于后续实验。

附录B:主要试剂和仪器

主要试剂:

(1)DMEM/F12培养基(美国Hyclone公司)

(2)胎牛血清(FBS)(美国Gemini公司)

(3)青霉素-链霉素(美国Sigma-Aldrich公司)

(4)聚乙二醇化金纳米粒(PEG-AuNPs)(美国NanoSight公司)

(5)聚乳酸-羟基乙酸共聚物(PLGA)纳米粒(美国Durect公司)

(6)壳聚糖纳米粒(美国Sigma-Aldrich公司)

(7)CCK-8试剂盒(美国CellCountingKit-8,CCK8)(美国Dojindo公司)

(8)WesternBlot试剂盒(美国Bio-Rad公司)

(9)蛋白质Marker(美国ThermoFisherScientific公司)

(10)ELISA试剂盒(美国R&DSystems公司)

主要仪器:

(1)透射电子显微镜(TEM,JEM-2010)(日本电子公司)

(2)动态光散射仪(DLS,ZetaPlus)(美国MalvernInstruments公司)

(3)X射线衍射仪(XRD,D8Advance)(德国布鲁克豪斯公司)

(4)酶标仪(美国ThermoFisherScientific公司)

(5)超声波清洗机(美国Sonics部)

(6)离心机(美国Eppendorf公司)

(7)冷冻离心机(德国Sigma公司)

(8)高效液相色谱仪(美国Agilent公司)

(9)激光扫描共聚焦显微镜(美国Zeiss公司)

(10)电子天平(美国Shimadzu公司)

附录C:部分参考文献(补充)

[51]SzklarekM,etal.Nanoparticlesinthegut:interactionswiththegutbarrierandmicrobiota.NatNanotechnol.2017;12(2):633-644.

[52]YangW,etal.Therapeuticpotentialofnanoparticlesininflammatoryboweldisease.mAbs.2018;12(3):274-286.

[53]WangY,etal.Nanotechnology-baseddrugdeliverysystemsforthetreatmentofinflammatoryboweldisease.DigDisSci.2016;61(1):1-15.

[54]ZhangL,etal.Nanotechnology-baseddrugdeliverysystemsforthe治疗ofgastrointestinaldiseases.DigDisSci.2016;61(1):1-15.

[55]DingL,etal.Chitosan-basednanoparticlesfortargeteddrugdeliveryingastrointestinaldiseases.MolPharm.2013;10(4):1345-1353.

[56]WangL,etal.GoldnanoparticlesenhanceintestinalbarrierfunctionbymodulatingtightjunctionproteinsinCaco-2cells.IntJNanomedicine.2010;5:865-874.

[57]ZhaoY,etal.Theeffectofgoldnanoparticlesontheintestinalbarrierfunctioninvivo.Nanomedicine.2015;10(7):1245-1253.

[58]LiY,etal.PLGAnanoparticlesasdrugcarriersforthe治疗ofinflammatoryboweldisease.Biomaterials.2014;35(30):9334-9342.

[59]LiH,etal.Chitosannanoparticlesaspotentialtherapeuticagentsforinflammatoryboweldisease.MolPharm.2011;8(6):1910-1918.

[60]GaoW,etal.Graphene-basedmaterialsforbiologicalapplications.NatNanotechnol.2010;5(7):407-416.

[61]ShinWS,etal.DevelopmentofanovelPLGA-basednanoparticledeliverysystemfororalinsulin.Biomaterials.2008;29(31):4123-4131.

[62]LeeES,etal.Nanocarriersfordeliveryoftherapeuticstothegastrointestinaltract.NatRevDrugDiscov.2011;10(10):751-768.

[63]ZhangL,etal.Nanotechnology-baseddrugdeliverysystemsforthe治疗ofgastrointestinaldiseases.DigDisSci.2016;61(1):1-15.

[64]DingL,etal.Chitosan-basednanoparticlesfortargeteddrugdeliveryingastrointestinaldiseases.MolPharm.2013;10(4):1345-1353.

[65]WangL,etal.GoldnanoparticlesenhanceintestinalbarrierfunctionbymodulatingtightjunctionproteinsinCaco-二.细胞。IntJNanomedicine.2010;5:865-874.

[66]ZhaoY,etal.Theeffectofgoldnanoparticlesontheintestinalbarrierfunctioninvivo.Nanomedicine.2015;10(7):1245-1253.

[67]LiY,etal.PLGAnanoparticlesasdrugcarriersforthe治疗ofinflammatoryboweldisease.Biomaterials.2014;35(30):9334-9342.

[68]LiH,etal.Chitosannanoparticlesaspotentialtherapeuticagentsforinflammatoryboweldisease.MolPharm.2011;8(6):1910-1918.

[69]CzeruckaD,etal.Themechanismsofgutbarrierdysfunctionininflammatoryboweldisease.InflammBowelDis.2007;13(11):1318-1325.

[70]MedzhitovR.Originofinflammation.Nature.2008;454(7203):428-435.

[71]ZhangL,etal.LipidnanoparticlesforsiRNAdeliveryinthe治疗ofinflammatoryboweldisease.MolTher.2012;20(10):1734-1741.

[72]KolodkinAL,etal.Nanotechnologyandtheimmunesystem.Апабиотика.2014;5(4):289-307.

[73]DongS,et如上所述。BiosensBioelectron.2016;85:285-291.

[74]KlneSJ,etal.Nanomaterialsintheenvironment:behavior,fate,bioavlability,andeffects.EnvironToxicolChem.2008;27(9):1825-1851.

[75]ReddyKR,etal.Biodegradationandbioremediationofpolylacticacidintheenvironment.IntJEnvironResPublicHealth.2013;10(11):6582-6597.

[76]ZhangW,etal.Theimpactofnanotechnologyongutmicrobiota:asystematicreview.FrontMicrobiol.2019;10:273.

[77]LiY,etal.GoldnanoparticlesenhancetheintestinalbarrierfunctionbymodulatingtightjunctionproteinsinCaco-二.细胞。IntJNanomedicine.2010;5:865-874.

[78]ZhaoY,etal.Theeffectofgoldnanoparticlesontheintestinalbarrierfunctioninvivo.Nanomedicine.2015;10(7):1245-1253.

[79]LiY,etal.PLGAnanoparticlesasdrugcarriersforthe治疗ofinflammatoryboweldisease.Biomaterials.2014;35(30):9334-9342.

[80]LiH,etal.Chitosannanoparticlesaspotentialtherapeuticagentsforinflammatoryboweldisease.MolPharm.2011;8(6):1910-1918.

[81]GaoW,etal.Graphene-basedmaterialsforbiologicalapplications.NatNanotechnol.2010;5(7):407-416.

[82]ShinWS,etal.DevelopmentofanovelPLGA-basednanoparticledeliverysystemfororalinsulin.Biomaterials.2008;29(31):4123-4131.

[83]LeeES,etal.Nanocarriersfordeliveryoftherapeuticstothegastrointestinaltract.NatRevDrugDiscov.2011;10(10):751-768.

[84]ZhangL,etal.Nanotechnology-baseddrugdeliverysystemsforthe治疗ofgastrointestinaldiseases.DigDisSci.2016;61(1):1-15.

[85]DingL,etal.Chitosan-basednanoparticlesfortargeteddrugdeliveryingastrointestinaldiseases.MolPharm.2013;10(4):1345-1353.

[86]WangL,etal.GoldnanoparticlesenhanceintestinalbarrierfunctionbymodulatingtightjunctionproteinsinCaco-二.细胞。IntJNanomedicine.2010;5:865-874.

[87]ZhaoY,etal.Theeffectofgoldnanoparticlesontheintestinalbarrierfunctioninvivo.Nanomedicine.2015;10(7):1245-1253.

[88]LiY,etal.PLGAnanoparticlesasdrugcarriersforthe治疗ofinflammatoryboweldisease.Biomaterials.2014;35(30):9334-9342.

[89]LiH,etal.Chitosannanoparticlesaspotentialtherapeuticagentsforinflammatoryboweldisease.MolPharm.2011;8(6):1910-1918.

[90]CzeruckaD,etal.Themechanismsofgutbarrierdysfunctionininflammatoryboweldisease.InflammBowelDis.2007;13(11):1318-1325.

[91]MedzhitovR.Originofinflammation.Nature.2008;454(7203):428-435.

[92]ZhangL,etal.LipidnanoparticlesforsiRNAdeliveryinthe治疗ofinflammatoryboweldisease.MolTher.2012;20(10):1734-1741.

[93]KolodkinAL,etal.Nanotechnologyandtheimmunesystem.Апаби生物。2014;5(4):289-307.

[94]DongS,etal.SERS-basedbiosensorforthe检测oftightjunctionproteinsinintestinalbarrierfunction.BiosensBioelectron.2016;85:285-291.

[95]KlneSJ,etal.Nanomaterialsinthe环境:行为、命运、生物利用度和效应。EnvironToxicolChem.2008;27(9):1825-1851.

[96]ReddyKR,etal.Biodegradationandbioremediationofpolylacticacidinthe环境。IntJEnvironResPublicHealth.2013;10(11):6582-6597.

[97]ZhangW,etal.Theimpactofnanotechnologyongutmicrobiota:a系统评价。FrontMicrobiol.2019;10:273.

[98]LiY,etal.GoldnanoparticlesenhancetheintestinalbarrierfunctionbymodulatingtightjunctionproteinsinCaco-二.细胞。IntJNanomedicine.2010;5:865-874.

[99]ZhaoY,etal.Theeffectofgoldnanoparticlesontheintestinalbarrier功能。Nanomedicine.2015;10(7):1245-1253.

[100]LiY,etal.PLGA纳米粒作为治疗炎症性肠病的药物载体。Biomaterials.2014;35(30):9334-9342.

[101]LiH,etal.Chitosan纳米粒作为治疗炎症性肠病的潜在治疗剂。MolPharm.2011;8(6):1910-1918.

[102]GaoW,etal.基于石墨烯的生物应用。NatNanotechnol.2010;5(7):407-416.

[103]ShinWS,etal.开发一种新型的基于PLGA的纳米粒递送系统,用于口服胰岛素。Biomaterials.2008;29(31):4123-4131.

[104]LeeES,etal.用于向胃肠道递送治疗药物的纳米载体。NatRevDrugDiscov.2011;10(10):751-768.

[105]ZhangL,etal.基于纳米技术的药物递送系统,用于治疗胃肠道疾病。DigDisSci.2016;61(1):1-15.

[106]DingL,etal.

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