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文档简介

2025年肿瘤生物治疗研究实验模拟及答案解析一、单项选择题(每题2分,共20分)1.肿瘤细胞高表达PD-L1实现免疫逃逸,其与T细胞表面哪种受体结合发挥抑制作用?A.CTLA-4B.PD-1C.LAG-3D.TIM-3答案:B解析:PD-L1与PD-1结合后传递抑制信号,减弱T细胞活化与增殖;CTLA-4主要与B7分子结合,干扰项易混。2.CAR-T细胞中CAR的胞外抗原识别区通常来源于:A.T细胞受体TCRα链B.单克隆抗体的单链可变区scFvC.主要组织相容性复合体MHC分子D.细胞因子受体答案:B解析:CAR的胞外域多由抗体scFv构成,能以非MHC限制方式识别肿瘤抗原,这是CAR-T与TCR-T的重要区别。3.慢病毒载体介导T细胞转导的主要优势是:A.只能转导分裂细胞B.不整合宿主基因组,无插入突变风险C.可感染非分裂细胞,并实现外源基因稳定整合D.转导效率低但安全性最高答案:C解析:慢病毒载体可进入静止期细胞的细胞核,将CAR基因整合至宿主基因组,实现长期稳定表达。4.检测CAR-T细胞对靶细胞体外杀伤作用的经典“金标准”方法是:A.台盼蓝染色计数B.51Cr释放实验C.流式细胞术检测CD3表达D.ELISA检测IL-2答案:B解析:51Cr释放实验灵敏、重复性较好,是经典细胞毒性检测方法;LDH释放实验、流式杀伤实验等为常用替代方法。5.下列哪项不属于肿瘤生物治疗的范畴?A.肿瘤疫苗B.过继性细胞治疗C.顺铂化疗D.溶瘤病毒治疗答案:C解析:顺铂为传统细胞毒化疗药物;肿瘤疫苗、过继性细胞治疗、溶瘤病毒等属于生物治疗或免疫治疗。6.肿瘤浸润淋巴细胞TIL治疗属于哪一类肿瘤免疫治疗?A.主动免疫治疗B.被动免疫治疗C.非特异性免疫调节D.化学治疗答案:B解析:TIL是从肿瘤组织分离的T细胞经体外扩增后回输,属于过继性细胞治疗,直接输入具有抗肿瘤活性的细胞,故归为被动免疫治疗。7.免疫检查点抑制剂诱发免疫相关不良反应irAE的主要机制是:A.药物直接杀伤正常组织B.免疫系统过度激活并攻击正常组织C.骨髓抑制D.病毒感染答案:B解析:免疫检查点抑制剂解除T细胞抑制信号后,机体自身免疫应答增强,可导致正常组织炎性损伤,表现为皮炎、结肠炎、肝炎等irAE。8.流式细胞术分析中,调节性T细胞Treg的特征性表型为:A.CD4+CD25+Foxp3+B.CD8+CD25+Foxp3+C.CD4+CD8-CD25-D.CD3+CD19+Foxp3+答案:A解析:Treg通常为CD4+CD25+Foxp3+T细胞,Foxp3为其关键转录因子。9.肿瘤疫苗诱导抗肿瘤免疫应答时,最重要的专职抗原呈递细胞是:A.浆细胞B.树突状细胞DCC.中性粒细胞D.红细胞答案:B解析:树突状细胞是最重要的专职抗原呈递细胞,能够摄取、加工肿瘤抗原并激活初始T细胞。10.小鼠皮下移植瘤模型中,通常使用游标卡尺测量以下哪组指标用于计算肿瘤体积?A.肿瘤重量B.肿瘤长径和短径C.肿瘤密度D.肿瘤温度答案:B解析:体内小鼠瘤体积常用长径a与短径b按公式V=二、多项选择题(每题3分,共15分)11.下列哪些分子属于免疫检查点分子?A.PD-1B.CTLA-4C.LAG-3D.CD28答案:ABC解析:PD-1、CTLA-4、LAG-3均为传递抑制信号的免疫检查点分子;CD28是T细胞表面重要共刺激分子,提供正向活化信号,不属于检查点分子。12.CAR-T细胞输注后常见的不良反应包括:A.细胞因子释放综合征CRSB.免疫效应细胞相关神经毒性综合征ICANSC.肿瘤溶解综合征D.脱靶/肿瘤外毒性on-targetoff-tumor答案:ABCD解析:CRS与ICANS为CAR-T最常见的两类急性毒性;肿瘤溶解综合征可因大量肿瘤细胞快速死亡释放内容物引起;当正常组织也表达靶抗原时,可产生on-targetoff-tumor毒性。13.评价CAR-T细胞在体内扩增和持久性的常用检测方法包括:A.流式细胞术检测外周血CAR阳性T细胞比例B.qPCR检测CAR基因拷贝数C.免疫组化检测肿瘤组织中CAR-T细胞浸润D.细菌培养答案:ABC解析:流式可检测CAR阳性细胞频数,qPCR可定量CAR基因拷贝数,免疫组化可观察肿瘤组织中CAR-T细胞浸润;细菌培养用于安全性检测,与扩增、持久性无关。14.肿瘤微环境中促进免疫抑制的细胞成分包括:A.髓源性抑制细胞MDSCB.调节性T细胞TregC.M2型肿瘤相关巨噬细胞TAMD.活化的CD8+细胞毒性T淋巴细胞答案:ABC解析:MDSC、Treg和M2型TAM均可分泌IL-10、TGF-β等免疫抑制因子或直接抑制效应T细胞;活化的CD8+T细胞是抗肿瘤效应细胞,不促进免疫逃逸。15.设计体内药效实验评价某抗PD-1抗体时,合理的监测指标包括:A.移植瘤体积B.小鼠体重C.总生存期D.肿瘤组织中CD8+T细胞浸润密度答案:ABCD解析:肿瘤体积和生存期是主要药效终点;体重反映安全性;CD8+T细胞浸润反映免疫效应机制,可作为药效佐证指标。三、判断题(每题2分,共10分)16.PD-L1与PD-1结合可传递抑制信号,降低T细胞活化、增殖和细胞因子分泌。答案:正确解析:该通路是肿瘤免疫逃逸的重要机制之一,也是PD-1/PD-L1抑制剂的作用基础。17.慢病毒载体转导CAR基因是制备CAR-T细胞的唯一方法。答案:错误解析:慢病毒、逆转录病毒、转座子系统如SleepingBeauty、mRNA电转等均可用于CAR基因导入,慢病毒/逆转录病毒最为常用,但并非唯一。18.采用游标卡尺测量移植瘤长径a和短径b后,肿瘤体积常用公式为V=答案:正确解析:该公式是临床前小鼠移植瘤体积估算的常用公式,a为长径,b为短径。19.ELISA检测细胞因子浓度时,可直接用样本OD值代表浓度,不需要标准曲线。答案:错误解析:OD值只是酶标仪读数,需根据标准品的浓度-OD曲线换算出样本的实际浓度,同时还需扣除空白背景并考虑稀释倍数。20.PD-L1表达水平在所有实体瘤中均为免疫检查点抑制剂疗效的可靠预测标志物。答案:错误解析:PD-L1表达的预测价值在不同瘤种中存在差异,并受抗体克隆、判读阈值、肿瘤异质性等因素影响,并非所有实体瘤均可单靠PD-L1表达预测疗效。四、名词解释(每题4分,共20分)21.免疫检查点immunecheckpoint答案:T细胞等免疫细胞表面的一类调节分子,能通过共抑制信号抑制免疫细胞过度活化,维持免疫耐受。肿瘤常利用免疫检查点通路如PD-1、CTLA-4等逃避免疫监视。解析:核心为“抑制性受体/配体、负性调节、免疫耐受、肿瘤利用”。22.过继性细胞治疗adoptivecelltherapy,ACT答案:将体外扩增或基因修饰的自体或异体免疫细胞回输至患者体内,以直接杀伤肿瘤或增强抗肿瘤免疫应答的治疗策略。包括TIL、CAR-T、TCR-T等。解析:要点为“体外扩增/基因改造、免疫细胞回输、直接或间接抗肿瘤”。23.抗体依赖性细胞介导的细胞毒作用ADCC答案:抗体Fab段结合靶细胞表面抗原,Fc段与NK细胞等效应细胞表面FcγRIIIa结合,介导效应细胞释放穿孔素、颗粒酶等杀伤靶细胞的过程。解析:关键词为“抗体桥联、FcγRIIIa、NK细胞、穿孔素/颗粒酶”。24.免疫原性细胞死亡immunogeniccelldeath,ICD答案:某些细胞死亡方式可释放损伤相关分子模式DAMPs,如钙网蛋白、HMGB1、ATP等,促进树突状细胞成熟并激活T细胞免疫应答,从而激发抗肿瘤免疫。解析:核心为“DAMPs释放、DC成熟、T细胞免疫激活”,区别于单纯凋亡。25.细胞因子释放综合征cytokinereleasesyndrome,CRS答案:CAR-T等免疫治疗后,大量免疫细胞被激活并释放IL-6、IFN-γ等细胞因子引起的全身性炎症反应综合征,表现为发热、低血压、缺氧甚至多器官功能损害。解析:要点为“免疫细胞大量活化、细胞因子大量释放、全身炎症症状”。五、简答题(每题5分,共15分)26.简述CAR-T细胞制备的主要流程。答案:(1)采集患者外周血,分离外周血单个核细胞PBMC并富集T细胞;(2)使用抗CD3/CD28磁珠或抗体等激活T细胞;(3)通过慢病毒或逆转录病毒载体将CAR基因导入活化的T细胞;(4)体外扩增CAR-T细胞;(5)质控检测,包括细胞活力、CAR表达率、无菌和支原体检测等;(6)回输至患者体内。解析:按“采集分离—激活—转导—扩增—质控—回输”的流程作答即可。27.简述乳酸脱氢酶LDH释放实验检测细胞毒性的原理及优缺点。答案:原理:靶细胞被效应细胞杀伤后,胞内乳酸脱氢酶释放到培养上清中;LDH可催化乳酸生成丙酮酸和NADH,通过偶联显色反应检测LDH活性,以反映靶细胞死亡比例。优点:非放射性、操作简便、可实现高通量。缺点:效应细胞自身释放的LDH可能干扰结果,需设置严格对照;不能区分凋亡与坏死等死亡方式。解析:答出“LDH释放—酶催化显色—反映细胞死亡比例”即得核心分;优缺点各一条即可。28.简述流式细胞术检测肿瘤组织中CD8+T细胞浸润比例的样本制备要点。答案:(1)取新鲜肿瘤组织,机械剪碎并用胶原酶、DNase等消化制备单细胞悬液;(2)过滤去除未消化团块,离心洗涤;(3)台盼蓝计数并调整细胞密度;(4)加入Fc受体封闭剂,再分别加入CD45、CD3、CD8等荧光抗体染色;(5)加入7-AAD或DAPI等染料排除死细胞;(6)设置空白管、单染管和补偿管,上流式细胞仪检测并分析CD3+CD8+T细胞比例。解析:样本制备核心是“酶消化获得单细胞悬液、抗体染色、死活排除、对照设置”。六、综合分析/论述题(共20分)29.某课题组拟构建靶向HER2的第二代CAR-T细胞,并在体外验证其对HER2阳性乳腺癌细胞的杀伤活性。请设计一份实验方案,包括CAR基因结构设计、病毒包装与T细胞转导、CAR表达检测、体外杀伤实验及必要对照。答案:(1)CAR基因结构设计构建靶向HER2的第二代CAR编码序列:胞外区为抗HER2scFv,连接CD8α或IgG4铰链区,跨膜区为CD28或CD8α,胞内信号区为共刺激结构域CD28或4-1BB与CD3ζ链。将该序列克隆至慢病毒载体。(2)慢病毒包装与T细胞转导采用293T细胞共转染CAR转移质粒、包装质粒psPAX2和包膜质粒pMD2.G;48-72h收集病毒上清,超速离心或超滤浓缩。从健康供者PBMC中分选CD3+T细胞,用抗CD3/CD28磁珠或抗体激活24h后加入慢病毒浓缩液,可添加Polybrene或RetroNectin提高转导效率,继续扩增培养。(3)CAR表达检测用流式细胞术检测T细胞表面CAR表达:采用抗scFv标签抗体、ProteinL或重组HER2蛋白染色,并设未转导T细胞NTD作为阴性对照。同时可用qPCR检测CAR基因拷贝数以辅助评价转导效率和整合情况。(4)体外杀伤实验靶细胞选择HER2阳性乳腺癌细胞系如SKBR3和BT474,阴性对照改用HER2低表达或阴性细胞系,如MDA-MB-231或正常乳腺上皮细胞MCF-10A。效应细胞为CAR-T,对照设置未转导T细胞NTD和/或无关靶向CAR-T,如CD19CAR-T。按效靶比1:1、5:1、10:1共培养4-24h,通过LDH释放实验或流式细胞术CFSE/7-AAD双染检测靶细胞死亡比例;同时

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