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文档简介
1、1.寻找目标基因的基因序列和CDS阅读框(对应于蛋白质的基因序列)。1。选择CDS发育阅读框的基因序列(表达蛋白质的序列),共162个碱基;2.注意光盘的特点。如果前面的非编码区太长,就需要增加保护序列;如果后端非编码区较长,则表明CDS序列稳定可用;将找到的CDS序列粘贴到新的DNA文件框中,选择线性DNA,软件可以自动分析该序列中可能的限制性位点。2.登录并找到完整的质粒序列,然后将质粒序列粘贴到软件中,将目标基因与质粒的多个克隆位点(即限制性位点)进行比较。1.质粒选择限制性位点的原则:所用酶的限制性位点不能存在于靶基因上,否则靶基因将被切断。质粒上选择的限制性位点应尽可能短,以便为将来
2、其他可能的克隆保留位置。例如,在本实验中,选择了Aflll和BamH1作为质粒,并且在目标基因上没有限制性位点,这是由实验室购买的。可以选择和复制靶基因序列,并将其插入到从AflI到BamHI的序列中,选择特征来命名插入的靶基因UGT1A1。应在目标基因的终止密码子TGA之前添加透明质酸标签(阳性对照蛋白,即如果质粒被转染并成功表达,该蛋白必须存在并可被白细胞检测到),标签序列应在addgene官方网站上注册以供查询:/mol-bio-reference/genetic-code/, 3。克隆引物设计1。计算机设计:回到NCBI引物blast,复制目
3、标基因的CDS序列(共1602个碱基),在框中输入|a|和CDS序列,分别输入1602的最小和最大值(代表blast CDS的所有基因);手工设计:遵循气相色谱尽可能少,Tm尽可能小的原则,5次结束后选择20左右;从限制性位点的末端算起,3个末端的数目是59,因为在除去CDS框架的20个碱基之后,应该包括HA位点和限制性位点的序列。5-末端引物序列是atggctgtggagtcccag,但添加了保护性碱基AAATATATCTTAAG,最后正向引物是aaatatatttaagatggctggagtccag。tcaacgtaatctggaacatcgtatgggtaatgggtcttggatttg
4、ggct,靶基因的20个碱基,起点(无BamHI限制性位点)和3-末端引物设计的方向,最后应调整引物序列。点击“53”获得反向引物序列tcaagcgtaatctgggaatgggtcttggatttgggct。同时,应在5端位置增加一个保护基AAATATATGGATCC。最终的反向引物序列是aatattggatctcaggtaatgggtcttggatttgggct。构建表达载体的一般过程是设计引物(如上所述,综合考虑透明质酸和CDS序列),选择合适的样品细胞(本实验中的UGT1A1是肝脏中的一种药物代谢酶,因此最好选择肝细胞系),提取信使核糖核酸并将其反向转录成cDNA,通过琼脂糖凝胶电泳凝胶切割回收特异
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