质粒DNA的微量提取SDS法

1、实验二 质粒DNA的微量提取 碱裂解法（SDS法）,一.目的与要求 通过质粒的一些基本特性、质粒DNA的提取技术，学习用碱变性法提取质粒DNA的方法。,二.相关知识 质粒(Plasmid) ：独立于染色体外的，能自主复制且稳定遗传的遗传因子。绝大多数是一种环状的双链DNA分子。 广泛存在于细菌、放线菌、真菌以及一些动植物细胞中，在细菌细胞中最多。,细菌质粒是用的最多的质粒类群，其大小从1Kb-200Kb，它们复制时利用宿主细胞复制自身基因组DNA的同一组酶系。,质粒DNA的存在区域和结构特征,电镜中质粒DNA的形态,严谨型：质粒的复制受到寄主细胞严格控制，与寄主细胞的复制偶联同步。因此，在一个

2、细胞中只有1个或几个拷贝； 松驰型：质粒的复制是在寄主细胞的松弛控制之下的，每个细胞中含有10-200个拷贝。 用一定的药物处理，抑制寄主蛋白质的合成才会使质粒拷贝数增至几千份。 质粒pBR322即属于松弛型质粒，要经过氯霉素处理才能达到更高拷贝数。,质粒类型：,载体(Vector)： 用于携带重组DNA，并且能够使外源DNA一起复制或表达的质粒(运载工具)。具备的条件:,1.具备条件 （1）易于鉴定； （2）在受体细胞中 可以独立复制； （3）易于筛选； （4）易于导入受体细胞。,2.结构特征 (1)抗性基因（Ampicillin gene, Kanamycine gene) (2)启始复制

3、子（ori)； (3)多克隆位点(MSC)； (4)标记基因(LacZ gene)。,DNA 是具有一定结构的物质，特殊的环境会导致DNA的变性，如加热、极端pH值、有机溶剂、尿素、酰胺试剂等，而适宜的环境又可以使DNA复性。,三.原理：,SDS是一种阴离子表面活性剂，既能使细菌细胞裂解，又能使一些蛋白质变性，所以SDS处理细菌细胞后，会导致细菌细胞壁的破裂，从而使质粒DNA以及基因组DNA从细胞中同时释放出来。释放出来的DNA遇到强碱性（NaOH）环境，就会变性。然后，用酸性乙酸钾中和溶液，使溶液处于中性，质粒DNA将迅速复性，而基因组DNA，由于分子巨大，难以复性。离心后，质粒DNA将在上

4、清中，而基因组DNA则与细胞碎片一起沉淀到离心管的底部。,四.细菌裂解的方法： (1)碱裂解法：0.2molNaOH+1%SDS;(2)煮沸裂解法:沸水煮沸40s;(3)SDS裂解法：10%SDS, 用于质粒大量提取。,五.DNA浓度的测定：,(1)分光光度计法:碱基(G,A,T,C）在260nm处具有强吸收峰，一般在中性pH值左右的环境中进行测定。这种方法常测定比较纯的样品。 (2)荧光的强度法： (3)凝胶电泳比对法，与标准分子量相比较。,六. 材料和仪器 1.材料: 含有质粒P3.5K-EGFP的大肠杆菌DH5。P3.5K-EGFP是一种酵母荧光表达载体，常用于检测酵母中外源基因表达强度

5、和亚细胞定位。 2.试剂： 裂解液一，裂解液二，裂解液三，酚氯仿，异丙醇，70%乙醇，TE等。 3.仪器设备： 高速离心机，移液器，摇床等,4.加入400l新配制的裂解液二，加盖颠倒6-7次使之混匀，放置3-5min（不得超过5min）;,七.质粒微量提取的方法,培养细菌,收集菌体,悬浮菌体,裂解菌体,1.将带有质粒的DH5a接种到3-5ml含有amp抗生素的液体培养基，37培养12-16h;,2.取液体培养液1.4ml于Ep管中，10000rpm离心1min，去掉上清液，重复步骤2；最后瞬时离心后，用移液器去除上清。（所有去除残液均用此法）,3.加入200l裂解液一，涡旋混匀放置5min;,

6、5.加入300 L裂解液三 (乙酸钾溶液)，加盖后颠倒6-7次混匀，放置3-5min;,中和复性,6.用台式高速离心机，12000rpm离心10min。,离心除杂,12.将分离出的质粒DNA置于-20保存备用。,9.沉淀用0.5mL70乙醇清洗一次，12000rpm离心5min，弃上清，重复9；,11.加入20-30l含有20g/ml RNase的ddH2O或TE 溶解，室温放置15-30min，使DNA充分溶解.,去蛋白,沉淀洗涤,7.将700 L上清移入另一干净离心管，加入等体积的酚、氯仿（700ul），12000rpm离心10min。,10.瞬时离心，用移液器将管底残余液体移除，小管倒置

7、于吸水纸上，室温自然干燥至透明;,样品干燥,样品溶解,样品保存,8.取600 L上清到另一离心管中，加入等体积冰冻异丙醇，混匀，12000r/min离心5min，弃上清;,离心收集,(1)取2l提取的质粒DNA，加入98L蒸馏水对待测DNA样品做1:50(或更高倍数的稀释); (2)蒸馏水作为空白,在波长260nm、280nm处调节紫外分光光度计读数至零。 (3)加入DNA稀释液，测定260nm 及280nm的吸收值，并记录。 (4) 通过计算确定DNA浓度或纯度，浓度单位为g /ml, dsDNA=50(OD260) 稀释倍数,补充内容1.用分光光度计法定量DNA,260nm 读数用于计算样品中核酸的浓度，OD260值为1相当于约50g /ml双链DNA，33g /ml单链。可根据在260nm以及在280nm的读数的比值（OD260/OD280）估计核酸的纯度。一般DNA的纯品，其比值为1.8，低于此值说明有蛋白质或其它杂质的污染。,补充内容2.凝胶电泳检测DNA的浓度,实验步骤 实验步骤见下一个试验琼脂糖凝胶电泳技术的原理和方法,结果 1%的琼脂糖凝胶，90V,40分钟。 NEB 标准分子量片段(1kb DNA Ladder),1 kb DNA Ladder虽然不能对