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L o g o 亲和层析纯化技术要点 6th Group 小组成员:徐鹏,蒋美玲,季成,滕嘉琳, 金爽,任沛 L o g o v生物制药工艺上主要运用的几种色谱技术 分配色谱 吸附色谱 离子交换色谱 亲和色谱 凝胶色谱 6th Group L o g o Affinity Chromatography 亲和层析技术概述1 亲和层析基本过程2 His-tag亲和层析常见问题3 Tips4 6th Group L o g o 亲和层析技术概述 vWhat is Affinity Chromatography? 亲和层析是利用生物体中多数大分子物质具 有与某些相应的分子专一性可逆结合的特性 而建立的分离纯化技术 其专一性是由分子有关作用基团(官能团) 的化学结构与它们的空间排列决定的 亲和层析技术是目前分离纯化药物蛋白等生 物太分子最重要的方法之一 6th Group L o g o Background 生物大分子自身的特殊性和复杂性:热稳定性差 ,对环境的pH值、有机溶剂、某些无机载体和金 属离子很敏感。 因此欲高效分离纯化存在于相当大体积的组织匀 浆或发酵液中的极少量目标产物,同时又混有大 量理化性质相仿的其它生物活性物质时,仅根据 理化性质不同设计分离纯化工艺已远不能满足生 物技术发展的需要。这时就必须从生物亲和作用 力的角度进行研究,而亲和技术正是在此背景下 产生的。 6th Group L o g o 聚苯乙烯载聚苯乙烯载 体连接上抗体连接上抗 原,分离血原,分离血 液中相应的液中相应的 抗体抗体 用淀粉装柱用淀粉装柱 来分离淀粉来分离淀粉 酶酶第一第一 次认识到亲次认识到亲 和层析和层析 琼脂糖载体取代聚苯琼脂糖载体取代聚苯 乙烯载体,使亲和层乙烯载体,使亲和层 析得到高速发展,成析得到高速发展,成 为为“ “第二大类第二大类” ”分离分离 纯化手段,应用广泛纯化手段,应用广泛 ,亲和对众多。,亲和对众多。 亲和层析发展史 191019101955195519671967 6th Group L o g o 基本概念 v亲和作用:生物物质具有识别特定物质并 与该物质分子结合的能力,且可以区分结 构与性质相似的其他分子,这种特异性的 相互作用称为亲和作用。 v配基:亲和层析中能被某一生物大分子识别 和可逆结合的生物专一性物质。 v配体:与配基是相对的概念。 6th Group L o g o v配基应具备的特性: v1.对于欲纯化的生物物质应具有专一亲和性 v2.必须具备能被修饰的功能基团 常见配基-配体物质对:酶-底物 酶-抑制物 激素-受体 抗原-抗体 金属离子-氨基酸残基 cDNAcDNA- -对应的基因片段,等对应的基因片段,等 6th Group L o g o 亲和层析的特点 亲和层析 通用性差,洗脱不缓和通用性差,洗脱不缓和 高度特异性高度特异性 高效能 操作简便 快速 亲和力缓和 应用广泛 6th Group L o g o 亲和层析基本过程 配基固定化 (Immobilise) 基质Matrix(载体):亲和层析中与配基共价结 合,使其固相化的物质。 6th Group L o g o 吸附 (Adsorption) 洗脱 (Elution ) 6th Group L o g o 洗脱 elution 洗涤 wash 上样 Sample applic. 平衡 equilibration 6th Group L o g o 6th Group L o g o 洗脱方法 非特异性洗脱:改变缓冲液的pH、离子强度 、介电常数或温度使物质构象改变,浓缩、洗 脱后立即中和稀释或透析,使蛋白质迅速恢复 到天然结构 特异性洗脱:再次利用生物学特异性只洗脱 和配基专一作用的蛋白质,不洗脱由于非专一 吸附上去的杂蛋白 6th Group L o g o 6th Group L o g o 亲和层析的基本类型 v生物亲和层析 v免疫亲和层析 v金属离子螯合亲和层析 v染料亲和层析 v拟生物亲和层析 6th Group L o g o 金属离子螯合亲和层析 v金属离子螯合亲和层析是利用金属离子的 络合或形成螯合物的能力吸附蛋白质的分 离系统。 Ni Sepharose 6 Fast Flow v含His-tag的rhEGF: His的咪唑基可以与 Ni2+特异性结合。 6th Group L o g o 6th Group L o g o 常见问题 1 1 纯化的组分中没有 His标签的蛋白? 2 2 3 3 样品黏度太大? 层析柱堵塞? 6th Group L o g o Tips 一些从实验手册里总结出来的Tips v1. 避免缓冲液中有高浓度的电子供体基团,比如 :NH4+,甘氨酸,精氨酸,Tris,等等; v2. 各种缓冲液中不能有强螯合剂,如EDTA, EGTA,等等; v3. 各种缓冲液里不能有高浓度的强还原,比如 DTT,防止二价Ni被还原; v4. 不能含离子型的去垢剂,比如SDS,防止Ni流 失; v5. 在破碎细胞的时候建议加入蛋白酶抑制剂,比 如0.1-1mM的PMSF,防止目的蛋白被降解; 6th Group L o g o v6. 缓冲液里可以加入甘油,防止蛋白之间由于疏 水相互作用而发生聚集沉淀,甘油浓度最高可达 50%(v/v) v7. 应避免含碳酸氢钠,柠檬酸等物质; v8. 缓冲液里NaCl的浓度应在300mM到2M之间; v9. 可加入变性剂促溶,盐酸胍(最高可6M),尿 素(最高可8M) v10.可加入非离子型去垢剂,如Triton,Tween, NP40等,最高2%,可以减少背景蛋白污染和去 除核酸污染; 6th Group L o g o Click to edit company slogan . 6th Group L o g o 一、His标签蛋白没有结合上,都流穿了 v可能原因1:超声的功率不对(太大,蛋白炭化, 太小,蛋白没有释放) 策略:改变超声功率,并在超声前加入溶菌酶 v可能原因2:样品或者是结合缓冲液不正确 策略:检测pH 及样品和结合缓冲液的组成份。确 保在溶液 中鳌合剂或强还原剂的浓度及咪唑的浓 度不是太高。 6th Group L o g o 一、His标签蛋白没有结合上,都流穿了 v可能原因3:组氨酸的标签没有完全的暴露 策略:在变性条件下(用48 M 脲,或46 M盐 酸胍)进行纯化。 v可能原因4:His标签丢失 策略1:WB或者anti-his的抗体检查His是否表达 ,上游构建,改变his-tag的位置(C-terminal or N- terminal),必要时增加his个数(常用6-10个)。 策略2:孵育的时间不够,降低流速和增加孵育的 时间。 策略3:改变螯合的金属离子,寻找到最佳的结合 金属离子。 6th Group L o g o 二、His标签蛋白与Ni2+结合了,没有被洗脱下来 v 可能原因:洗脱条件太温和(组氨酸标记的蛋白质仍然结合在柱上, 结合力较强) 策略:用增加咪唑的梯度洗脱或降低pH 来找出最佳的洗脱条件。 v 可能原因:蛋白已沉淀在柱上 策略:减少上样量,或使用咪唑的线性梯度而不是分步洗脱以降低蛋 白的浓度。试用去污剂或改变NaCl 的浓度,或在变性条件(去折叠)下 洗脱(用48 M脲,或46 M 盐酸胍)。 v 可能原因:非特异性疏水或其他相互反应 策略:加非离子去污剂到洗脱缓冲液(如,2

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