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文档简介

,第一节 植物组织培养的操作方法概述,一、外植体的选择 二、外植体的灭菌 三、外植体的接种和培养 四、外植体的成苗途径 五、污染的原因及其预防措施 六、外植体的褐变及其防止措施 七、培养物的玻璃化现象及其防止措施 八、试管苗的驯化与移栽,外植体(Explants):指植物离体培养的各种接种材料,包括植物体的各种器官、组织、细胞和原生质体。,一、 外植体的选择,外植体的选择依据 优良的种质 健壮的植株 大小适宜的外植体 适宜的发育时期 适宜的部位 适宜生理状态和发育年龄的器官 细胞培养材料的选择,(二) 外植体灭菌的一般步骤,二、外植体的灭菌,(一)常用灭菌剂的使用及其效果,(三)各种外植体的灭菌方法,(一)常用消毒剂,自:曹孜义,(二) 外植体灭菌的一般步骤,3. 将适当浓度的消毒液(0.1%升汞或2%次氯酸钠)(含有几滴活化剂Tween20或Tween 80),使材料完全浸没在消毒液中,盖上盖,把玻璃瓶置入超净工作台灭菌一定时间。在灭菌期间须把玻璃瓶摇动23次。 4消毒处理后,将瓶盖打开,将消毒液倒出,注入适量的无菌蒸馏水,再盖上盖,摇动数次,将水倒掉,重复34次。,1预处理,先对植物组织进行修整,去掉不需要的部分,将准备使用的植物材料在流水中冲洗干净。经过预处理的植物材料,其表面仍有很多细菌和真菌。 2将植物组织块置于一个有丝盖的玻璃瓶中,注入75%的酒精溶液埋没材料,浸泡10S左右。倒出酒精,用无菌水冲洗一次。,1、茎尖、茎段及叶片等的消毒 消毒前要经自来水较长时间的冲洗。 消毒时要用70%的酒精浸泡数秒,无菌水冲洗23次,然后用2%10%的次氯酸钠溶液浸泡1025min,若材料有茸毛最好在消毒液中加入几滴吐温-80,或者用0.10.2升汞浸泡消毒510分钟消毒后,用无菌水冲洗3次后方可接种。 2、果实及种子的消毒 用自来水冲洗1020分钟或更长,用纯酒精迅速漂洗一下。 果实用2%次氯酸钠溶液浸 10min后,用无菌水冲洗23次。 种子要先用10%次氯酸钠浸泡 2030min甚至几小时。对难以消毒的还可用0.l%升汞或1%2%溴水消毒5min。 胚或胚乳培养时,对种皮太硬的种子,可先去掉种皮,再用4%10%的次氯酸钠溶液浸泡810min,经无菌水冲洗后,即可取出接种。,(三)几种外植体的灭菌方法,70酒精擦洗花蕾,或浸泡数秒钟 饱和漂白粉上清液:浸泡10分钟;或次氯酸钠液25:810分钟 无菌水冲洗几次后,吸去水分,剥取花药或胚珠接种。,3、花药的消毒,预先用自来水洗涤,再用软毛刷刷洗,且用刀切去损伤及污染严重部位,吸水纸吸干后,再用酒精漂洗。 可采用0.1%0.2%升汞浸510min或2%次氯酸钠溶液浸1015min,然后以无菌水冲洗3次,用无菌滤纸吸干后可接种。,4、根及地下部器官的消毒,三、外植体的接种和培养,(一)无菌操作 (二)外植体的培养,植物组织培养的接种:把经过表面消毒后的植物材料切碎或分离出器官、组织细胞,并把它们转放到无菌培养基上的全部操作过程,是一种无菌技术。 在操作过程中引起的污染来源:主要是由材料本身带菌和工作人员本身引起的。,(一)无菌操作,污染的主要来源是空气中的细菌和真菌孢子 每次接种前半小时 地面:用70酒精喷雾使空气的灰尘沉降。 紫外线灯照射20分钟。 工作台面要用新洁尔灭或酒精擦洗。,1、接种室的消毒,入无菌室前,要洗手。l%新洁尔灭溶液内5分钟 入室时要穿上经过消毒的工作服、帽子、口罩和鞋子等。 操作前要用70%酒精擦洗手,操作中要经常用酒精擦洗手。不准讲话,以免微生物污染材料、培养基和用具。每次重新操作都要把工具在火焰上消毒。 必须在酒精灯火焰处进行操作,如打开瓶口,转接材料。盖瓶盖前应将瓶口在火焰上烧一下,再将盖子也在火焰上烧一下,然后盖上。,2、工作人员要求,切取和接种较大的材料肉眼观察即可操作分离,较小的材料需在双筒解剖镜下操作。 分离工具一定要放好,切割动作要快,防止挤压使材料损伤而失败。 接种时要防止交叉污染的发生,3、材料的切取,酒精擦拭手,外植体消毒,浸泡5min,器械消毒,酒精灯灼烧,4、 接种的具体操作,旋转灼烧,取外植体,接种,盖好瓶塞,1、培养条件: 温度:常保持在232,夜温低12 光照时数:大多数情况下为16h(暗培养不需要光照,例如起始培养的前几天不需要光照) 光照强度:10003000lx,白色荧光灯,光的作用是满足形态建成的需要(诱导) 相对湿度:培养室的相对湿度一般不控制。根据需要适当调整培养间湿度,(二)外植体培养,接种后37天内,主要是检查其污染情况。 增殖、继代培养,建立了无菌培养系。 细胞学观察:一般每隔35天观察一次。及时记录。 观察方法根据培养方式灵活掌握: 可用显微镜进行定点观察如平板培养 可用倒置显微镜观察如液体培养,2、定期检查和细胞学观察,1外植体先形成愈伤组织,再分化成完整 的植株。,四、外植体的成苗途径,2胚状体发生,3外植体经诱导后直接形成根与芽,发育成完整的植株,4原球茎型-图片,石斛兰的原球茎,外植体,愈伤组织,根、芽,芽,根,根,芽,胚状体,根、芽,试 管 苗,外植体的成苗途径,不定芽形成-多细胞参与,胚状体形成过程-单细胞参与,体细胞胚的发育过程,低CTK/IAA,外植体,愈伤组织,芽,根,脱分化,再分化,低CTK/IAA,根,完 整 植 株,生长调节物质控制器官分化的模式,芽,高CTK/IAA,低CTK/IAA,五、污染的原因及其预防措施,污染 概念:是指在组织培养过程中培养基和培养材料滋生杂菌,导致培养失败的现象。 原因: 细菌 菌斑呈黏液状物。 除材料带菌或培养基灭菌不彻底会造成成批接种材料被细菌污染外,操作人员的不慎也是造成细菌污染的重要原因。因此接种人员的手应经常用 70酒精擦净,镊子和接种针在使用前必须在火焰上烧红。 真菌 污染部分长有不同颜色的霉菌,在接种后310d才能发现, 造成真菌污染的原因多为周围环境的不清洁、超净工作台的过滤装置失效、培养瓶的口径过大、操作不慎等 途径: 外植体带菌; 培养基及器皿灭菌不彻底; 操作人员未遵守操作规程等。,防止材料带菌的措施 用茎尖作外植体时,可在室内或无菌条件下对枝条先进行预培养。 避免阴雨天在田间采取外植体。 对于材料内部污染的材料采取特殊方法。 外植体的灭菌 多次灭菌法 多种药液交替浸泡法 金属器械的灭菌 一般用火焰灭菌法,即把金属器械放在 95的酒精中浸一下,然后放在火焰上燃烧灭菌。这一步骤应当在无菌操作过程中反复进行。 金属器械也可以用干热灭菌法灭菌,即将拭净或烘干的金属器械用纸包好,盛在金属盒内,放在烘箱中灭菌。 布质制品的灭菌: 工作服、口罩、帽子等布质品均用湿热灭菌法,即将洗净晾干的布质品,放入高压灭菌器中,在压力为108kPa,温度为121的情况下,灭菌2030min 无菌操作室的灭菌: 无菌操作室的地面、墙壁和工作台的灭菌可用2的新洁尔灭或 70的酒精擦洗,然后用紫外灯照射约20min。使用前用70的酒精喷雾,使空间灰尘落下。 一年中要定期一二次用甲醛和高锰酸钾熏蒸。 操作人员,污染的预防措施,六、外植体的褐变及其防止措施,(一)褐变的原因 1.基因型 2.外植体的生理状态 3.培养基的成分 无机盐浓度;植物生长调节物质;外植体脱分化条件;转移时间过长。 (二)褐变的防止措施 1.选择适宜的外植体 2.最佳培养基 3.连续转移 4.加抗氧化剂 5.活性炭,七、培养物的玻璃化现象及其预防措施,(一)玻璃化现象 叶、嫩梢呈水晶透明或半透明,植株矮小肿胀,失绿,叶片皱缩成纵向卷曲,脆弱易碎; 叶表皮缺少角质层蜡质,没有功能性气孔,不具有栅栏组织,仅有海绵组织; 体内含水量高,但干物质、叶绿素、蛋白质、纤维素和木质素含量低。,激素浓度 激素浓度增加尤其是细胞分裂素浓度提高(或细胞分裂素与生长素比例高)。 琼脂浓度 琼脂浓度低时玻璃化苗比例增加,水浸状严重。 温度:适宜的温度可以使试管苗生长良好。 光照时间 多数植物在1012h光照下都生长良好,大于15h时,玻璃化苗明显增加。 通风条件 愈伤组织和试管苗生长越快,越容易形成玻璃化苗。 愈伤组织和试管苗长时间培养,不能及时转移,容易出现玻璃化苗。 组织培养所用瓶盖棉塞、滤纸、封口纸、牛皮纸通气较好,玻璃化苗的比例较低。 离子水平 培养基中离子种类及其比例不适宜该种植物,玻璃化苗的比例就会增加。,(二)产生玻璃化苗的因素,适当控制培养基中无机营养成分; 适当提高培养基中蔗糖和琼脂的浓度; 适当降低细胞分裂素和赤霉素的浓度; 增加自然光照,控制光照时间; 控制好温度; 改善培养器皿的气体交换状况 在培养基中添加其他物质, 加入间苯三酚或根皮苷或其他添加物,可有效地减轻或防治试管苗玻璃化。 如添加马铃薯汁液法可降低油菜玻璃苗的产生频率; 0.5mgL多效唑或10mgL的矮壮素可减少重瓣丝石竹试管苗玻璃化的发生; 1.52.5g/L的聚乙烯醇防治苹果砧木玻璃化 。 加入 0.3的活性炭还可降低玻璃苗的产生频率。,(三)预防措施,试管苗的特点 试管苗的驯化 试管苗的移栽 提高试管苗移栽成活率的途径,八、 试管苗的驯化与移栽,(一)、试管苗的特点,试管苗的生态环境 高温且恒温;高湿;弱光;无菌。 试管苗的特点 试管苗生长细弱,茎、叶表面角质层不发达; 试管苗茎、叶虽呈绿色,但叶绿体的光合作用较差; 试管苗的叶片气孔数目少,活性差; 试管苗根的吸收功能弱。,试管苗和普通苗的根解剖比较,蓝莓,(二)、试管苗的驯化,驯化的目的: 在于提高试管苗对外界环境条件的适应性,提高其光合作用的能力,促使试管苗健壮,最终达到提高试管苗的移栽成活率。 驯化的原则: 应从温度、湿度、光照及有无菌态等环境要素进行,驯化开始数天内,应和培养时的环境条件相似;驯化后期,则要与预计的栽培条件相似,从而达到逐步适应的目的。 驯化的方法:炼苗 由培养室转移到半遮荫的自然光下锻炼,在自然光下恢复植物体内叶绿体的光合作用能力和健壮度 打开瓶盖注入少量自来水使幼苗逐渐降低温度,转向有菌,这样幼苗周围的环境就会逐步与自然环境相似。,试管苗的驯化,(三)、试管苗的移栽,常规移栽法 直接移栽法 嫁接移栽法 指选取生长良好的同一植物的实生苗或幼苗作砧木,用试管苗作接穗进行嫁接的方法。,(四)、提高试管苗移栽成活率的途径,试管苗的生理状况 植物生长调节物质 无机盐浓度 活性炭 环境因子 移栽过程中试管苗从无菌向有菌逐渐过渡,1进行植物组织培养需要哪些设备?各有何作用? 2植物组织培养主要包括哪些环节?各环节的主要工 作内容是什么? 3培养基包括哪些基本成分?其作用是什么?如何配制? 4如何对外植体、 培养基、培养器皿、接种器械进 行灭菌? 5离体培养的植物材料对光、温、湿度有何要求? 如何调控? 6. 何谓玻璃化?何谓褐化?如何克服?,复 习 思 考 题,第二节 实验室的设计与设备,一、实验室设计,准备间、缓冲室、接种室、培养间 驯化室、温室,准备室,高 压 灭 菌 器,电子天平 (0.0001g, 0.01g),酸度计,1.紫外线灭菌灯 2.日光灯

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