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(微生物学专业论文)杜氏盐藻纯化及生物学特性研究.pdf.pdf 免费下载
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文档简介
摘要 本文系统研究了杜氏热藻的生物学特性,主要内容包括杜氏盐藻无菌纯化、杜氏 盐藻生理学特性、杜氏盐藻遗传学特性等三部分。 采用抗生素结合离心技术、离心洗涤结合稀释技术以及盐藻耐盐特性等三种1 i 川 方法对杜氏热藻进行无菌纯化,获得无菌杜氏盐藻藻株a l 、a 7 、a 1 3 ,a 1 4 和a 2 1 。 经过不同方法检测,确证该5 藻株属无菌藻株。 利用无菌藻株a 1 研究了影响杜氏盐藻生长的营养因子,如赫度、维生素、激察、 有机碳源、有机氮源、动植物抽提液等。结果表明:该盐藻藻株i 适应0 2 9 2 5 9 l “n a c l 浓度,n a c i 浓度的突增会使杜氏赫藻的生长出现停滞,停滞期的长短 与终n a c l 浓度有关:添加1 5 0 p g l 。v b l 、1 6 0 g l 。v b 6 、0 5 g l “v b l 2 3 2 0 m g 一v c 及2 ,o 斗g l v h 可在一定程度上促进藻的生长:液体培养发现葡萄糖的促长效果比醋 酸钾好,以1 肛1 5 9 l “浓度为最佳,而固体培养时则以1 0 3 0 9 l 。效果最佳:尿素的 促长效果要好于甘氨酸,以o 1 9 - l 4 浓度为最佳; n a a 、肌醇、6 一b a 、k t 和g a 促进藻细胞生长的最佳浓度分别为3 、5 5 、4 o 、o 1 和0 2 m g l _ l ;2 0 4 0 m l l 1 龟汤 可强烈地促进藻细胞分裂,建议在盐藻培养基中添加一定裱度的鱼汤作为献藻完全培 养基,以用于筛选营养缺陷型藻株;1 0 0 m l l - 1 土豆汁和l o o m l - l 1 豆芽汁均可以在 定程度上促进藻落的生长;蛋白胨以4 两g l o 效果最佳。选取四种促长效果最佳的营 养因子进行_ _ i _ f 交,结果表明以5 8 5 9 l “n a c l 、3 2 0 m g l “v c 、o 2 9 l 。尿素和1 5 9 一 葡萄糖为最优组合。 杜氏赫藻对抗生素、除草剂和代谢产物类似物敏感程度因抗生素、除草剂和代谢 产物种类不同而有所差异。液体培养中c m 、e m 和p p t 对盐藻的最低抑制浓度分别 为1 2 0 、2 8 和5 i n g l ;固体培养c m 、e m 、p p t 和a c t 对赫藻的最低抑制浓度6 0 、 1 6 、3 和o 2 m g 乙- :固体培养中盐藻对s m 、k m 、a m p 和n m 均不敏感,甚至浓度 达1 0 0 0 m g l 1 胡i 不能产生任何抑制作用。液体培养中刀豆氨酸、异烟肼、玲监氨酸平 6 - 毓基嘌呤对盐藻的最低抑制浓度均超过2 0 0 m g l i ,而p 氟苯丙氨酸最低抑制浓度 则为1 8 0 m g l 。 盐藻无完整的纤维质细胞壁,有一层糖蛋白包裹于外层。研究发现以5 m m o 【l 一一 h e p e sp h 7 ,5 为缓冲液和o 5 m o l l 山梨醇为稳渗剂,采用4 0 0 m g ,l “的链霉蛋向酶, 3 0 ,酶解l 小时可以获得较高的原生质体形成率,且效果要略好f 蛋白酶k 、术瓜 蛋白酶和胃蛋白酶。 和其它一砦微藻相比,杜氏盐藻对紫外线抵抗能力较强。紫外线致死削景略人j j 6 0 j m 五。9 0 致死剂量为1 3 9 2j n 1 t 2 ,该剂量适于作为诱变剂量。 采用不同方法对盐藻进行保种研究,结果表明盐藻适宜于液体、平板和斜面保种。 关键词:杜氏盐藻无菌纯化营养因子抗生素原生质体 a b s t r a c t i nm i st h e s i s ,t h eb i o i o g i c a lc h a r a c t e r i s t i co fm 胛棚已肋s 劬门口,w h i c hi n c i u d e dt h e a x e n i cp u r i f i c a t i o n ,p h y s i o i o g yc h a r a c t e r i s t i c sa n dg e n e t i c sc h a r a c t e r i s t i c s ,w a ss t u d i e d s y s t e m a t i c a l l y t h r e ed i f f e r e mm e t l l o d si n c l u d i n gt h ec o m b i n 砒i o no fa n t i b i o t i c sa n dc e n t r i f u g a l t e c h n j q u e ,l ec o m b i n a t i o no f c t r i 地a l 、v a s h i n gt e c h n i q u ea 1 1 dd i l u t i o nm e t h o d ,a n dh i 曲 c o n c e n t r a t i o no fs a 】tw e r ed e s i g n e dt op m c e e df o rp u r i 矗c a t i o no fd 阳z f ”“f j v ea x e n i c 啦a i n so fd s 甜f 胛口w e r eo b t a i n e d ,a i l da x e n i cs t a t u sw a sc o n f i r n l e db yd i a e r e n tm e t h o d s t h ei n f l u e n c eo f d i 仃b r e n tn u t r i t i o nf a c t o r s ,t h es a i tc o n c e n 仃a t i o n ,v “a m i n s ,h o n l l o n e s o r g a n i cc a r b o ns o u r c e s ,0 唱a n i cn i 仃o g e ns o u r c e sa n de x t r a c t so fa 1 1 i m a la n dp l a l l t ,o nt h e 伊o w mo fs t r a i na lo fd s 耐泐w e r ei n v e s t i g a t e d ,t h er e s u h ss h o w e dt h a td 期加口c a n a d a p tt o0 2 9 2 5 9 l - ln a c l ,a n da b r u p ti n c r e a s eo fn a c lw o u l di n d u c el a gp h a s eo ft h e g r o w t l lo fds 棚肝口,a n dt h el e n g mo ft h ep e r i o dh a sb e e nr e l a t e dw i t hc o n c e n t r a t i o no f n a c l t h eg r o 州ho f d 硼z 泐w a sp r o m o t e di ns o m e 啪yb yv b i ,v b 6 ,v b l 2 ,v co rv h a n dt h eb e s tc o n c e n 仃a t i o n sw e r e1 5 0 “g l ,1 6 0 扯g l ,o 5 “g l - 。,3 2 0 m g l 。a n d2 o “g l , r e s p e c t j v e j y 确ep r o m o t i n ge a e c to fg l u c o s ew a sb e 托e rt h a l lp o t a s s i u ma c e t a t e ia n dt h e m o s ts u i t a b l ec o n c e n t r a t i o n si n l i q u i d 锄ds o l j dm e d i 啪w e r e10 15 9 l - l a n d l o 3 0 9 l 1 r e s p e c t i v e l y t h ep r o i n o t i n ge 仃e c to f u r e a 啪sb e t c e rt h a ng l y c i n e ,a 1 1 dt h em o s t s u i t a b l ec o n c e n t r a t i o ni n l i q u i dm e d i u m 、v a s0 1 9 + l i n o s i t o l ,n a a ,6 一b a ,k ta n dg a c o u l da l s op r o m o t e 廿1 eg r o m ho fd5 口,加吼a n dt h eb e s tc o n c e n t r a t i o n sw e r e5 5 3 ,4 ,0 1 a n do 2 m g l “r e s p e c t i v e l y 2 0 4 0 m i l 叫f i s hs o u p ,1 0 0 m l l - 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n 一【2 e 恤m e s l l l f o n i ca c i d 】 m i n i m 哪i n h j b i t e dc o n c e n n j a t i o n 6 一b e n z y ia m i n o p 面n e 百b b e r d l m k i n e t i n n a p h t l l a l e n e a c e t i ca c i d v i t 锄i n eb i v i t a m i n eb 6 v i t a m i n eb 1 2 v i 协m i i l e c v i t a m j n e h d i l l l e t h y l - s u l f o x i d e c h l o r o p h y n c o n n d l d a y g e n e m 廿o n 中文名 庆大霉素 氨节菏霉素 红霉素 氯霉素 草酊磷 新霉素 链霉素 放线菌酮 卡那霉素 n 双( 2 羟乙基) 哌 嗪n 2 ( 乙磺酸) 最低抑制浓度 6 苄氨摹嘌呤 赤霉素 激动素 ( 6 糠基嘌呤) 萘乙酸 维生素b l 维生素战 维生素b 1 2 维生素c 维q 三索h ( 生物素) 二甲基姬砜 绿索 对照 灭 代 泰经作:肴、导肺阀魁 垒文公希 第一章引言 海洋是生物资源的宝库,海藻尤其是杜氏盐藻的研究与开发正受到越来越多的关 注。札氏盐藻属绿藻门、绿藻纲、团藻目、杜氏藻科、杜氏藻属,广泛分布于海洋、 盐湖等盐度较高区域,无细胞壁,原生质膜外有一层糖蛋白外被2 1 。藻个体通常旱卵 圆形,具2 条等长的鞭毛。藻体内有一杯状叶绿体,内含一淀粉核,前端有重【色眼 点。营养繁殖为纵裂,有性生殖为同配生殖,形成红色或绿色接合予。 1 1 研究价值和意义 在一定的生长条件下,盐藻细胞内可大量积累b 一胡萝卜素和甘油,在食品、 医药保健、化工和养殖业中有独特经济价值。 盐藻应用于理论研究有如下优点: ( 1 )盐藻有广泛的盐适应度,有利于进行相关耐舳基因和渗透调节机制的研究; ( 2 )营养细胞是单倍体,便于对其进行遗传改造和遗传分析: ( 3 )缺乏细胞壁,易于制备原生质体,为遗传转化和细胞融合奠定了良好的基础; ( 4 ) 易培养,町以构建新的生物反应器,高效地表达些重要基因。 本文拟从影响杜氏盐藻生长的营养因子出发,研究生长因子( 维生素j 激素等) 、 有机碳、氮源和复合营养等对杜氏盐藻生长的影响,探讨杜氏盐藻生理生化特性,为 进一一步开展盐藻分子遗传研究奠定基础;为混养培养时增加生物量提供参考。基r 提 高植板率考虑,添加一些营养因子考察藻落生长情况,确立盐藻平板生长的最佳条件。 从盐藻对抗生素、除草剂和代谢产物类似物的敏感性着手结合紫外诱变,试图获得 些筛选标记和抗代谢物抗性突变体,为深入丌展盐藻转基因工作奠定基础。 1 2 国内外研究现状 藻类纯培养是生理生化和遗传研究的基础。获得纯培养主要有离心洗涤法f 3 。4 i 、 稀释过滤法【5 j ;抗生素法【6 1 、消毒法【7 】、毛细管显微分离法m l o 1 引、利用特性法( 趋 向运动性、耐高盐性等) 和物理法等。 目前国内外相当多的研究组在盐藻生理学【1 4 6 8 ,眦。扎2 2 2 3 2 4 2 5 2 6 2 7 2 8 2 9 3 0 1 、 耐盐机制m 3 2 n 3 4 ,3 5 3 6 3 7 3 8 ,3 9 。o ,4 2 4 3 1 和遗传转化等方面丌展了卓有成效的研究工作。生 理学研究大多集中于无机营养特别是n 、p 等方面的研究,而涉及有机营养对盐藻,l i 长影响的研究却相当少,特别是混养条件下盐藻的生理生化特性研究更是鲜见报道。 盐藻遗传方面的研究主要是筛选一些突变体4 4 ,4 5 ,4 6 删和丌展原生质体融合 【4 8 1 ,4 9 ,5 0 j u 、基因克隆旧5 3 ,5 4 ,5 5 ,5 4 5 5 ,56 5 8 5 9 6 0 ,6 1 ,6 2 1 与遗传转化1 5o 6 3 ,删,然而这些研究榭、 粗糙。获得的突变体不多,能应用于遗传研究的更少。原生质体的再生和融合予的稳 定遗传始终未能得到很好的解决。遗传转化方面虽实现外源基因的瞬时表达,但要将 其作为基因工程表达宿主,仍然有诸如提高植板率、进行有效的筛选等限制盐藻转基 因研究的问题值得去探讨。 1 3 本研究拟解决的问题 针对目前国内外研究存在的主要问题,本研究拟利用杜氏盐藻无菌藻株a 1 丌展 生理学和遗传学相关研究,探讨杜氏盐藻基本生理生化特性获得杜氏盐藻平板生长、 混养培养、转基因有效筛选、原生质体制备、突变株筛选和藻种保藏的最佳条件。 第二章材料与方法 2 1 实验材料 2 1 1 试验藻种 杜氏盐藻( d 姗f j e 砌曲z m 口q 0 2 0 7 )由中国科学院青岛海洋研究所提供,经本 室无菌纯化。 2 1 2 培养基 2 1 2 1 杜氏盐藻培养液 改良的j o l l i l s o i l s 培养基,配方如下: 大量元素( g l 。1 )m g c l 2 7 h 2 0 k n 0 3 n a h c 0 3 c a c l 2 铁盐母液 l o m l 1 mt r i s - h c l ( p h 8 o )1 0m l 铁盐母液:n a 2 e d l 冷2 h 2 0 蒸馏水 微量元素母液: h 3 8 0 3 z n c l 2 c o c l 2 6 h 2 0 蒸馏水 固体培养基加1 0 琼脂粉。1 2 1 , 2 1 2 ,2 杜氏盐藻无菌检测培养液 a蛋白胨3g b 酵母提取物 5g 蒸馏水l 0 0 0 m l cj o h n s o n s 培养液9 0 0 m l dj o | l l l s o n s 培养液9 0 0 m l e葡萄糖5g 蒸馏水1 0 0 0 m 1 1 5g o 5g 0 1 5 1g o 0 3 5g 微量元素溶液 蒸馏水 o 2 0 9 9 1 0 0 0 m l m g s 0 4 7 h 2 0 k c l k h 2 p 0 4 n a c l 1 0 m 1 9 7 0 m l f e c l 3 6 h 2 0 0 5g 0 - 2g 0 + 0 4 3g 3 0 0g o 2 4 _ 4 9 6 1 0m g ( n h 4 ) 6 m 0 7 仍4 4 h 2 03 8 om g 4 1m g c u s 0 4 5 h 2 0 6 0m g 5 1m gm n c l 2 4 h 2 0 4 1m g l o o o m l 灭菌2 0 分钟。 j o l l l l s o i i s 培养液 蛋白胨 1 0g 1 0 0 0 m l n a c l3 0g ;6 0g 土豆汁 1 0 0 m l 豆芽汁 l o om l 蛋白胨 5g k 2 h p 0 42g 3 21 3 仪器与试剂 2 1 3 1 常用仪器 p y x 一2 5 0 g a 型光照培养箱 回转振荡培养箱 7 2 2 0 型光栅分光光度计 o l y m p u sc o l l 相差显微镜 l e i c a d m l b 荧光显微镜 s c 3 2 6 型冷减柜 t g l 一18 r 台式高速冷冻离心机 l s 5 0 1 立式圆形高压蒸汽灭菌锅 电热恒温培养箱 酸度计 p b 2 0 3 n 电子天平 双筒解剖镜 血球计数板 微量移液器 三角烧瓶 2 1 3 2 主要试剂 s b j c i a 型超净工作台 t u 一18 0 0 s p c 紫外可见分光光度计 7 2 l 型光栅分光光度计 m d f u 5 4 1 0 型医用低温保存箱 j y 9 2 i i 型超声波细胞破碎仪 e m 一5 0 l s 型微波炉 普通离心机 1 0 1 型电子鼓风干燥箱 紫外辐照箱 分析天平 托盘天平 冷冻干燥机 w h 3 微型旋涡混合仪 吸管 平皿 n a c l 、k n 0 3 、m g s 0 4 、m g c l 2 、k c l 、e d t a 2 n a 、f e c l 3 6 h 2 0 、1 l i s h c i h 3 8 0 3 、( n h 4 ) 6 m 0 7 0 2 4 4 h 2 0 4 、c u s 0 4 5 h 2 0 、c o c l 2 6 h 2 0 、z n c l 2 、m n c l ! 4 h ! o 维牛素b 簇( v b l 、v b 6 、v b l 2 ) 、维生素c ( v c ) 、生物素( v h ) 萘乙酸( n a a ) 、肌醇、激动素( k t ) 、6 苄基嘌呤( 6 b a ) 葡萄糖、醋酸_ f l f l 、尿素、甘氨酸 异烟胼、刀豆氨酸、铃蓝氨酸、p ,氟苯丙氨酸6 巯基嘌呤 g e n 、a m p 、s m 、k m 、e m 、c m 、n m 、t c 、a c t 胰蛋白胨、酵母提取物 土豆汁、豆芽汁、鱼汤 链霉蛋白酶 甘油、丙酮、 22 实验方法 山梨醇h e p e s 甲醇、乙醚 2 2 1 抗生素配制方法 表2 1 不同抗生素的配制 t a b 2 1p 化d a m t i o n so f m ed i f f h 呲明t i b o t i c s 2 2 2p p t ( p p t ) 的配制方法 称取p p t ( p p t ) o 1 9 于无菌螺旋管中,加入l o m l 无菌水,充分溶解后,用o 2 2 “m 滤膜过滤。2 0 保存 2 2 3 链霉蛋白酶缓冲液和原生质体稳渗剂的配制方法 缓冲液的配制:5 m m o l l - 1h e p e sp h 7 5 稳渗剂的配制:o 5 m 0 1 l - l 山梨醇 2 2 4 链霉蛋白酶的配制方法 称取链霉蛋白酶o 2 9 于无菌螺旋管中,加入l o m l 酶反应缓冲液,充分溶解后, 用0 2 2 u m 滤膜过滤后,分装成小份,放入2 0 保存。每次使用拿一小份即可。 2 2 5 代谢产物类似物的配制方法 表2 2 不同代谢产物类似物的配制 一一! 竺:! 型! 坚! ! ! 型盥竺竺型! 坐! 唑墅 ! i ! 堕耋! 竺丝墅型塑婆 鳖鱼丝堕壁! ! :_ ! 鳖坚笙一 异烟肼 ( j 5 0 n i a z l d ) 川豆氨艘 ( j c a n a v a n i n e ) 铃蓝氨簸 【l a z e t i d i n e 一2 一c a r b o x y l i ca c i d ) p 氟苯山氨艘 ( p n u o r o p h e n y l a l a n i n e ) 6 一巯早嘌呤 【m e r c a p t o p u r i d e ) 先用少量无水 i ! ! f 精溶解, 再用j e 茸蒸馏水定容。1 0 02 2 m 滤膜过滤 溶于无菌燕馏水 0 2 2 l l m 滤膜过滤 溶卡无菌蒸馏水 o2 2 “m 滤膜过滤 先用少量光水淄精 l = f 斛, 卅用尤菌蒸馏水定容。2 o 2 2 “m 滤膜过滤 丸用少量1 m hc l 溶解, i q 用无菌蕉馏水定容。 2 0 仪存 2 0 保存 2 0 慌仔 2 0 保存 2 0 雠存 ! :! ! ! :要鎏堕基堕 226 土豆汁、豆芽汁等天然营养成分贮备液的配制方法 土豆汁的配制:新鲜成熟土豆去皮,蒸馏水洗净,切成块后,称3 5 0 9 放入不锈 钢容器内,加入4 0 0 m l 蒸馏水,加热煮沸半小时,煮沸过程中不断补充蒸馏水,使汁 液的体积始终维持4 0 0 m 1 左右,然后用8 层纱布过滤,定容至5 0 0 m 1 ,1 2 1 灭菌2 0 分钟。 豆芽汁的配制:称新鲜豆芽l o o g ,放入不锈钢容器内,加水4 0 0 m 1 ,煮沸半小时, 煮沸过程中1 i 断补充蒸馏水,使汁液的体积始终维持4 0 0 m l 左右,然后用8 层纱仉过 滤,定容至5 0 0 m l ,1 2 1 灭菌2 0 分钟。 鱼汤的配制:挑选约5 0 0 9 新鲜整鱼,蒸馏水洗净,放入不锈钢容器内,加入8 0 0 m l 蒸馏水,加热煮沸半小时,煮沸过程中不断补充蒸馏水,使汁液的体积始终维持8 0 0 m l 左右,然后然后用8 层纱布过滤,定容至1 0 0 0 m l ;1 0 0 ,3 0 分钟,间歇火菌。 2 27 盐藻的培养方法 液体培养:三角瓶装9 0 m i 的培养液,按1 0 的接种量,接种1 0 m 1 凛液,振荡 培养( 1 5 0 r p m ) :1 8 18 0 m m 试管装4 5 m l 的培养液,按1 0 的接种量,接种05 m l 藻液,振荡培养( 1 5 0 r p m ) 。每天交换位置2 次。光暗比为1 4 :l 卟,温度2 7 ,光照 2 5 0 0 3 0 0 0 l u x 。各实验均设置3 组平行。 固体平板培养:采用血球计数板计数,确定藻细胞密度,稀释涂平板。平板用 6 p a r a n l m 膜封口,置于光照培养箱中培养。前期光照适当减弱,后期光照增强。每凡 早晚各交换一次平板位置。光暗比为1 4 :1 0 h ,温度2 7 ,光照2 5 0 0 3 0 0 0 l u x 。备 实验均设置3 组平行。 2 2 8 盐藻藻细胞植板率 为证明熊藻藻细胞能否在平板上形成单藻落,以迸一步丌展生理学和遗传学相关 研究,将培养至对数期的藻液按1 0 倍系列稀释,分别取0 1 m l 均匀地涂布平板后, 在超净工作台上吹干平板表面水分,用口a r a f i l m 封口,放入光照培养箱( 2 7 , 3 0 0 0 l u x ) 培养。1 5 2 0 d 后,统计藻落数量,计算植板率。 2 2 9 盐藻吸收光谱扫描 培养杜氏赫藻至对数生长期,吸取一定量藻液,一部分直接在紫外分光光度计上 作波长( 3 9 0 n m 1 1 0 0 砌) 扫描,另一部分用9 0 丙酮:甲醇( 5 :1 ) 提取液提取后,置 于已有石油醚( 沸点6 0 9 0 ) 的分液漏斗中用力振荡后静置分层。萃取上层石油醚 色素提取液进行波长扫描。 2 2 1 0 盐藻细胞密度与光密度值( 0 d ) 的对应关系 离心收集对数期藻液,作系列稀释,于4 3 0 眦波长处测定o d 啪( 控制o d 值不 超过1 ) :用血球计数板对o d 值对应的藻液进行细胞计数硝& 据测定结果以藻液o d 4 3 0 为横坐标、藻细胞密度为纵坐标绘制细胞密度一光密度标准曲线。 2 2 1 1 盐藻的生物量测定 浊度比色法( 测定藻细胞光密度值) :用7 2 l 型或7 2 2 0 型分光光度计于夫4 3 0 n m 处测定藻培养液的0 d 值。 藻细胞计数:取藻液2 m l 予螺旋管中,5 0 热水中热休克2 37 。在相差显微镜 下,用血球计数板立即进行细胞数目的测定,并计算细胞密度。 干重法:离心收集藻体,生理盐水离心洗涤3 q 次,蒸馏水离心洗涤2 3 次,冷 冻干燥,8 5 恒重6 7 h ,称重,计算生物量。 藻落大小比较与藻落计数:在固体培养基均匀地涂靠不同密度的藻细胞,培养 段时间后,观察藻落形态特征,统计藻落数。 2 2 1 2 盐藻生长速率的测算 采用血球计数板细胞计数法。按同等条件接种3 瓶作平行实验,接种后当即用珈 球计数板和计数器在相差显微镜下测算细胞密度,以后每隔2 4 h 测算次,连续观测 3 周。细胞数目的测算,每个样品测6 次后取平均值,生长曲线按3 个平行样品的乎 均值绘制出细胞密度与培养时问的散点图,并根据生长曲线模型求出叫归方程,进 j 二 显著性检验。 足值按公式( 2 1 ) 【6 5 j 计算: 足= 3 ,3 2 2 ( 1 9 m l 烈o ) ,( t - t 0 ) ( 2 1 ) 7 式中,k 为细胞分裂率:t o 为t o 时问藻细胞生物量( 实验以光密度或藻细胞密 度汁) ;m 为t 时间藻细胞生物量;t t o t 时间间隔的天数( d ) 。 g 按公式( 2 2 ) 【6 5 1 计算: g = 1 k( 2 2 ) 式中,g 为平均世代时间:k 为细胞分裂率。 u 按公式( 2 3 ) 计算: u = ( 1 n t l n i o ) ( t t o ) ( 2 - 3 ) 式中u 藻细胞比生长速率( 一) ; 厂一t o 时间藻细胞生物量( 实验以光密度 或藻细胞密度计) :m t 时问藻细胞生物量;t t o t 时问问隔的天数( d ) 。 2 213 盐藻光台色素的测定 取一定量藻液4 0 0 0 r p m 离心5 分钟,弃去上清,用9 0 丙酮:甲醇( 5 :1 ) 提取液 多次萃取至藻体呈白色,合并萃取液,适当稀释后测定4 5 0 n m 、6 4 5 n m 、6 5 2 n m 、6 6 3 n 1 1 处的i 吸光值。 总胡萝h 素含量按下列公式( 2 4 ) 6 7 】计算: c = ( d v f l o ) 2 5 0 0( 2 4 ) 式中: c - 类胡萝h 素含量( m g ) d 藻色素提取液在4 5 0 n m 处的吸光度 v - 藻色素提取液体积 f 一稀释因子 2 5 0 0 色素平均消光系数 山( 1 ) 式中计算所得的数值除以离心时所取藻液体积( l ) ,即可得单位体积藻液 的胡萝h 素含量( m g t l 。1 ) c h l a 和c h l b 以及总c h i 的含量分别按下列公式( 2 5 ) 、( 2 6 ) 、( 2 7 ) 侧计算: c h l a = 1 2 7 d 6 6 3 2 5 9 d 6 4 5 ( 2 5 ) c h l b = 2 2 9d 6 4 5 4 ,6 7 d 6 6 3( 2 6 ) c h i a + b = d 6 5 2 1o o o 3 4 一 ( 2 7 ) 式中: d 6 4 5 藻色素提取液在6 4 5 n m 处的吸光度 d 6 5 2 - 藻色素提取液在6 5 2 n m 处的吸光度 d 6 6 3 藻色素提取液在6 6 3 n m 处的吸光度 式中:叶绿素含量的单位为m g l 。 22 1 4 杜氏盐藻的无菌纯化 22 1 41 杜氏盐藻的无菌纯化方法 方法1 :配制2 9 2 5 2 9 2 5 9 l 1n a c l 浓度的j o h n s o n s 培养液。2 5 0 m i ! j ! f _ i 瓶装入 9 0 m i 培养液,1 2 1 灭菌2 0 分钟。在2 9 2 5 9 l - l n a c i 的j o l l i l s o n s 培养液中接入含有 杂菌的藻种1 0 m l ,并放于光照培养箱中培养。当生长至对数期时,转接1 j 弱瓶较 高n a c l 浓度的新鲜藻液中培养。依次重复,直至最终将其转接于2 9 2 5 9 l 1 n a c l 的 j o h n s o n s 培养液。待藻细胞在此培养液中生长至对数期,用无菌枪头吸取1 0 l 藻液 点种于2 9 2 5 9 l “n a c l 的j o h n s o n s 培养基平板上。用p a 均面l m 膜封口, 二2 7 ,2 5 0 0 3 0 0 0 l u x 的培养箱中培养。在培养过程中需经常观察藻落生长状态和杂菌菌落生长情 况。1 4 1 6 d 后,可见平板上生长出藻落。于解剖镜下观察藻落周围是否存在杂菌菌 落,如无杂菌菌落,则于无菌条件下挑取此藻落于1 0 0 m l 新鲜培养液中振荡培养。 方法二:配制2 9 2 5 9 l 。n a c l 的j o t l l l s o n s 培养液,用2 5 0 m li 角瓶装入9 0 m l 培 养液,1 2 l 灭菌2 0 分钟。接入含有杂菌的藻种1 0 m l 后放入光照培养箱中培养。待 藻液生长至对数期,加入g e n 、a m p 和s m ,终浓度分别为:1 6 0 、2 0 0 和2 0 0 m g l _ 1 。 培养6 h 后追加上述抗生素一次,并计数,2 4 h 后继续追加抗生素,并计数,4 8 h 后低 速离心( 5 0 0 1 0 0 0 r p m ,1 0 m i n ) 洗涤藻细胞4 5 次,加入适量新鲜培养液,刚无 菌枪头吸取l o “1 藻液点种于2 9 2 5 9 l o n a c i 的j o l l i l s o n s 培养基平板上。用p a r a l = i l | n 膜封口,于2 7 ,2 5 0 0 3 0 0 0 l u x 的培养箱中培养。在培养过程中需经常观察藻落的 生长状态和杂菌菌落的生长情况。1 4 1 6 d 后,可见平板上生长出藻落。手解剖镜_ 卜 观察藻落的周围是否存在杂菌菌落,如无杂菌菌落则于无菌条件下挑取此藻落r 1 0 0 m i 新鲜培养液中振荡培养。 方法三:配制2 9 2 5 9 tl - i n a c l 的j o h n s o n s 培养液,用2 5 0 m l 三角瓶装入9 0 m l 培 养液,1 2 1 灭菌2 0 分钟。接入含有杂菌的藻种1 0 m i 后放入光照培养箱l _ _ l 培养:待 生长至对数期,于4 0 0 0 r p m ,l o m i n 离心收集藻细胞,倾去上清,加入新鲜培养液, 充分悬浮藻细胞,离心洗涤,重复8 1 0 次。将沈涤后藻细胞用适量新鲜培养液转入 无菌试管,按1 0 倍系列稀释,藻细胞终密度为1 0 4 个l l l l 。再次浓缩藻细胞后,加入 适量新鲜培养液,充分悬浮藻细胞。用无菌枪头吸取1 0 肛l 藻液点种于2 9 2 5 9 一n a c l 的j o h n s o n s 培养基平板上。用p 锄f j l m 膜封口,于2 7 ,光照2 5 0 0 3 0 0 0 h l x 的培 养箱中培养。在培养过程中需经常观察藻落生长状态和杂菌菌落牛长情况。1 4 1 6 d 后,可见平板上生长出藻落。于解剖镜下观察藻落周围是否存在杂菌菌落,如尢杂茼 菌落,则于无菌条件下挑取此此藻落于1 0 0 m l 新鲜培养液中振荡培养。 2 2 1 4 2 不同培养基纯化藻株的无菌检测 对m2 1 4 1 叶i 每。纯化方法所获得的7 个藻株进 r 编号和尤菌检测。 j j 山法 所获得的藻株编号为1 7 :出方法二所获得的藻株编号为8 1 4 :山力+ 法i 所扶得的藻 株编号为1 5 2 1 。配制培养液a 、b 、c 、d 、e ,其中培养液b 一n a c l 敬置3 0 馨一 和6 0 9 l o2 个浓度梯度。分别用2 5 0 m l | _ 三角瓶装培养液a 、b 、c 、d 、e 各9 0 m i , 编号1 2 l ,1 2 i ,灭菌2 0 分钟。按l o 接种量,分别按对应编号接入纯化后培养 至对数期的藻液1 0 m l 。各组均设置3 个平行。3 7 ,1 5 0 r p m ,振荡培养l 周。观察 并记录培养1 周后的各培养液澄清状态。重复上述操作三次。 2 2 1 5 不同n a c i 浓度对盐藻生长的影响 液体培养中n a c l 浓度梯度设置为o 、2 9 2 5 、5 8 5 、8 7 7 5 、1 1 7 、1 4 6 2 5 、1 7 5 5 、
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