标准解读

《GB/T 38505-2020 转基因产品通用检测方法》是一项国家标准,旨在为转基因产品的定性、定量检测提供技术指导。该标准适用于食品和饲料中转基因成分的检测,涵盖了从样品采集到结果报告的全过程。其主要内容包括但不限于以下几个方面:

  1. 术语与定义:明确了与转基因产品检测相关的专业术语及其含义,确保在执行过程中对相关概念有一致的理解。

  2. 基本原则:提出了进行转基因产品检测时应遵循的基本原则,强调了准确度、精确度以及可重复性的重要性。

  3. 采样方法:详细说明了如何根据不同的检测目的选择合适的采样策略,并给出了具体的采样程序和技术要求,以保证所取得样本能够代表整个批次或群体。

  4. 样品处理:介绍了样品预处理的方法,包括粉碎、均质化等步骤,目的是为了使待测物质更加均匀分布于样品之中,从而提高后续分析的准确性。

  5. DNA提取:描述了从不同类型的生物材料中高效提取高质量DNA的技术路线,这对于基于PCR等分子生物学技术的转基因成分鉴定至关重要。

  6. 检测方法:列举了几种常用的转基因成分检测手段,如实时荧光定量PCR(qPCR)、普通PCR、Southern杂交等,并针对每种方法提供了操作指南及注意事项。

  7. 数据分析:讲解了如何正确地解读实验数据,包括设置合理的阳性对照和阴性对照、计算Ct值(循环阈值)、评估扩增效率等关键环节。

  8. 结果报告:规定了检测报告的内容格式,确保信息全面而清晰,便于各方理解和使用。


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  • 现行
  • 正在执行有效
  • 2020-03-06 颁布
  • 2020-03-06 实施
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GB∕T 38505-2020 转基因产品通用检测方法_第1页
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文档简介

书 书 书犐 犆犛 犃 ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ?犌犅犜 ?犌犲 狀 犲 狉 犪 犾犱 犲 狋 犲 犮 狋 犻 狅 狀犿犲 狋 犺 狅 犱 狊狅 犳犵 犲 狀 犲 狋 犻 犮 犪 犾 犾 狔犿狅 犱 犻 犳 犻 犲 犱狆 狉 狅 犱 狌 犮 狋 狊 ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ?书 书 书前言本标准按照 给出的规则起草。本标准由全国生化检测标准化技术委员会( )提出并归口。本标准起草单位:中国检验检疫科学研究院、深圳市易瑞生物技术股份有限公司、辽宁出入境检验检疫局检验检疫技术中心、甘肃中商食品质量检验检测有限公司、广西出入境检验检疫局检验检疫技术中心、吉林省农业科学院、上海市计量测试技术研究院、甘肃省商业科技研究所有限公司。本标准主要起草人:付伟、王晨光、朱鹏宇、杜智欣、魏霜、朱海、洪霞、郑秋月、付辉、何海宁、李飞武、金虹、安小苹、朱水芳、马涛、刘刚、杨光瑞、曹际娟、袁顺捷、黄文胜。犌犅犜 转基因产品通用检测方法范围本标准规定了转基因产品的定性检测方法。本标准适用于水稻、玉米、大豆、油菜、马铃薯、甜菜、苜蓿等及其加工产品中转基因成分的实时荧光通用检测。本标准方法的最低检出限为 (质量分数) 。规范性引用文件下列文件对于本文件的应用是必不可少的。凡是注日期的引用文件,仅注日期的版本适用于本文件。凡是不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改单)适用于本文件。 分析实验室用水规格和试验方法 转基因产品检测通用要求和定义 转基因产品检测核酸提取纯化方法 转基因产品检测抽样和制样方法术语和定义下列术语和定义适用于本文件。 犛狉犚犖犃基因 犛狉犚犖犃犵 犲 狀 犲转录自 ,细胞核糖体的组分之一,作为植物内源基因。 犆犪犕犞 犛启动子 犛狆 狉 狅犿狅 狋 犲 狉犳 狉 狅犿犆犪 狌 犾 犻 犳 犾 狅狑 犲 狉犿狅 狊 犪 犻 犮狏 犻 狉 狌 狊来自花椰菜花叶病毒(犆犪 狌 犾 犻 犳 犾 狅狑犲 狉犿狅 狊 犪 犻 犮狏 犻 狉 狌 狊,)的 启动子。 犆犪犕犞 犛终止子 犛狋 犲 狉犿 犻 狀 犪 狋 狅 狉犳 狉 狅犿犆犪 狌 犾 犻 犳 犾 狅狑 犲 狉犿狅 狊 犪 犻 犮狏 犻 狉 狌 狊来自花椰菜花叶病毒(犆犪 狌 犾 犻 犳 犾 狅狑犲 狉犿狅 狊 犪 犻 犮狏 犻 狉 狌 狊,)的 终止子。 犖犗犛终止子狋 犲 狉犿 犻 狀 犪 狋 狅 狉狅 犳狀 狅 狆 犪 犾 犻 狀 犲狊 狔 狀 狋 犺 犪 狊 犲犵 犲 狀 犲来自胭脂碱合成酶基因的终止子。 犈终止子狋 犲 狉犿 犻 狀 犪 狋 狅 狉狅 犳狉 犻 犫 狌 犾 狅 狊 犲 , 犫 犻 狆 犺 狅 狊 狆 犺 犪 狋 犲犮 犪 狉 犫 狅 狓 狔 犾 犪 狊 犲狊犿犪 犾 犾狊 狌 犫 狌 狀 犻 狋来自豌豆核酮糖, 二磷酸羧化酶小亚基( , )基因的 端终止序列。 狆犪 狋基因狆 犺 狅 狊 狆 犺 犻 狀 狅 狋 犺 狉 犻 犮 犻 狀犪 犮 犲 狋 狔 犾 狋 狉 犪 狀 狊 犱 犲 狉 犪 狊 犲犵 犲 狀 犲来自绿产色链霉菌(犛 狋 狉 犲 狆 狋 狅犿犮 犲 狊狏 犻 狉 犻 犱 狅 犮 犺 狉 狅犿狅 犵 犲 狀 犲 狊) ,编码膦丝菌素乙酰转移酶( 犌犅犜 ,) 。注:狆犪 狋基因对除草剂草甘膦( )具有耐受性。 犘 犻 狀终止子狋 犲 狉犿 犻 狀 犪 狋 狅 狉狅 犳狆 狉 狅 狋 犲 犻 狀 犪 狊 犲犻 狀 犺 犻 犫 犻 狋 狅 狉来自马铃薯蛋白酶抑制剂( ,犘 犻 狀)的终止子。 犚犫 犮 犛 启动子狆 狉 狅犿狅 狋 犲 狉狅 犳狉 犻 犫 狌 犾 狅 狊 犲 , 犫 犻 狆 犺 狅 狊 狆 犺 犪 狋 犲犮 犪 狉 犫 狅 狓 狔 犾 犪 狊 犲狊犿犪 犾 犾狊 狌 犫 狌 狀 犻 狋犃来自拟南芥核酮糖 , 二磷酸羧化酶加氧酶小亚基( , ,犚犫 犮 犛 )编码基因的启动子。 犇犃犛 边界序列 犲 狀 犱犲 狏 犲 狀 狋 狊 狆 犲 犮 犻 犳 犻 犮狊 犲 狇 狌 犲 狀 犮 犲狅 犳犇犃犛 转化体外源插入片断 端与玉米基因组的连接区序列。注:该序列包括外源插入片段的部分载体序列和玉米基因组的部分序列。 犇犘 边界序列 犲 狀 犱犲 狏 犲 狀 狋 狊 狆 犲 犮 犻 犳 犻 犮狊 犲 狇 狌 犲 狀 犮 犲狅 犳犇犘 转化体外源插入片断 端与大豆基因组的连接区序列。注:该序列包括外源插入片段的部分载体序列和大豆基因组的部分序列。 犆犞 边界序列 犲 狀 犱犲 狏 犲 狀 狋 狊 狆 犲 犮 犻 犳 犻 犮狊 犲 狇 狌 犲 狀 犮 犲狅 犳犆犞 转化体外源插入片断 端与大豆基因组的连接区序列。注:该序列包括外源插入片段的部分载体序列和大豆基因组的部分序列。 犆 狋值犮 狔 犮 犾 犲狋 犺 狉 犲 狊 犺 狅 犾 犱反应管内的荧光信号达到设定的阈值时所经历的循环数。试剂与材料除另有规定外,所有试剂均为分析纯或生化试剂。试验用水符合 中一级水的规格。 实时荧光犘犆犚预混液采用经验证符合实时荧光要求的实时荧光预混液。 犿犿狅 犾犔乙二胺四乙酸二钠溶液(狆犎 )称取 乙二胺四乙酸二钠,加入 水中,并用溶液调值至 ,加水定容至 。在 ( )条件下灭菌 。 犿狅 犾犔三羟甲基氨基甲烷盐溶液(狆犎 )称取 三羟甲基氨基甲烷溶解于 水中,用盐酸调值至 ,加水定容至 。在 ( )条件下灭菌 。 犜犈缓冲液(狆犎 )分别量取 三羟甲基氨基甲烷盐溶液( )和 乙二胺四乙酸二钠溶液( ) ,加水定容至 。在 ( )条件下灭菌 。犌犅犜 引物和探针内源和外源基因或元件检测引物和探针序列见表。引物和探针用缓冲液或双蒸水稀释,稀释浓度见表。探针的 端标记荧光报告基团(如、等) , 端标记荧光淬灭基团(如、等) 。表引物和探针信息表靶标引物名称序列( )稀释终浓度( )目的片段大小 内源基因上游引物 下游引物 探针 启动子上游引物 下游引物 探针 终止子上游引物 下游引物 探针 犖犗犛终止子上游引物 下游引物 探针 狆犪 狋基因上游引物 下游引物 探针 犘 犻 狀终止子上游引物 下游引物 探针 犈终止子上游引物 下游引物 探针 犚犫 犮 犛 启动子上游引物 下游引物 探针 边界序列上游引物 下游引物 探针 犌犅犜 表(续)靶标引物名称序列( )稀释终浓度( )目的片段大小 边界序列上游引物 下游引物 探针 边界序列上游引物 下游引物 探针 对于不明确是否为转基因产品的样品,应选用上述所有内源和外源基因进行检测。对于确定物种的转基因样品,应根据表选用基因或元件进行检测。表确定物种选用基因或元件物种选用基因元件大豆及其加工产品内源基因、 启动子、犖犗犛终止子、狆犪 狋基因、犘 犻 狀终止子、犈终止子、犚犫 犮 犛 启动子、 边界序列、 边界序列玉米及其加工产品内源基因、 启动子、 终止子、犖犗犛终止子、狆犪 狋基因、犘 犻 狀终止子、 边界序列油菜及其加工产品内源基因、 启动子、 终止子、犖犗犛终止子、犈终止子、犘 犻 狀终止子水稻及其加工产品内源基因、 启动子、 终止子、犖犗犛终止子马铃薯及其加工产品内源基因、犖犗犛终止子、犚犫 犮 犛 启动子苜蓿及其加工产品内源基因、犖犗犛终止子、犈终止子甜菜及其加工产品内源基因、犈终止子仪器与设备 分析天平:感量 。 生物安全柜。 实时荧光仪。 纯水仪。 涡旋振荡仪。 微量移液器。操作步骤 抽样按照 和 的规定执行。犌犅犜 制样按照 和 的规定执行。 试样预处理按照 和 的规定执行。 犇犖犃模板制备按照 和 的规定执行。或可采用具有相同效果的植物基因组提取试剂盒进行模板制备。 犇犖犃浓度测定采用紫外分光光度法测定浓度,将溶液做适当的稀释,于 处测定其吸光度,根据测定的值计算浓度( 处 双链) ,值应该在 的范围内。于 处测定其吸光度,根据测定的值计算溶液的 比值,比值应在 。 实时荧光犘犆犚检测 阴性对照、阳性对照和空白对照的设置以非转基因样品为阴性对照,以对应的转基因植物样品品系或含有相应外源基因的转基因植物样品基因组,或含有上述片段的质粒标准分子为阳性对照,以水或缓冲液为空白对照。 实时荧光犘犆犚反应体系反应体系见表或按照经验证符合要求的试剂盒推荐体系进行配制。每个样品做个平行管。加样时应使样品溶液完全加入反应液中,不要黏附于管壁上,加样后应尽快盖紧管盖。表实时荧光犘犆犚反应体系试剂名称终浓度加样体积实时荧光预混液 上游引物( ) 下游引物( ) 探针( ) 模板( ) 补水至 反应体系中各试剂的量可根据反应体系的总体积进行适当调整。 仪器设置设置反应管荧光信号收集条件,应与探针标记的报告基团一致。具体设置方法可参照仪器使用说明书。犌犅犜 犘犆犚反应参数实时荧光扩增反应参数: ; ; , ,大于或等于 个循环。注: 专门适用于化学变构的热启动犜犪 狇酶。以上参数可根据不同型号实时荧光仪和所选扩增试剂体系不同做调整。 犘犆犚反应运行将反应管依次摆放至实时荧光仪上(上机前注意检查各反应管是否盖紧,以免荧光物质泄漏污染仪器) ,开始运行仪器进行实时荧光反应。结果分析 阈值设定实时荧光反应结束后,设置荧光信号阈值,阈值设定原则根据仪器噪声情况进行调整,以阈值线刚好超过正常阴性样品扩增曲线的最高点为准。 质量控制空白对照:内参基因检测未出现典型扩增曲线,所有外源基因检测未出现典型扩增曲线,或 值大于或等于 。阴性对照:内参基因检测出现典型扩增曲线,且 值小于或等于 ,所有外源基因检测未出现典型扩增曲线,或 值大于或等于 。阳性对照:内参基因检测出现典型扩增曲线,且 值小于或等于 ,所有外源基因检测出现典型扩增曲线,且 值小于或等于 。结果判定与表述 结果判定测试样品全部平行反应外源基因检测未出现典型扩增曲线,或 值大于或等于 ;内源基因检测出现典型扩增曲线,且 值小于或等于 ,则可判定该样品不含所检的外源基因。测试样品全部平行反应外源基因检测出现典型扩增曲线, 值小于或等于 ,内源基因检测出现典型扩增曲线, 值小于或等于 ,判定该样品含有对应的外源基因。测试样品全部平行反应外源基因检测出现典型扩增曲线,但 值在 之间,内源基因检测 值出现典型扩增曲线,且小于或等于 ,应在排除污染的情况下重新处理样品上机检测。再次扩增后的内源基因检测出现典型扩增曲线,且 值小于或等于 ,外源基因检测出现典型扩增曲线,且 值仍小于 ,则可判定为该样品含有所检的外源基因。再次扩增后的内源基因检测出现典型扩增曲线,且 值小于或等于 ,外源基因检测未出现典型扩增曲线,或 值大于或等于 ,则可判定为该样品不含所检的外源基因。 结果表述如下所示:样品未检出外源基因。犌犅犜 样品检出外源基因。存查样品保存期限存查样品保

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