家兔失血性休克及抢救.ppt

家兔失血性休克及其急救、病理生理学实验教学中心杜舒婷、序言，本实验旨在通过高年级各专业本科生病理生理学的实验教学内容，掌握失血性休克动物模型的复制方法。 观察失血性休克时身体的一般状态和呼吸、血压、心率、中心静脉压、尿量的变化，了解失血性休克的病理生理过程。 了解失血性休克的急救原则和急救方法。 失血性休克是临床常见急症，通过该实验使失血性休克临床表现具有初步感性认识，使学生掌握复制兔失血性休克动物模型的实验技能和相关知识。 通过实验加强本科学生手腕能力的培养，为今后的临床实践奠定坚实的基础。 实验目的1 .掌握失血性休克动物模型的复制方法。 2 .观察失血性休克时身体的一般状态和呼吸、血压、心率、中心静脉压、尿量的变化，了解失血性休克的病理生理过程。 3 .了解失血性休克的急救原则和急救方法。 的双曲馀弦值。 实验原理失血性休克是临床常见急症，血容量减少，机体有效循环血量降低，机体重要器官血液灌流减少，微血管持续收缩和痉挛加重器官缺血，进一步损害器官功能。 本实验采用颈总动脉出血法，减少活体有效循环血量，复制失血性休克。 通过实验进一步了解失血性休克时心、肺、肾等器官功能障碍，加深对失血性休克的认识。 微循环障碍是失血性休克的基础，治疗的主要措施是改善微循环灌注，实验采用输血和进口生理盐水的方法改善微循环灌注状态，应急处理失血性休克。 实验动物、仪器和药品、常规手术器械、气管插管、动脉管、动脉管夹、婴儿秤、兔子固定台、5ml、20ml、50ml注射器、输液装置、水检压计、二道生理记录仪、导管、压力传感器、压力测定装置、滤纸、烧杯、丝、粗棉线。 20%尿烷，1%肝素，3.8%柠檬酸钠，生理盐水。 方法和程序，1 .称量兔子后，从耳缘静脉注射20%尿烷(5ml/kg.bw )进行全身麻醉，将兔子仰卧位固定在兔台上。 2 .将颈兔毛剪下，沿甲状软骨下缘中间纵切6cm，用止血钳将气管、左侧颈总动脉和右侧颈总动脉钝性分离，在气管上做反“t”字切开，插入气管插管，用粗棉线结扎固定，连接转换器和记录仪，描绘呼吸曲线。 3 .从边缘静脉输入肝素1ml/kg.bw抗凝固后，用线扎结颈总动脉离心端，用动脉夹住近心端，插入充满柠檬酸钠的动脉管并扎结固定，管的一端与压力转换器连接，用记录仪记录血压，另一端准备放血用。 4 .在输液装置中加入200ml生理盐水，排出输液管线和水压计内的气泡，结扎颈浅静脉离心端，插入与输液装置和水压计相连的静脉插管，检查顺利后，以1015滴/分的速度缓慢输入生理盐水，确保管线顺畅。 5 .耻骨联合制作腹部正中切开长约5cm，找到膀胱，拔尿后将膀胱从腹腔拉出，在背面膀胱三角区找到尿管入口，分离两侧尿管，插入细尿管，每分钟记录尿滴数。 6 .打开二道生理记录仪，用压力测定装置测定血压，稳定5分钟后，观察放血前动物的一般状态和血压、呼吸、中心静脉压、尿量的变化。 7 .打开颈总动脉管的出血端，连接50ml注射器，从颈总动脉向注射器内流入血液，直至血压达到40mmHg时，调节注射器内的出血量，使血压稳定在此水平(图7-4-1 )，图7-4-1兔出血性休克的示意图，8 .血压维持40mmHg20分钟9 .停止放血，丢弃输液瓶中残留的生理盐水，将注射器内的血液注入输液瓶，迅速输入静脉再生的血液和生理盐水，进行急救，输血总量为3倍，速度为80-100滴/min。 10 .输血和生理盐水后，观察动物一般状态及各生理指标，评价急救效果。 11 .实验中实验组较多，输液治疗组分为与出血量同量的生理盐水出血全血去甲肾上腺素(0.75mg/kg.bw )、2倍出血量生理盐水出血全血654-2(1mg/kg.bw )。 注意事项1 .本实验多为手术，应减少手术性出血。 对于一些项目(输尿管插管等)，是否少做手术，以确保实验成功。 2 .注意各导管和注射器肝素化，导管顺畅，随时慢慢注射，防止凝血。 3 .插入动脉插管前，必须在动物体内注射肝素。 否则，插管内会发生凝固，影响实验。 4 .插入静脉时要小心，防止突破静脉壁进入胸腔和其他软组织。 5 .进行输尿管插管时，插入输尿管后应避免扭曲和折叠，在正常情况下，插入输尿管可能会导致尿滴落，导管流畅，但如果不出尿，则可以进行少量的快速输液。 复习讨论问题，1 .为什么抢救失血性休克时