紫薯小饼干的实验报告

1、 紫薯小饼干质量检验 实验报告 姓名： 学院：食品科学与工程 专业：食品质量与安全 学号： 实验时间： 目 录1、 试验基本要求二、凯氏定氮法测蛋白质含量 （GB5009.52010） 三 、脂肪的测定 （GB5413.32010）四 、氯化钠的测定 （摘自美国出版的食品分析）5、 直接干燥法测水分含量 （GB5009.32010）6、 不溶性膳食纤维的测定 （GB5413.62010）7、 食品微生物学检验 菌落总数测定 （GB4789.2-2010)8. 食品微生物学检验 大肠菌群计数 （G4789.32010 ）9. 实验结果汇总10. 实验总结一、实验基本要求 1.1 原料要求所使用的

2、原料应符合相应的安全标准和/或相关规定。应保证婴幼儿的安全，满足营养需要，不应使用危害婴幼儿营养与健康的物质。不应使用氢化油脂。不应使用经辐照处理过的原料。1.2感官要求：应符合表 1 的规定。表 1 感官要求项 目要 求色泽符合相应产品的特性。滋味、气味符合相应产品的特性。组织状态符合相应产品的特性，不应有正常视力可见的外来异物。冲调性符合相应产品的特性。1.3基本的营养成分指标：产品中基本的营养成分指标应符合表2的规定。表2 检测指标项 目婴幼儿饼干或其他婴幼儿谷物辅助食品检验方法能量b/(kJ(kcal)/100g) 1250(299)/蛋白质/(g/100 kJ(kcal)0.331.

3、30(1.45.4)GB 5009.5脂肪/(g/100 kJ(kcal) 0.8(3.3)GB 5413.3氯化钠/(mg/100 kJ(kcal) 61.0(250.9)/水分/(%) 6.0GB 5009.3不溶性膳食纤维/(%) 5.0GB 5413.6b能量的计算按每100g产品中蛋白质、脂肪、碳水化合物的含量，分别乘以能量系数17 kJ/g、37 kJ/g、17 kJ/g(膳食纤维的能量系数，按照碳水化合物能量系数的50%计算)，所得之和为千焦/100克(kJ/100g)值，再除以4.184为千卡/100克(kcal/100g)值。其中，碳水化合物的含量A1，按式(1)计算：A1=

4、100-(A2+A3+A4+A5+A6)(1) 式中：A1碳水化合物的含量，g/100g；A2蛋白质的含量，g/100g；A3脂肪的含量，g/100g；A4水分的含量，g/100g；A5灰分的含量，g/100g；A6膳食纤维的含量，g/100g。1.4 微生物限量：应符合表3 的规定。表 3 微生物限量项目采样方案a及限量(若非指定，均以CFU/g或CFU/mL表示)检验方法nCmM菌落总数b52100010000GB 4789.2大肠菌群5210100GB 4789.3平板计数法a 样品的分析及处理按 GB 4789.1执行。 b 不适用于婴幼儿生制类谷物辅助食品和添加活性菌种(好氧和兼性厌

5、氧益生菌)的产品产品中活性益生菌的活菌数应106CFU/g (mL)。二、凯氏定氮法测蛋白质含量 （GB5009.52010） 2.1 规范性引用性文件 本标准中引用的文件对于本标准的应用是必不可少的。凡是注日期的引用文件，仅所注日期的版本适用于本标准。凡是不注日期的引用文件，其最新版本（包括所有的修改单）适用于本标准。2.2 原理 食品中的蛋白质在催化加热条件下被分解，产生的氨与硫酸结合生成硫酸铵。碱化蒸馏使氨游离，用硼酸吸收后以硫酸或盐酸标准滴定溶液滴定，根据酸的消耗量乘以换算系数，即为蛋白质的含量。 2.3 试剂和材料 除非另有规定，本方法中所用试剂均为分析纯，水为GB/T 6682规定

6、的三级水。 2.3.1 硫酸铜（CuSO4·5H2O）。2.3.2 硫酸钾（K2SO4）。2.3.3 硫酸（H2SO4密度为1.84g/L）。2.3.4硼酸（H3BO3）。2.3.5甲基红指示剂（C15H15N3O2）。2.3.6 溴甲酚绿指示剂（C21H14Br4O5S）。2.3.7 亚甲基蓝指示剂（C16H18ClN3S·3H2O）。2.3.8 氢氧化钠（NaOH）。2.3.9 95%乙醇（C2H5OH）。2.3.10 硼酸溶液（20 g/L）：称取20 g硼酸，加水溶解后并稀释至1000 mL。 2.3.11 氢氧化钠溶液（400 g/L）：称取40 g氢氧化钠加水溶

7、解后，放冷，并稀释至100 mL。2.3.12 硫酸标准滴定溶液（0.0500 mol/L）或盐酸标准滴定溶液（0.0500 mol/L）。2.3.13 甲基红乙醇溶液（1 g/L）：称取0.1g甲基红，溶于95%乙醇，用95%乙醇稀释至100 mL。2.3.14 亚甲基蓝乙醇溶液（1 g/L）：称取0.1g亚甲基蓝，溶于95%乙醇，用95%乙醇稀释至100 mL。2.3.15 溴甲酚绿乙醇溶液（1 g/L）：称取0.1g溴甲酚绿，溶于95%乙醇，用95%乙醇稀释至100 mL。2.3.16 混合指示液：2份甲基红乙醇溶液（2.3.13）与1份亚甲基蓝乙醇溶液（2.3.14）临用时混合。也可用

8、1份甲基红乙醇溶液（2.3.13）与5份溴甲酚绿乙醇溶液（2.3.15）临用时混合。2.4 仪器和设备 2.4.1 天平：感量为1mg。2.4.2 定氮蒸馏装置2.5 分析步骤 2.5.1 试样处理：称取充分混匀的固体试样0.2 g2 g、半固体试样 2 g5 g或液体试样10 g25 g（约相当于30 mg40 mg氮），精确至0.001 g，移入干燥的100 mL、250 mL或500 mL定氮瓶中，加入0.2 g硫酸铜（2.3.1）、6 g硫酸钾（2.3.2）及20 mL硫酸（2.3.3），轻摇后于瓶口放一小漏斗，将瓶以45°角斜支于有小孔的石棉网上。小心加热，待内容物全部炭化

9、，泡沫完全停止后，加强火力，并保持瓶内液体微沸，至液体呈蓝绿色并澄清透明后，再继续加热0.5 h1 h。取下放冷，小心加入20 mL水。放冷后，移入100 mL容量瓶中，并用少量水洗定氮瓶，洗液并入容量瓶中，再加水至刻度，混匀备用。2.5.2 测定：装好定氮蒸馏装置，向水蒸气发生器内装水至2/3处，加入数粒玻璃珠，加甲基红乙醇溶液（2.3.13）数滴及数毫升硫酸（2.3.3），以保持水呈酸性，加热煮沸水蒸气发生器内的水并保持沸腾。 2.5.3 向接收瓶内加入 10.0 mL 硼酸溶液(2.3.10)及 1 滴2 滴 A 混合指示液2 份甲基红乙醇溶液（2.3.13）与 1 份亚甲基蓝乙醇溶液（

10、2.3.14） 或 B 混合指示液1 份甲基红乙醇溶液（2.3.13）与 5 份溴甲酚绿乙醇溶液（2.3.15），并使冷凝管的下端插入液面下，根据试样中氮含量，准确吸取 2.0 mL10.0 mL 试样处理液由小玻杯注入反应室，以 10 mL 水洗涤小玻杯并使之流入反应室内，随后塞紧棒状玻塞。将 10.0 mL 氢氧化钠溶液(2.3.11)倒入小玻杯，提起玻塞使其缓缓流入反应室，立即将玻塞盖紧，并水封。夹紧螺旋夹，开始蒸馏。蒸馏 10 min 后移动蒸馏液接收瓶，液面离开冷凝管下端，再蒸馏 1 min。然后用少量水冲洗冷凝管下端外部，取下蒸馏液接收瓶。尽快以硫酸或盐酸标准滴定溶液(2.3.12

11、)滴定至终点，如用 A 混合指示液，终点颜色为灰蓝色；如用 B 混合指示液，终点颜色为浅灰红色。同时作试剂空白。2.5.3采用（GB 5009.5-2010）第 1 号修改单1电炉；2水蒸气发生器（2 L烧瓶）；3螺旋夹；4小玻杯及棒状玻塞；5反应室；6反应室外层；7橡皮管及螺旋夹；8冷凝管；9蒸馏液接收瓶。 2.5.4 分析结果的表述 试样中蛋白质的含量按式（1）进行计算。 式中： X试样中蛋白质的含量，单位为克每百克（g/100 g）； V1试液消耗硫酸或盐酸标准滴定液的体积，单位为毫升（mL）； V2试剂空白消耗硫酸或盐酸标准滴定液的体积，单位为毫升（mL）； V3吸取消化液的体积，单位

12、为毫升（mL）； c硫酸或盐酸标准滴定溶液浓度，单位为摩尔每升（mol/L）； 0.01401.0 mL硫酸c (1/2H2SO4)1.000 mol/L或盐酸c (HCl) 1.000 mol/L标准滴定溶液相当的氮的质量，单位为克（g）； m试样的质量，单位为克（g）； F氮换算为蛋白质的系数。一般食物为6.25；纯乳与纯乳制品为6.38；面粉为5.70；玉米、高粱为6.24；花生为5.46；大米为5.95；大豆及其粗加工制品为5.71；大豆蛋白制品为6.25；肉与肉制品为6.25；大麦、小米、燕麦、裸麦为5.83；芝麻、向日葵为5.30；复合配方食品为6.25。 以重复性条件下获得的两次

13、独立测定结果的算术平均值表示，蛋白质含量1 g/100 g时，结果保留三位有效数字；蛋白质含量1 g/100 g时，结果保留两位有效数字。 2.5.5 精密度 在重复性条件下获得的两次独立测定结果的绝对差值不得超过算术平均值的10% 。三 、脂肪的测定 （GB5413.32010）3.1原理用乙醚和石油醚抽提样品的碱水解液，通过蒸馏或蒸发去除溶剂，测定溶于溶剂中的抽提物的质量。3.2试剂和材料除非另有规定，本方法所用试剂均为分析纯，水为GB/T 6682规定的三级水。3.2.1 淀粉酶：酶活力1.5 U/mg。 3.2.2 氨水（NH4OH）：质量分数约25%。注：可使用比此浓度更高的氨水。3

14、.2.3 乙醇（C2H5OH）：体积分数至少为95%。3.2.4 乙醚（C4H10O）：不含过氧化物，不含抗氧化剂，并满足试验的要求。3.2.5 石油醚（CnH2n+2）：沸程30 60 。3.2.6 混合溶剂：等体积混合乙醚（3.2.4）和石油醚（3.2.5），使用前制备。3.2.7 碘溶液（I2）：约0.1 mol/L。3.2.8 刚果红溶液（C32H22N6Na2O6S2）：将1 g刚果红溶于水中，稀释至100 mL。注：可选择性地使用。刚果红溶液可使溶剂和水相界面清晰，也可使用其他能使水相染色而不影响测定结果的溶液。3.2.9 盐酸（6 mol/L）：量取50 mL盐酸（12 mol/

15、L）缓慢倒入40 mL水中，定容至100 mL，混匀。3.3 仪器和设备3.3.1 分析天平：感量为0.1 mg。3.3.2 离心机：可用于放置抽脂瓶或管，转速为500转/分钟600转/分钟，可在抽脂瓶外端产生80 g90 g的重力场。3.3.3 烘箱。3.3.4 水浴。 3.3.5 抽脂瓶：抽脂瓶应带有软木塞或其他不影响溶剂使用的瓶塞（如硅胶或聚四氟乙烯）。软木塞应先浸于乙醚中，后放入60 或60 以上的水中保持至少15 min，冷却后使用。不用时需浸泡在水中，浸泡用水每天更换一次。注：也可使用带虹吸管或洗瓶的抽脂管（或烧瓶），但操作步骤有所不同，见附录A中规定。接头的内部长支管下端可成勺状

16、。3.4 分析步骤3.4.1 用于脂肪收集的容器（脂肪收集瓶）的准备 于干燥的脂肪收集瓶中加入几粒沸石，放入烘箱中干燥1 h。使脂肪收集瓶冷却至室温，称量，精确至0.1 mg。注：脂肪收集瓶可根据实际需要自行选择。3.4.2 空白试验 空白试验与样品检验同时进行，使用相同步骤和相同试剂，但用10 mL水代替试样。3.5 测定（干酪类）3.5.1称取约2 g研碎的试样（精确至0.0001 g）于抽脂瓶中，加10 mL盐酸（4.9），混匀，加塞，于沸水中加热20 min30 min。3.5.2 加入10 mL乙醇（4.3），缓和但彻底地进行混合，避免液体太接近瓶颈。如果需要，可加入两滴刚果红溶液（

17、4.8）。3.5.3 加入25 mL乙醚（4.4），塞上瓶塞，将抽脂瓶保持在水平位置，小球的延伸部分朝上夹到摇混器上，按约100次/min振荡1 min，也可采用手动振摇方式。但均应注意避免形成持久乳化液。抽脂瓶冷却后小心地打开塞子，用少量的混合溶剂冲洗塞子和瓶颈，使冲洗液流入抽脂瓶。3.5.4 加入25 mL石油醚（4.5），塞上重新润湿的塞子，按6.3.1.3所述，轻轻振荡30 s。3.5.5 将加塞的抽脂瓶放入离心机中，在500转/分钟600转/分钟下离心5 min。否则将抽脂瓶静止至少30 min，直到上层液澄清，并明显与水相分离。3.5.6 小心地打开瓶塞，用少量的混合溶剂（4.6）

18、冲洗塞子和瓶颈内壁，使冲洗液流入抽脂瓶。如果两相界面低于小球与瓶身相接处，则沿瓶壁边缘慢慢地加入水，使液面高于小球和瓶身相接处（见图1），以便于倾倒。3.5.7 将上层液尽可能地倒入已准备好的加入沸石的脂肪收集瓶中，避免倒出水层（见图2）。 3.5.8 用少量混合溶剂冲洗瓶颈外部，冲洗液收集在脂肪收集瓶中。要防止溶剂溅到抽脂瓶的外面。3.5.9 向抽脂瓶中加入5 mL乙醇，用乙醇冲洗瓶颈内壁，按3.5.2所述进行混合。重复3.5.33.5.8操作，再进行第二次抽提，但只用15 mL乙醚和15 mL石油醚。3.5.10 重复3.5.23.5.8操作，再进行第三次抽提，但只用15 mL乙醚和15

19、mL石油醚。注：如果产品中脂肪的质量分数低于5 %，可只进行两次抽提。3.5.11 合并所有提取液，既可采用蒸馏的方法除去脂肪收集瓶中的溶剂，也可于沸水浴上蒸发至干来除掉溶剂。蒸馏前用少量混合溶剂冲洗瓶颈内部。3.5.12 将脂肪收集瓶放入102 ±2 的烘箱中加热1 h，取出脂肪收集瓶，冷却至室温，称量，精确至0.1 mg。3.5.13 重复6.3.1.12操作，直到脂肪收集瓶两次连续称量差值不超过0.5 mg，记录脂肪收集瓶和抽提物的最低质量。3.5.14 为验证抽提物是否全部溶解，向脂肪收集瓶中加入25 mL石油醚，微热，振摇，直到脂肪全部溶解。如果抽提物全部溶于石油醚中，则含

20、抽提物的脂肪收集瓶的最终质量和最初质量之差，即为脂肪含量。3.5.15 若抽提物未全部溶于石油醚中，或怀疑抽提物是否全部为脂肪，则用热的石油醚洗提。小心地倒出石油醚，不要倒出任何不溶物，重复此操作3次以上，再用石油醚冲洗脂肪收集瓶口的内部。最后，用混合溶剂冲洗脂肪收集瓶口的外部，避免溶液溅到瓶的外壁。将脂肪收集瓶放入102 ±2 的烘箱中，加热1 h，按3.5.12和3.5.13所述操作。3.5.16 取3.5.13中测得的质量和3.5.15测得的质量之差作为脂肪的质量。注：选择带有虹吸管或洗瓶附件的抽脂管时，步骤如标准原文附录A（标准的附录）所述。3.6 分析结果表述样品中脂肪含量

21、按式（1）计算：式中：X样品中脂肪含量，单位为克每百克（g/100g）；m样品的质量，单位为克（g）；m16.3.1.13中测得的脂肪收集瓶和抽提物的质量，单位为克（g）；m2脂肪收集瓶的质量，或在有不溶物存在下，6.3.1.15中测得的脂肪收集瓶和不溶物的质量，单位为克（g）；m3空白试验中，脂肪收集瓶和6.3.1.13中测得的抽提物的质量，单位为克（g）；m4空白试验中脂肪收集瓶的质量，或在有不溶物存在时，6.3.1.15中测得的脂肪收集瓶和不溶物的质量，单位为克（g）。以重复性条件下获得的两次独立测定结果的算术平均值表示，结果保留三位有效数字。 故脂肪含量符合要求3.7 精密度在重复性条

22、件下获得的两次独立测定结果之差应符合：脂肪含量15%，0.3g/100g；脂肪含量515%，0.2g/100g；脂肪含量5%，0.1g/100g。3.8 其他实验过程注意事项：3.8.1 空白试验检验试剂 要进行空白试验，以消除环境及温度对检验结果的影响。进行空白试验时在脂肪收集瓶中放入1 g新鲜的无水奶油。必要时，于每100 mL溶剂中加入1 g无水奶油后重新蒸馏，重新蒸馏后必须尽快使用。 3.8.2 空白试验与样品测定同时进行 对于存在非挥发性物质的试剂可用与样品测定同时进行的空白试验值进行校正。抽脂瓶与天平室之间的温差可对抽提物的质量产生影响。在理想的条件下（试剂空白值低，天平室温度相同

23、，脂肪收集瓶充分冷却），该值通常小于0.5 mg。在常规测定中，可忽略不计。如果全部试剂空白残余物大于0.5 mg，则分别蒸馏100 mL乙醚和石油醚，测定溶剂残余物的含量。用空的控制瓶测得的量和每种溶剂的残余物的含量都不应超过0.5 mg。 否则应更换不合格的试剂或对试剂进行提纯。3.8.3 乙醚中过氧化物的检验 取一只玻璃小量筒，用乙醚冲洗，然后加入10 mL乙醚，再加入1 mL新制备的100 g/L的碘化钾溶剂，振荡，静置1 min，两相中均不得有黄色。也可使用其他适当的方法检验过氧化物。在不加抗氧化剂的情况下，为长久保证乙醚中无过氧化物，使用前三天按下法处理：将锌箔削成长条，长度至少为

24、乙醚瓶的一半，每升乙醚用80 cm2锌箔。使用前，将锌片完全浸入每升中含有10 g五水硫酸铜和2 mL质量分数为98 %的硫酸中1 min，用水轻轻彻底地冲洗锌片，将湿的镀铜锌片放入乙醚瓶中即可。也可以使用其他方法，但不得影响检测结果。四 、氯化钠的测定 （摘自美国出版的食品分析）4.1 原理测定植物样品中氯含量的Volhard滴定法（AOAC法见905.1） 在Volhard滴定法中，为防止碳酸盐的干扰，必须使用煮沸的去离子水以减少误差，因为碳酸银的的溶解度大于氯化银。如果要测定食品中的食盐含量，可以先通过滴定法测定氯，氯的质量乘以1.648就得到氯化钠的质量。4.2 试剂与材料4.2.1去

25、离子水4.2.2 碳酸钠溶液（NaCO3） ,质量分数5% 。4.2.3硝酸银溶液（AgNO3）,浓度 5mol/L 。4.2.4硝酸银标准液（AgNO3）,浓度0.1mol/L,需标定。4.2.5饱和Fe(NH4)(SO4)2.12H2O溶液。4.2.6硝酸（HNO3），浓度 9mol/L。4.2.7结晶氯化钾（KCl）。4.2.8重铬酸钾（K2Cr2O7），质量分数5% 。4.2.9硫氰酸钾（KCNS），浓度 0.1mol/L 。4.3 仪器和设备4.3.1 天平（感量0.0001g）4.3.2电炉4.2.3坩埚4.3.4锥形瓶4.3.5移液管（1ml;2ml;5ml;10ml）4.3.6

26、量筒 （100ml）4.3.7酸式滴定管4.3.8马弗炉4.4 操作步骤4.4.1 Volhard滴定法称取5g样品置于坩埚中，用去离子水湿润，加20ml 5%碳酸钠溶液蒸发止干在通分橱中碳化，直至停止发烟在500条件下灼烧24h加10ml 5mol/L的HNO3溶解残留物加去离子水稀释至25ml用标准AgNO3滴定至不再有白色氯化银沉淀产生，并且稍过量充分搅拌，滤纸过滤，并充分洗涤AgCl沉淀于上述滤液和洗涤液中加5ml饱和Fe(NH4)(SO4)2.12H2O溶液加入3ml 12mol/L HNO3溶液，并用0.1mol/LKSCN滴定过量的银4.4.2 0.1mol/L AgNO3标准溶

27、液的标定准确称取300mg结晶氯化钾于250ml Erlenmeyer瓶中，用40ml去离子水溶解加入1ml 5%重铬酸钾溶液，并用0.1mol/L硝酸银标准溶液滴定至橘红色滴定体积减去滴定75ml 水溶液（含1ml 5%重铬酸钾）所用硝酸银的体积根据下列公式计算可得硝酸银的浓度：4.4.3 硫氰酸钾溶液的标定准确移取4050ml标准AgNO3溶液，加入2ml饱和Fe(NH4)(SO4)2.12H2O指示剂和5ml 9mol/L 的HNO3，来标定0.1mol/L的KSCN标准溶液用硫氰酸盐溶液滴定到溶液变成稳定的淡红色为止（须振荡）4.4.4 氯浓度的计算AgNO3的净体积=加入AgNO3的

28、总体积-KSCN滴定的体积1ml 0.1mol/L AgNO3=3.506mgCl- 五、直接干燥法测水分含量 （GB5009.32010） 5.1 原理 利用食品中水分的物理性质，在101.3 kPa（一个大气压），温度101 105 下采用挥发方法测定样品中干燥减失的重量，包括吸湿水、部分结晶水和该条件下能挥发的物质，再通过干燥前后的称量数值计算出水分的含量。 5.2 试剂和材料 除非另有规定，本方法中所用试剂均为分析纯。 5.2.1 盐酸：优级纯。5.2.2 氢氧化钠（NaOH）：优级纯。5.2.3 盐酸溶液（6 mol/L）：量取50 mL盐酸，加水稀释至100 mL。5.2.4 氢氧

29、化钠溶液（6mol/L）：称取24 g氢氧化钠，加水溶解并稀释至100 mL。5.2.5 海砂：取用水洗去泥土的海砂或河砂，先用盐酸（3.3）煮沸0.5 h，用水洗至中性，再用氢氧化钠溶液（3.4）煮沸0.5 h，用水洗至中性，经105 干燥备用。5.3 仪器和设备 5.3.1 扁形铝制或玻璃制称量瓶。5.3.2 电热恒温干燥箱。 5.3.3 干燥器：内附有效干燥剂。5.3.4 天平：感量为0.1 mg。5.4 分析步骤 5.4.1 固体试样：取洁净铝制或玻璃制的扁形称量瓶，置于101 105 干燥箱中，瓶盖斜支于瓶边，加热1.0 h，取出盖好，置干燥器内冷却0.5 h，称量，并重复干燥至前后

30、两次质量差不超过2 mg，即为恒重。将混合均匀的试样迅速磨细至颗粒小于2 mm，不易研磨的样品应尽可能切碎，称取2 g10 g试样（精确至0.0001 g），放入此称量瓶中，试样厚度不超过5 mm，如为疏松试样，厚度不超过10 mm，加盖，精密称量后，置于101 105 干燥箱中，瓶盖斜支于瓶边，干燥2 h4 h后，盖好取出，放入干燥器内冷却0.5 h后称量。然后再放入101 105 干燥箱中干燥1 h左右，取出，放入干燥器内冷却0.5 h后再称量。并重复以上操作至前后两次质量差不超过2 mg，即为恒重。注：两次恒重值在最后计算中，取最后一次的称量值。5.4.2 半固体或液体试样：取洁净的称量

31、瓶，内加10 g海砂及一根小玻棒，置于101 105 干燥箱中，干燥1.0 h后取出，放入干燥器内冷却0.5 h后称量，并重复干燥至恒重。然后称取5 g10 g试样（精确至0.0001 g），置于蒸发皿中，用小玻棒搅匀放在沸水浴上蒸干，并随时搅拌，擦去皿底的水滴，置101 105 干燥箱中干燥4 h后盖好取出，放入干燥器内冷却0.5 h后称量。以下按5.4.1自“然后再放入101 105 干燥箱中干燥1 h左右”起依法操作。5.5 分析结果的表述 试样中的水分的含量按式（1）进行计算。式中：X 试样中水分的含量，单位为克每百克（g/100g)；m1 称量瓶(加海砂、玻棒)和试样的质量，单位为克

32、（g）；m2 称量瓶(加海砂、玻棒)和试样干燥后的质量，单位为克（g）；m3 称量瓶(加海砂、玻棒)的质量，单位为克（g）。水分含量1 g/100 g时，计算结果保留三位有效数字；水分含量1 g/100 g时，结果保留两位有效数字。5.6 精密度 在重复性条件下获得的两次独立测定结果的绝对差值不得超过算术平均值的5 %。实验结果 质量样品m1m2m3125.518324.902115.5366224.685724.184516.6309325.842825.212515.7721由公式 可得样品1水分含量X=(25.5183-24.9021)/(25.5183-15.5366)=6.1733%

33、以此类推X16.17%X26.22%X36.26%紫薯饼干的水分含量X=(X1+X2+X3）/3=6.22%六、不溶性膳食纤维的测定 （GB5413.62010）6.1 原理使用中性洗涤剂将试样中的糖、淀粉、蛋白质、果胶等物质溶解除去，不能溶解的残渣为不溶性膳食纤维，主要包括纤维素、半纤维素、木质素、角质和二氧化硅等，并包括不溶性灰分。6.2试剂和材料 无水亚硫酸钠、石油醚：沸程30 60 、丙酮、甲苯、EDTA 二钠盐、四硼酸钠（含10个结晶水）、月桂基硫酸钠、乙二醇独乙醚、无水磷酸氢二钠、 磷酸、 磷酸二氢钠、 -淀粉酶。6.2.13 中性洗涤剂溶液：将18.61 g EDTA 二钠盐和6

34、.81 g四硼酸钠（含10个结晶水）置于烧杯中，加水约100 mL，加热使之溶解，将30.00 g月桂基硫酸钠和10 mL乙二醇独乙醚溶于约650 mL热水中，合并上述两种溶液，再将4.56 g无水磷酸氢二钠溶于150 mL热水中，并入上述溶液中，用磷酸调节上述混合液至pH 6.97.1，最后加水至1000 mL。6.2.14 磷酸盐缓冲液：由38.7 mL 0.1 mol/L磷酸氢二钠和61.3 mL 0.1 mol/L磷酸二氢钠混合而成，pH为7.0 ±0.2。6.2.15 2.5 % -淀粉酶溶液：称取2.5 g -淀粉酶溶于100 mL磷酸盐缓冲溶液中，离心、过滤，滤过的酶液

35、备用。6.2.16 耐热玻璃棉（耐热130 ，需耐热并不易折断的玻璃棉）。6.3仪器和设备6.3.1 天平：感量为0.1 mg。6.3.2 烘箱：110 130 。6.3.3 恒温箱：37 ±2 。6.3.4 纤维测定仪。6.3.5 如没有纤维测定仪，可由下列部件组成：a) 电热板：带控温装置。b) 高型无嘴烧杯：600 mL。c) 坩埚式耐酸玻璃滤器：容量60 mL，孔径40 m60 m。d) 回流冷凝装置。e) 抽滤装置：由抽滤瓶、抽滤垫及水泵组成。f) pH计：精度为0.01。6.4 分析步骤6.4.1 称取固体试样0.5 g1.0 g或液体试样8.0 g（精确到0.1 mg）

36、，置于高型无嘴烧杯中，如试样脂肪含量超过10 %，需先去除脂肪，例如1.00 g试样，用石油醚30 60 （6.2.2）提取3次，每次10 mL。6.4.2 加100 mL中性洗涤剂溶液（4.13），再加0.5 g无水亚硫酸钠（6.2.1）。6.4.3 电炉加热，5 min10 min内使其煮沸，移至电热板上，保持微沸1 h。6.4 .4于耐酸玻璃滤器中，铺1 g3 g玻璃棉，移至烘箱内，110 烘4 h，取出置干燥器中冷至室温，称量，得m1（精确到0.0001 g）。6.4.5 将煮沸后试样趁热倒入滤器中，用水泵抽滤。用500 mL热水（90 100 ），分数次洗烧杯及滤器，抽滤至干。洗净滤

37、器下部的液体和泡沫，塞上橡皮塞。6.4.6 于滤器中加酶液（6.2.15），液面需覆盖纤维，用细针挤压掉其中气泡，加数滴甲苯（6.2.4），盖上表面皿，37 恒温箱中过夜。 6.4.7 取出滤器，除去底部塞子，抽滤去酶液，并用300 mL热水分数次洗去残留酶液，用碘液检查是否有淀粉残留，如有残留，继续加酶水解，如淀粉已除尽，抽干，再以丙酮（6.2.3）洗2次。6.4.8 将滤器置烘箱中，110 烘4 h，取出，置干燥器中，冷至室温，称量，得m2（精确到0.0001 g）。6.5分析结果的表述试样中不溶性膳食纤维的含量按式（1）计算：m=1.0030(g) , m1=48.1937(g) , m

38、2=48.2054 (g)X = 1.1665%故紫薯小饼干纤维素符合G5413.6的要求。式中：X试样中不溶性膳食纤维的含量，单位为克每百克（g/100 g）；m1滤器加玻璃棉的质量，单位为克（g）；m2滤器加玻璃棉及试样中纤维的质量，单位为克（g）；m试样质量，单位为克（g）。以重复性条件下获得的两次独立测定结果的算术平均值表示，结果保留三位有效数字。6.6精密度在重复性条件下获得的两次独立测定结果的绝对差值不得超过算术平均值的10 % 。七、食品微生物学检验 菌落总数测定 （GB4789.2-2010) 7.1 设备和材料 除微生物实验室常规灭菌及培养设备外，其他设备和材料如下： 恒温培

39、养箱：36 ±1 ，30 ±1 、 冰箱：2 5 、46 ±1 、天平：感量为 0.1 g。 均质器、振荡器、无菌吸管：1 mL（具 0.01 mL 刻度）、10 mL（具 0.1 mL 刻度）或微量移液器及吸头、无菌锥形瓶：容量 250 mL、500 mL、无菌培养皿：直径 90 mm、pH 计或 pH 比色管或精密 pH 试纸、 放大镜或/和菌落计数器。 7.2 培养基和试剂 平板计数琼脂培养基、磷酸盐缓冲液 GB 4789.22010 、无菌生理盐水 7.3 操作步骤 7.3.1 样品的稀释 1 固体和半固体样品：称取 25 g 样品置盛有 225 mL 磷

40、酸盐缓冲液或生理盐水的无菌均质杯内， 8000 r/min10000 r/min 均质 1 min2 min，或放入盛有 225 mL 稀释液的无菌均质袋中，用拍击式均 质器拍打 1 min2 min，制成 1:10 的样品匀液。2 液体样品：以无菌吸管吸取 25 mL 样品置盛有 225 mL 磷酸盐缓冲液或生理盐水的无菌锥形瓶 （瓶内预置适当数量的无菌玻璃珠）中，充分混匀，制成 1:10 的样品匀液。 36 ±1 48 h±2 h 检 样 25 g(mL)样品+225 mL 稀释液，均质 10 倍系列稀释 选择 2 个3 个适宜稀释度的样品匀液， 各取 1 mL 分别加

41、入无菌培养皿内 培 养计数各平板菌落数计算菌落总数 每皿中加入 15 mL20 mL 平板计数琼脂培养基，混匀GB 4789.22010 3 用 1 mL 无菌吸管或微量移液器吸取 1:10 样品匀液 1 mL，沿管壁缓慢注于盛有 9 mL 稀释液的 无菌试管中（注意吸管或吸头尖端不要触及稀释液面），振摇试管或换用 1 支无菌吸管反复吹打使其混 合均匀，制成 1:100 的样品匀液。 6.1.4 按 6.1.3 操作程序，制备 10 倍系列稀释样品匀液。每递增稀释一次，换用 1 次 1 mL 无菌吸管 或吸头。 6.1.5 根据对样品污染状况的估计，选择 2 个3 个适宜稀释度的样品匀液（液体

42、样品可包括原液）， 在进行 10 倍递增稀释时，吸取 1 mL 样品匀液于无菌平皿内，每个稀释度做两个平皿。同时，分别吸 取 1 mL 空白稀释液加入两个无菌平皿内作空白对照。 6.1.6 及时将 15 mL20 mL 冷却至 46 的平板计数琼脂培养基（可放置于 46 ±1 恒温水浴箱中 保温）倾注平皿，并转动平皿使其混合均匀。 7.3.2培养 待琼脂凝固后，将平板翻转，36 ±1 培养 48 h±2 h。水产品 30 ±1 培养 72 h±3 h。 6.2.2 如果样品中可能含有在琼脂培养基表面弥漫生长的菌落时，可在凝固后的琼脂表面覆盖一薄

43、层 琼脂培养基（约 4 mL），凝固后翻转平板，按 6.2.1 条件进行培养。 7.3.3菌落计数 可用肉眼观察，必要时用放大镜或菌落计数器，记录稀释倍数和相应的菌落数量。菌落计数以菌落 形成单位（colony-forming units，CFU）表示。 6.3.1 选取菌落数在 30 CFU300 CFU 之间、无蔓延菌落生长的平板计数菌落总数。低于 30 CFU 的 平板记录具体菌落数，大于 300 CFU 的可记录为多不可计。每个稀释度的菌落数应采用两个平板的平 均数。 6.3.2 其中一个平板有较大片状菌落生长时，则不宜采用，而应以无片状菌落生长的平板作为该稀释 度的菌落数；若片状菌落

44、不到平板的一半，而其余一半中菌落分布又很均匀，即可计算半个平板后乘以 2，代表一个平板菌落数。 6.3.3 当平板上出现菌落间无明显界线的链状生长时，则将每条单链作为一个菌落计数。 7.4结果与报告 7.4.1菌落总数的计算方法 7.1.1 若只有一个稀释度平板上的菌落数在适宜计数范围内，计算两个平板菌落数的平均值，再将平 均值乘以相应稀释倍数，作为每 g（mL）样品中菌落总数结果。 7.1.2 若有两个连续稀释度的平板菌落数在适宜计数范围内时，按公式（1）计算： （1） 式中： N样品中菌落数； C平板（含适宜范围菌落数的平板）菌落数之和； n1第一稀释度（低稀释倍数）平板个数； n2第二稀

45、释度（高稀释倍数）平板个数； d稀释因子（第一稀释度）。 7.1.3 若所有稀释度的平板上菌落数均大于 300 CFU，则对稀释度高的平板进行计数，其他平板可 记录为多不可计，结果按平均菌落数乘以高稀释倍数计算。 7.1.4 若所有稀释度的平板菌落数均小于 30 CFU，则应按稀释度低的平均菌落数乘以稀释倍数计 算。 7.1.5 若所有稀释度（包括液体样品原液）平板均无菌落生长，则以小于 1 乘以低稀释倍数计算。 7.1.6 若所有稀释度的平板菌落数均不在30 CFU300 CFU之间，其中一部分小于30 CFU或大于300 CFU 时，则以接近 30 CFU 或 300 CFU 的平均菌落数

46、乘以稀释倍数计算。 7.4.2 菌落总数的报告 菌落数小于 100 CFU 时，按“四舍五入”原则修约，以整数报告。 7.2.2 菌落数大于或等于 100 CFU 时，第 3 位数字采用“四舍五入”原则修约后，取前 2 位数字，后 面用 0 代替位数；也可用 10 的指数形式来表示，按“四舍五入”原则修约后，采用两位有效数字。 7.2.3 若所有平板上为蔓延菌落而无法计数，则报告菌落蔓延。 7.2.4 若空白对照上有菌落生长，则此次检测结果无效。 7.2.5 称重取样以 CFU/g 为单位报告，体积取样以 CFU/mL 为单位报告。 A.1 平板计数琼脂（plate count agar，PC

47、A）培养基 A.1.1 成分 胰蛋白胨 5.0 g 、酵母浸膏 2.5 g 、葡萄糖 1.0 g 、琼 脂 15.0 g 、 蒸馏水 1000 mL pH 7.0±0.2 A.1.2 制法 将上述成分加于蒸馏水中，煮沸溶解，调节pH。分装试管或锥形瓶，121 高压灭菌15 min。 A.2 磷酸盐缓冲液 A.2.1 成分 磷酸二氢钾（KH2PO4）34.0 g 、蒸馏水 500 mL pH 7.2 A.2.2 制法 贮存液：称取34.0 g的磷酸二氢钾溶于500 mL蒸馏水中，用大约175 mL的1 mol/L氢氧化钠溶液调节 pH，用蒸馏水稀释至1 000 mL后贮存于冰箱。 稀释

48、液：取贮存液1.25 mL，用蒸馏水稀释至1 000 mL，分装于适宜容器中，121 高压灭菌15 min。 A.3 无菌生理盐水 A.3.1 成分 氯化钠 8.5 g 、蒸馏水1 000 mL A.3.2 制法 称取8.5氯化钠溶于1 000 mL蒸馏水中，121 高压灭菌15 min。试验结果分析10-110-210-3报告数134CFU3CFU1CFU280CFU/g222CFU8CFU2CFU空白值0八.食品微生物学检验 大肠菌群计数 （G4789.32010 ）8.1设备和材料 除微生物实验室常规灭菌及培养设备外，其他设备和材料如下： 恒温培养箱：36 ±1 、冰箱：2 5

49、 、 恒温水浴箱：46 ±1 、 天平：感量 0.1 g、 均质器、振荡器、无菌吸管：1 mL（具 0.01 mL 刻度）、10 mL（具 0.1 mL 刻度）或微量移液器及吸头、无菌锥形瓶：容量 500 mL、 无菌培养皿：直径 90 mm、pH 计或 pH 比色管或精密 pH 试纸、菌落计数器。 8.2 培养基和试剂 月桂基硫酸盐胰蛋白胨（Lauryl Sulfate Tryptose，LST）肉汤、煌绿乳糖胆盐（Brilliant Green Lactose Bile，BGLB）肉汤、结晶紫中性红胆盐琼脂（Violet Red Bile Agar，VRBA）、 磷酸盐缓冲液、

50、无菌生理盐水、无菌 1 mol/L NaOH、无菌 1 mol/L HCl 8.3平板计数 选取2个3个适宜的连续稀释度, 每个稀释度接种2个无菌平皿，每皿1 mL。同时取 1 mL生理盐 水加入无菌平皿作空白对照。 8.2.2 及时将15 mL20 mL冷至46 的结晶紫中性红胆盐琼脂（VRBA）约倾注于每个平皿中。小心 旋转平皿，将培养基与样液充分混匀，待琼脂凝固后，再加3 mL4 mLVRBA覆盖平板表层。翻转平 板，置于36 ±1 培养18 h24 h。 8.4平板菌落数的选择 选取菌落数在 15 CFU150 CFU 之间的平板，分别计数平板上出现的典型和可疑大肠菌群菌落。

51、 典型菌落为紫红色，菌落周围有红色的胆盐沉淀环，菌落直径为 0.5 mm 或更大。 8.5 证实试验 从 VRBA 平板上挑取 10 个不同类型的典型和可疑菌落，分别移种于 BGLB 肉汤管内，36 ±1 培养 24 h48 h，观察产气情况。凡 BGLB 肉汤管产气，即可报告为大肠菌群阳性。 8.6 大肠菌群平板计数的报告 经后证实为大肠菌群阳性的试管比例乘以8.3中计数的平板菌落数，再乘以稀释倍数，即为每g （mL）样品中大肠菌群数。例：10-4样品稀释液1 mL，在VRBA平板上有100个典型和可疑菌落，挑取 其中10个接种BGLB肉汤管，证实有6个阳性管，则该样品的大肠菌群数

52、为：100×6/10×104/g（mL）=6.0×105 CFU/g（mL）GB 4789.32010 附录A （规范性附录） 培养基和试剂 A.1 月桂基硫酸盐胰蛋白胨（LST）肉汤 A.1.1 成分 胰蛋白胨或胰酪胨 20.0 g 、 氯化钠5.0 g 、乳糖 5.0 g 、 磷酸氢二钾（K2HPO4）2.75 g 、 磷酸二氢钾（KH2PO4） 2.75 g 、月桂基硫酸钠 0.1 g 、蒸馏水 1 000 mL pH 6.8±0.2 A.1.2 制法 将上述成分溶解于蒸馏水中，调节 pH。分装到有玻璃小倒管的试管中，每管 10 mL。121 高压 灭菌 15 min。 A.2 煌绿乳糖胆盐（BGLB）肉汤 A.2.1 成分 蛋白胨 10.0 g 、乳糖 10.0 g 、牛胆粉（oxgall或oxbile）溶液 200 mL、0.1%煌绿水溶液 13.3 m、 蒸馏水800 mL pH 7.2±0.1 A.2.2 制法 将蛋白胨、乳糖溶于约500 mL蒸馏水中，加入牛胆粉溶液200 mL（将20.0 g脱水牛胆粉溶于200 mL 蒸馏水中，调节pH至7.07.5），用蒸馏水稀释到975 mL，调节