检验科标本采集流程规范

检验科标本采集流程规范临床检验结果的准确性高度依赖标本质量，而标本采集作为检验流程的首道关卡，其规范性直接影响后续检验环节的有效性。本文从患者准备、标本类型采集要求、操作规范、处理转运及质量控制等维度，梳理检验科标本采集的核心流程与要点，为临床医护人员、检验技师及相关从业者提供实用参考。一、标本采集前的患者准备标本采集前需对患者进行全面指导与评估，减少外源性因素对检验结果的干扰。（一）饮食与作息管理不同检验项目对饮食的要求存在差异：空腹类项目（如血脂、肝功能、空腹血糖）：需禁食8-12小时，禁饮含酒精、咖啡因的饮品，可少量饮用白开水；采血前1-2天避免高脂、高蛋白饮食，以防乳糜血或转氨酶升高。非空腹类项目（如糖化血红蛋白、血常规）：无需严格空腹，但需避免暴饮暴食或高糖饮食，保持日常饮食规律。特殊饮食要求：如尿儿茶酚胺检测需提前3天禁食香蕉、咖啡、巧克力等富含儿茶酚胺的食物；粪便隐血试验需禁食动物血、肝脏、菠菜等干扰物质。作息方面，建议患者采血前24小时内避免剧烈运动、熬夜，保持情绪稳定，减少应激状态对激素、酶类指标的影响。（二）用药与病史告知采集前需详细询问患者用药史，必要时与临床医师沟通是否暂停干扰性药物：抗生素、消毒剂会抑制微生物生长，微生物标本采集前应尽量避免使用（如痰培养前停药2-3天，保留自然咳痰状态）。激素类药物（如糖皮质激素）会影响内分泌、免疫指标，需标注用药时间及剂量。利尿剂、降糖药可能改变电解质、血糖水平，采集前需记录用药情况。同时，需确认患者是否存在出血倾向（如服用抗凝药、血小板减少史）、过敏史（如乳胶、消毒剂过敏），以便调整采集方案（如改用非乳胶手套、选择合适的穿刺部位）。二、标本类型及采集要求根据检验目的，标本分为血液、尿液、粪便、体液及微生物标本等，需针对性选择采集容器与方法。（一）血液标本血液标本按检测需求分为血清标本（无抗凝剂，用于生化、免疫检测）、血浆标本（含抗凝剂，用于凝血、血气分析）、全血标本（含抗凝剂，用于血常规、血氨检测）。容器选择：真空采血管颜色对应不同用途（如紫色管含EDTA-K₂，用于血常规；蓝色管含枸橼酸钠，用于凝血功能），需严格匹配检验项目。采集量：成人静脉采血单次总量不超过50ml（特殊项目除外），儿童按体重调整（如婴幼儿血常规采集1-2ml）。注意事项：血培养标本需双侧双瓶采集（需氧+厌氧），每瓶8-10ml，严格无菌操作，避免皮肤菌群污染。血气分析标本需使用肝素抗凝注射器，采集后立即排尽气泡、肝素化管壁，30分钟内送检（若无法及时送检，需置于4℃冷藏并标注时间）。（二）尿液标本尿液标本按留取时间分为晨尿、随机尿、24小时尿等：晨尿：晨起第一次尿，浓缩度高，适合尿沉渣、尿蛋白定量检测，采集前需清洁外阴/尿道口（女性避开经期），留取中段尿（弃去前段，留取中间段5-10ml）。随机尿：无时间限制，适合急诊筛查，容器需清洁干燥，避免混入白带、精液等污染物。24小时尿：晨起7点排空膀胱后开始留尿，至次日7点的全部尿液，需加入防腐剂（如甲苯、浓盐酸，依项目而定），充分混匀后取10-20ml送检，剩余尿液需测量总量并记录。（三）粪便标本粪便标本用于病原学检测、隐血试验等：采集部位：挑取含脓血、黏液或异常颜色的部分（如黑便、白陶土样便），若外观正常，取多个部位（如表面、内部）混合。容器要求：使用无菌、干燥的标本盒，避免混入尿液、卫生纸等。特殊要求：寄生虫卵检测需采集3-5g粪便，连续送检3天；艰难梭菌检测需采集新鲜粪便（1小时内送检），避免接触空气。（四）体液标本（脑脊液、胸腹水、关节液等）体液标本需严格无菌操作：脑脊液：由临床医师腰椎穿刺采集，第一管（3-5ml）用于微生物培养，第二管用于生化、免疫，第三管用于细胞计数；采集后立即送检，避免冷藏（低温抑制脑膜炎球菌生长）。胸腹水：采集前需排尽积液表面的纤维蛋白膜，使用肝素抗凝管（生化/免疫）或无抗凝管（细胞计数），记录总量与性状（如血性、乳糜性）。（五）微生物标本微生物标本（痰、咽拭子、伤口分泌物等）需重点防污染：痰标本：患者需用清水漱口3次，深咳（从肺部咳出）第一口痰，弃去唾液，留取第二口痰（约3-5ml）于无菌容器，避免混入上呼吸道菌群。咽拭子：用无菌拭子擦拭双侧扁桃体及咽后壁，避免接触舌头、口腔黏膜；立即放入含运输培养基的试管，常温1小时内送检。三、采集操作规范规范的操作是保证标本质量的核心，需从环境、人员、操作步骤三方面严格把控。（一）环境与人员准备环境：采集区域需清洁、通风，台面每日消毒（如含氯消毒剂擦拭）；采血室需配备急救设备（如肾上腺素、吸氧装置）应对晕针、过敏等突发情况。人员：采集者需洗手、戴医用口罩、手套（乳胶或丁腈，依患者过敏史选择），操作前核对自身防护（如处理传染性标本时穿隔离衣）。（二）患者体位与配合静脉采血时患者取坐位或卧位，手臂伸直、掌心向上，垫枕使穿刺部位（肘前区）略高于心脏，减少静脉充盈压力。采集尿液、粪便时需指导患者正确留取方法（如中段尿的留取姿势、粪便的采集部位），确保患者理解并配合。（三）操作步骤要点以静脉采血为例，关键步骤如下：1.消毒：用75%乙醇棉球以穿刺点为中心，顺时针、逆时针交替消毒，直径≥5cm，待干后穿刺（避免酒精残留导致溶血）。2.穿刺与采血：持针角度15°-30°，见回血后固定针头，按“血培养→抗凝管→血清管”的顺序采集（避免交叉污染）；采集后松开止血带，拔出针头，嘱患者按压穿刺点5-10分钟（勿揉，防止淤血）。3.标本核对：采集后立即核对患者姓名、ID号、标本类型、采集时间，确保标签与标本一一对应，无错贴、漏贴。四、标本处理与转运采集后的标本需及时处理、转运，避免标本降解或污染。（一）标本处理血清/血浆分离：血液标本采集后，血清管需静置30分钟（促凝管可缩短至15分钟），再以3000rpm离心10分钟；血浆管采集后立即颠倒混匀（如枸橼酸钠管颠倒3-5次），离心条件同血清管。特殊处理：如胰岛素、PTH（甲状旁腺激素）需分离血清后-20℃冷冻；尿蛋白定量需将24小时尿充分混匀后取10ml，其余尿液测量总量并记录。（二）标本转运转运条件：常温转运：如血常规、生化标本（温度15-25℃，4小时内送检）。冷藏转运：如甲状腺激素、肿瘤标志物（2-8℃，加冰袋，24小时内送检）。冷冻转运：如基因检测标本（-20℃或-80℃，用干冰或专用冷链箱）。转运要求：标本需置于防漏、防渗的容器（如密封袋），外贴“生物危害”标识；转运人员需记录转运时间、温度，确保可追溯。五、质量控制与常见问题处理（一）质量控制要点采集前培训：定期对采集人员进行操作考核（如静脉穿刺成功率、标本合格率），强化无菌操作、抗凝剂使用等知识点。标本核查：采集后双人核对（或自我核对）患者信息、标本状态（如是否溶血、污染、量不足），不合格标本需立即标记并重新采集。拒收标准：明确拒收标本的情形（如血标本溶血、尿标本污染、微生物标本干涸），并反馈临床，说明拒收原因及重新采集要求。（二）常见问题及处理溶血：原因包括穿刺不顺利、混匀过度、容器污染等。处理：重新采集，采集时避免反复穿刺，采血后轻柔颠倒混匀（抗凝管），使用无热源、无酶的试管。标本污染：如尿液混入白带导致细菌培养假阳性。处理：指导患者清洁外阴后重新留取中段尿，采集容器需无菌干燥。晕针/晕血：患者出现头晕、出汗、面色苍白时，立即平卧、松解衣领，