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2025年分子诊断学模拟考试题+答案一、单项选择题(每题2分,共30分)1.磁珠法提取基因组DNA时,关键步骤中“结合缓冲液”的主要成分不包括以下哪项?A.高浓度胍盐B.TritonX-100C.EDTAD.羧基修饰磁珠答案:C解析:结合缓冲液需破坏细胞结构(TritonX-100)、变性蛋白(高浓度胍盐),并提供磁珠(羧基修饰)与核酸结合的环境(低pH、高盐);EDTA主要用于抑制核酸酶活性,通常在裂解液或洗涤液中添加,非结合缓冲液关键成分。2.关于数字PCR(dPCR)与实时荧光定量PCR(qPCR)的比较,正确的是?A.dPCR依赖标准曲线定量,qPCR通过终点计数定量B.dPCR可检测低丰度突变(如突变频率<1%),qPCR受限于扩增效率差异C.dPCR使用SYBRGreen染料,qPCR仅能使用探针法D.dPCR对仪器温度均匀性要求低于qPCR答案:B解析:dPCR通过微滴/芯片将反应体系分割,终点计数阳性微滴实现绝对定量,无需标准曲线;qPCR依赖Ct值与标准曲线比较,易受扩增效率影响,对低丰度突变(<1%)检测灵敏度不足。dPCR可使用染料或探针法,对温度均匀性要求更高(避免微滴间扩增差异)。3.某实验室使用二代测序(NGS)检测肿瘤驱动基因,以下哪种情况最可能导致“假阴性”结果?A.测序深度为500×,覆盖目标区域98%B.样本DNA片段化后平均长度为200bpC.杂交捕获探针设计时遗漏了EGFR外显子20插入突变热点区域D.数据比对时使用hg38基因组参考序列答案:C解析:探针设计遗漏目标区域会导致该区域无法被捕获测序,直接造成突变漏检(假阴性)。测序深度500×(通常要求≥500×)、片段化长度200bp(适合NGS)、使用最新参考序列(hg38)均为规范操作,不会导致假阴性。4.表观遗传学诊断中,检测DNA甲基化最常用的金标准方法是?A.甲基化特异性PCR(MSP)B.焦磷酸测序(Pyrosequencing)C.亚硫酸氢盐测序(BisulfiteSequencing)D.甲基化敏感限制性内切酶-PCR(MSRE-PCR)答案:C解析:亚硫酸氢盐处理后,未甲基化的胞嘧啶(C)转化为尿嘧啶(U),甲基化的5-甲基胞嘧啶(5mC)保持不变,通过测序可直接读取甲基化状态,是甲基化检测的金标准。MSP、焦磷酸测序、MSRE-PCR均为基于亚硫酸氢盐处理的衍生方法,特异性或定量准确性稍逊。5.以下哪种技术可同时检测基因点突变、插入缺失(Indel)、拷贝数变异(CNV)及结构变异(SV)?A.荧光原位杂交(FISH)B.多重连接依赖探针扩增(MLPA)C.全外显子测序(WES)D.实时荧光PCR(qPCR)答案:C解析:WES通过高通量测序可同时识别点突变(SNP)、Indel(短插入/缺失)、CNV(通过覆盖度分析)及SV(如易位、倒位,通过跨外显子reads比对)。FISH主要检测特定区域CNV或SV;MLPA侧重CNV;qPCR仅能检测已知突变或CNV。6.检测循环肿瘤DNA(ctDNA)时,为降低“克隆性造血(CH)”导致的假阳性,最有效的策略是?A.增加测序深度至10000×B.同时检测配对白细胞DNA作为对照C.使用血浆游离DNA(cfDNA)而非血清D.优化DNA提取时的去蛋白步骤答案:B解析:克隆性造血是造血干细胞获得的体细胞突变,会导致ctDNA检测中出现非肿瘤来源的突变(如DNMT3A、TET2)。通过配对白细胞DNA检测,可区分肿瘤特异性突变(ctDNA中存在,白细胞中不存在)与CH相关突变(两者均存在),有效降低假阳性。7.某患者因“进行性肌肉无力”就诊,基因检测提示DMD基因外显子45-50缺失,最可能的诊断是?A.脊髓性肌萎缩症(SMA)B.假肥大型肌营养不良(DMD/BMD)C.强直性肌营养不良(DM1)D.肢带型肌营养不良(LGMD)答案:B解析:DMD基因编码抗肌萎缩蛋白(dystrophin),其外显子缺失(尤其是框内或框外缺失)是DMD(杜氏肌营养不良,严重型)和BMD(贝克型,轻型)的主要致病机制。SMA由SMN1基因缺失引起;DM1与DMPK基因CTG重复扩增相关;LGMD涉及多种基因(如CAPN3、DYSF)突变。8.新型冠状病毒(SARS-CoV-2)变异株检测中,以下哪种技术可在单反应管内同时区分OmicronBA.5与XBB.1.5?A.病毒全基因组测序(WGS)B.多重荧光PCR(MultiplexqPCR)C.等温扩增(LAMP)D.数字PCR(dPCR)答案:B解析:多重荧光PCR可设计针对不同变异株特异性位点(如BA.5的S:R346T与XBB.1.5的S:F486P)的探针,通过不同荧光通道(如FAM、HEX)同时检测,实现快速分型。WGS虽准确但耗时;LAMP、dPCR通常用于定量或单靶标检测,多靶标分型能力有限。9.关于单细胞测序(scRNA-seq)在肿瘤微环境分析中的应用,错误的是?A.可识别肿瘤细胞亚克隆及异质性B.能检测免疫细胞(如T细胞、巨噬细胞)的表型及功能状态C.需对单个细胞进行全基因组扩增(WGA)D.结果需结合降维分析(如t-SNE、UMAP)可视化答案:C解析:scRNA-seq针对RNA(mRNA)进行测序,需反转录为cDNA后扩增;全基因组扩增(WGA)是单细胞基因组测序(scDNA-seq)的步骤。其余选项均为scRNA-seq的典型应用。10.以下哪种突变类型最适合用高分辨率熔解曲线分析(HRM)检测?A.大片段缺失(>100bp)B.单核苷酸多态性(SNP)C.基因融合(如ALK-EML4)D.三核苷酸重复扩增(如FMR1的CGG重复)答案:B解析:HRM通过分析PCR产物熔解曲线的差异(由序列差异引起)检测突变,对单碱基变异(SNP)敏感;大片段缺失会导致熔解曲线显著偏移(但非HRM优势),基因融合需断点特异性检测,三核苷酸重复扩增需长度分析(如毛细管电泳)。11.某实验室开展BRCA1/2基因检测,以下哪项操作不符合质量控制要求?A.使用经FDA/CE认证的检测试剂盒B.每批次检测包含阳性对照(已知BRCA1c.68_69del突变)和阴性对照(野生型DNA)C.对样本DNA进行定量(Qubit),确保浓度≥20ng/μL且A260/A280=1.8-2.0D.测序数据比对时,将未覆盖的外显子标记为“未检测”,不报告结果答案:D解析:BRCA1/2检测需覆盖所有编码外显子及剪接位点,未覆盖区域应视为检测局限性,需在报告中注明“该区域未检测,可能遗漏突变”,而非直接不报告。其余选项均为规范操作。12.用于检测微小残留病(MRD)的理想分子标记物应具备以下特征,除了?A.肿瘤特异性(仅存在于肿瘤细胞,正常细胞无)B.高灵敏度(可检测10⁻⁶水平的残留细胞)C.稳定性(治疗过程中持续存在)D.广泛存在于所有肿瘤类型答案:D解析:MRD标记物需具有肿瘤特异性(如白血病的融合基因、实体瘤的驱动突变),但不同肿瘤的标记物不同(如肺癌的EGFR突变、结直肠癌的KRAS突变),无法“广泛存在于所有肿瘤”。13.关于三代测序(PacBioSMRT、OxfordNanopore)在分子诊断中的优势,正确的是?A.测序读长可达数kb至Mb级,适合检测结构变异(如倒位、易位)B.错误率低于二代测序(NGS),无需重复测序C.无需DNA片段化,可直接对完整基因组进行测序D.数据分析简单,无需复杂生物信息学工具答案:A解析:三代测序的超长读长(PacBio~20kb,Nanopore~Mb)可跨越重复序列及结构变异断点,准确识别SV;其错误率较高(~1-15%),需通过多次测序(如PacBio的HiFi模式)纠错;DNA仍需打断至合适长度(如PacBio需20kb片段);数据分析涉及长读长比对、纠错等,生物信息学要求更高。14.检测人类白细胞抗原(HLA)分型时,最常用的分子诊断技术是?A.序列特异性引物PCR(SSP-PCR)B.实时荧光PCR(qPCR)C.原位杂交(ISH)D.流式细胞术(FCM)答案:A解析:HLA分型需精确到等位基因水平,SSP-PCR通过设计针对HLA等位基因特异性引物,扩增后电泳判断分型,是临床常用方法。qPCR多用于定量;ISH用于组织定位;FCM检测蛋白表达,无法区分等位基因。15.以下哪种病原体的分子检测需特别注意“前病毒整合”现象?A.乙型肝炎病毒(HBV)B.人类免疫缺陷病毒(HIV)C.人乳头瘤病毒(HPV)D.巨细胞病毒(CMV)答案:B解析:HIV感染后,病毒RNA反转录为cDNA并整合到宿主染色体中形成前病毒(provirus),常规PCR检测血浆病毒载量(游离RNA)无法反映潜伏感染状态,需结合前病毒DNA检测(如外周血单个核细胞中的HIVDNA)。HBV、HPV、CMV主要以游离或episome形式存在,整合现象非检测关键。二、简答题(每题10分,共50分)1.简述核酸提取过程中“RNA易降解”的主要原因及常用防护措施。答案:RNA易降解的主要原因:①RNA分子2’-羟基的存在使其更易发生水解;②环境中广泛存在RNA酶(RNase),耐热且耐常规变性剂(如蛋白酶K);③样本保存不当(如组织未及时冻存或使用RNA保护剂)导致内源性RNase释放。防护措施:①使用无RNase的耗材(经DEPC处理或商品化无酶产品);②加入RNase抑制剂(如RNasin)抑制外源性RNase;③样本采集后立即冻存(-80℃)或使用RNA保存液(如RNAlater);④提取过程中保持低温(冰上操作);⑤裂解液中含强变性剂(如异硫氰酸胍)破坏RNase活性;⑥提取后RNA尽快使用或-80℃保存,避免反复冻融。2.比较Sanger测序与二代测序(NGS)在基因突变检测中的应用场景。答案:Sanger测序:原理:双脱氧链终止法,通过毛细管电泳分离不同长度的终止片段,读取序列。优势:单读长准确性高(>99.99%),操作简单,成本低(针对少数基因)。应用场景:小范围基因检测(如单基因遗传病的已知突变筛查、验证NGS发现的变异)、低复杂度样本(如纯合突变、高丰度突变)。NGS:原理:高通量平行测序,通过短读长(50-300bp)大规模测序,生物信息学拼接分析。优势:可同时检测多个基因(panel)、全外显子(WES)或全基因组(WGS),覆盖点突变、Indel、CNV、SV等多种变异类型,适合大样本或未知突变筛查。应用场景:肿瘤多基因panel检测(如驱动基因、耐药基因)、遗传病全外显子分析、病原微生物宏基因组测序(mNGS)等。3.阐述CRISPR-Cas系统在分子诊断中的创新应用(至少列举2种)。答案:CRISPR-Cas系统(如Cas9、Cas12、Cas13)因具有RNA引导的核酸内切酶活性,已被开发为新型诊断工具:①病原体快速检测(如SHERLOCK技术):设计靶向病原体核酸(DNA/RNA)的gRNA,Cas13(RNA靶向)或Cas12(DNA靶向)结合目标序列后激活非特异性切割活性,剪切荧光标记的报告探针,通过荧光信号实现可视化检测(如试纸条)。该技术无需扩增(或仅需等温扩增),可在30分钟内完成,适用于POCT(如新冠病毒、疟原虫检测)。②癌症突变分型:利用Cas9的精准靶向性,设计针对特定突变位点(如EGFRT790M)的gRNA,切割野生型DNA,富集突变型DNA后进行测序或PCR,提高低丰度突变(如ctDNA中的突变)的检测灵敏度。4.简述“肿瘤分子分型”对临床治疗的指导意义(以非小细胞肺癌为例)。答案:肿瘤分子分型通过检测驱动基因变异,为非小细胞肺癌(NSCLC)提供精准治疗依据:①EGFR敏感突变(19del、L858R):推荐EGFR-TKI(如吉非替尼、奥希替尼),显著延长无进展生存期(PFS),优于传统化疗。②ALK融合(如ALK-EML4):使用ALK抑制剂(如克唑替尼、阿来替尼),客观缓解率(ORR)>70%。③ROS1融合:对克唑替尼敏感,需与ALK融合区分。④KRASG12C突变:针对性抑制剂(如索托拉西布)获批,填补该突变既往无靶向药的空白。⑤PD-L1表达(CPS≥10)或MSI-H/dMMR:推荐免疫检查点抑制剂(如帕博利珠单抗)单药治疗。⑥无驱动基因(野生型):以化疗±免疫治疗为主。分子分型避免了“一刀切”治疗,提高疗效并减少无效治疗的毒副作用。5.设计一个针对“脊髓性肌萎缩症(SMA)”的分子诊断方案(需包含检测基因、技术选择及结果判读)。答案:SMA由SMN1基因(5q13)纯合缺失或功能丧失突变引起,SMN2基因为其同源基因(拷贝数影响表型严重程度)。诊断方案:①检测基因:SMN1(外显子7、8)、SMN2(外显子7拷贝数)。②技术选择:多重连接依赖探针扩增(MLPA):检测SMN1外显子7/8缺失(SMA最常见致病机制,占95%),同时定量SMN2拷贝数(与病情严重度负相关:1拷贝→Ⅰ型,2拷贝→Ⅱ型,3-4拷贝→Ⅲ/Ⅳ型)。全外显子测序(WES):对MLPA未检测到缺失的患者,筛查SMN1点突变或小Indel(占5%)。家系验证:对先证者父母检测SMN1杂合缺失(携带者),指导遗传咨询。结果判读:SMN1外显子7/8纯合缺失+SMN2拷贝数≤3:确诊SMA,结合拷贝数判断临床分型。SMN1杂合缺失:携带者(无临床症状,生育风险25%)。SMN1无缺失但存在功能突变(如c.859C>T):需通过功能实验(如SMN蛋白表达检测)确认致病性。三、案例分析题(每题10分,共20分)案例1:患者男性,65岁,因“咳嗽、痰中带血2月”就诊,胸部CT提示右肺上叶占位(3cm×2.5cm),病理活检确诊为肺腺癌。临床要求进行分子检测以指导治疗。实验室检测结果:EGFR基因:外显子19缺失(19del),丰度45%;外显子20T790M突变,丰度2%。ALK融合:阴性。PD-L1表达(CPS评分):8分。肿瘤突变负荷(TMB):5Mut/Mb(低)。微卫星状态(MSI):MSS(微卫星稳定)。问题:(1)该患者的主要驱动基因是什么?推荐的一线治疗方案是什么?(2)EGFR20T790M突变的存在可能对治疗产生什么影响?需如何处理?答案:(1)主要驱动基因为EGFR外显子19缺失(19del),属于EGFR敏感突变。推荐一线治疗方案为第三代EGFR-TKI(如奥希替尼),因其对19del/L858R等敏感突变的疗效优于一代/二代TKI,且可覆盖潜在的T790M耐药突变(该患者已检测到低丰度T790M,可能为原发或治疗前克隆)。(2)EGFR20T790M突变是一/二代EGFR-TKI的主要耐药机制(约60%患者治疗后出现)。该患者治疗前已存在低丰度T790M(2%),可能提示肿瘤内存在耐药亚克隆,使用一/二代TKI(如吉非替尼)可能导致早期耐药。因此,直接选择奥希替尼(可同时

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