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文档简介
2025年7月实验动物上岗证动物实验类练习题及参考答案一、单项选择题(每题2分,共30分)1.实验动物伦理审查中,“优化”原则的核心是A.用非动物模型替代活体实验B.减少实验动物使用数量C.通过改进方法降低动物痛苦D.确保实验结果的科学性答案:C2.进行小鼠腹腔注射时,进针角度通常建议为A.15°~20°B.30°~45°C.60°~75°D.90°垂直答案:B(角度过小易误入皮下,过大可能损伤内脏,30°~45°为常规推荐)3.SPF级实验大鼠允许存在的微生物是A.沙门氏菌B.肺炎克雷伯菌C.支原体D.无特定病原体(SPF级动物需排除规定的病原微生物,以上均不允许)答案:D(SPF级动物需排除包括沙门氏菌、支原体等在内的特定病原)4.实验动物环境控制中,屏障系统的温度应维持在A.18~22℃B.20~26℃C.22~28℃D.24~30℃答案:A(国标GB14925-2021规定屏障系统温度为18~22℃)5.豚鼠作为实验动物的主要优势是A.繁殖周期短B.体内缺乏合成维生素C的能力C.对结核杆菌敏感D.适合心血管实验答案:C(豚鼠对结核杆菌高度敏感,是结核研究的经典模型)6.实验动物安乐死的首选方法应满足A.快速、无痛、无恐惧B.使用麻醉剂后直接丢弃C.与实验目的无关时可随意处理D.优先选择物理方法(如颈椎脱臼)答案:A(安乐死需符合动物福利,核心是减少痛苦)7.大鼠尾静脉采血时,常用的血管扩张方法是A.冰袋冷敷B.75%酒精擦拭C.碘伏消毒后自然干燥D.高温灯照射(>40℃)答案:B(酒精擦拭可扩张血管并消毒,高温可能导致动物烫伤)8.实验动物记录中必须包含的信息不包括A.动物来源与品系B.实验操作者姓名C.动物饮食种类D.实验失败的具体原因答案:C(饮食种类非必须记录项,需记录的是饲料标准及更换情况)9.进行兔耳缘静脉注射时,若出现局部肿胀,最可能的原因是A.针头穿透血管后壁B.麻醉过深导致血管收缩C.注射速度过慢D.动物挣扎导致体位变化答案:A(针头穿透血管后壁会导致药液漏入皮下,引起肿胀)10.普通级实验小鼠可用于的实验是A.免疫功能研究B.细菌感染模型C.行为学观察D.肿瘤移植实验答案:C(普通级小鼠可能携带条件致病菌,不适用于免疫、感染或肿瘤实验)11.实验动物垫料的更换频率应根据A.动物种类与数量B.实验人员的时间安排C.垫料颜色变化D.饲养盒大小答案:A(不同动物(如大鼠与小鼠)、不同数量(单养与群养)的排泄量不同,需调整更换频率)12.异氟醚麻醉的优点是A.代谢产物毒性大B.麻醉深度易控制C.需通过静脉给药D.对呼吸系统抑制弱答案:B(异氟醚为吸入麻醉剂,挥发性好,麻醉深度可通过浓度调节)13.实验动物尸体处理应遵循A.直接丢弃至普通垃圾桶B.高压灭菌后按医疗废物处理C.深埋于实验楼附近D.焚烧后灰渣倒入下水道答案:B(实验动物尸体属于病理性废物,需高压灭菌或焚烧后按医疗废物处理)14.小鼠灌胃时,灌胃针的插入深度约为A.1~2cmB.3~4cmC.5~6cmD.7~8cm答案:B(小鼠食管长度约3~4cm,过深可能损伤胃部)15.实验动物伦理审查委员会(IACUC)的组成不包括A.实验动物专家B.动物保护组织代表C.非科学领域的公众代表D.实验项目负责人答案:D(项目负责人需回避审查,避免利益冲突)二、多项选择题(每题3分,共30分,多选、少选、错选均不得分)1.实验动物福利的具体要求包括A.提供适宜的活动空间B.避免不必要的限制(如固定时间过长)C.术后给予镇痛药物D.实验结束后立即安乐死答案:ABC(实验结束后是否安乐死需根据实验目的决定,非强制要求)2.选择实验动物时需考虑的生物学特性包括A.种属与人类的相似性B.性别对实验结果的影响C.年龄与体重的一致性D.动物的毛色是否美观答案:ABC(毛色不影响实验结果,非选择依据)3.实验动物环境控制中的“三废”处理包括A.废气(如动物排泄物产生的氨气)B.废水(如笼具清洗水)C.废渣(如垫料、动物尸体)D.实验产生的化学废液答案:ABCD(均属于实验动物设施需处理的废弃物)4.大鼠麻醉时,判断麻醉过深的指标有A.角膜反射消失B.呼吸频率<10次/分钟C.心跳节律不齐D.对疼痛刺激无反应答案:BC(角膜反射消失和痛觉消失是麻醉适度的表现,呼吸过慢或心跳异常提示过深)5.实验动物伦理审查的内容包括A.实验目的的必要性B.是否存在替代方法(如体外模型)C.动物数量的合理性D.实验操作的规范性(如麻醉、镇痛)答案:ABCD(均为伦理审查的核心内容)6.小鼠尾静脉注射成功的标志有A.推注时无阻力B.局部立即出现苍白(药液扩散)C.拔针后针孔少量出血D.动物出现剧烈挣扎答案:ABC(挣扎提示操作不当或动物未完全固定)7.实验动物微生物学等级分类包括A.普通级(CV)B.清洁级(CL)C.无特定病原体级(SPF)D.无菌级(GF)答案:ABCD(均为我国实验动物微生物学分级标准)8.实验动物饲料的基本要求是A.营养成分符合动物需求B.经过灭菌处理(如辐照)C.无霉变和杂质污染D.颜色均匀美观答案:ABC(颜色不影响饲料质量,非基本要求)9.兔动脉采血常用的部位有A.耳中央动脉B.股动脉C.颈总动脉D.尾中动脉答案:ABC(兔尾中动脉较细,非常用采血部位)10.实验动物操作中,无菌操作的关键环节包括A.器械高压灭菌B.操作者戴无菌手套C.手术区域碘伏消毒后酒精脱碘D.实验环境紫外线照射30分钟答案:ABCD(均为确保无菌的必要措施)三、判断题(每题1分,共10分,正确打√,错误打×)1.SPF级实验动物可以存在条件致病菌。(×)(SPF级需排除条件致病菌)2.豚鼠可以用于过敏反应实验,因其血清补体含量高。(√)3.实验动物安乐死时,可使用过量的戊巴比妥钠。(√)(过量麻醉剂是常用安乐死方法)4.小鼠的妊娠期约为19~21天,每胎产仔数5~12只。(√)5.实验动物记录只需保存1年,之后可销毁。(×)(需至少保存3年或至实验论文发表后)6.大鼠的汗腺不发达,主要通过尾巴散热。(√)7.普通级实验犬可用于疫苗效力检测实验。(×)(需使用SPF级或清洁级)8.实验动物环境的相对湿度应控制在40%~70%。(√)(国标要求)9.兔耳缘静脉注射时,应从耳尖向耳根方向选择血管。(√)(耳尖血管细,失败后可向耳根方向重新选择)10.实验动物伦理审查通过后,实验方案可随意调整。(×)(调整后需重新申请审查)四、简答题(每题6分,共30分)1.简述实验动物“3R”原则的具体内容及实际应用举例。答:3R原则即替代(Replacement)、减少(Reduction)、优化(Refinement)。替代指用非活体材料(如细胞培养)或低等动物替代高等动物,例如用斑马鱼胚胎替代小鼠进行药物毒性初筛;减少指通过优化实验设计降低动物使用量,如采用随机区组设计减少个体差异影响;优化指改进操作方法减轻动物痛苦,如使用无创成像技术替代传统解剖观察。2.实验动物选择时需遵循哪些基本原则?答:(1)种属匹配:根据实验目的选择生物学特性与人类相似的动物(如猴用于神经科学研究);(2)健康状态:选择无病、体重/年龄一致的动物,避免个体差异干扰结果;(3)等级适宜:根据实验要求选择微生物学等级(如肿瘤实验用SPF级);(4)数量控制:通过预实验确定最小有效数量,符合减少原则;(5)性别考虑:某些实验需排除性别影响(如激素相关研究用单一性别)。3.麻醉前需要做哪些准备工作?如何判断动物麻醉深度?答:麻醉前准备:(1)禁食(小鼠4~6小时,大鼠6~8小时)防止呕吐误吸;(2)检查麻醉剂浓度与设备(如吸入麻醉机的密封性);(3)固定动物,暴露注射部位;(4)准备急救药品(如阿托品)和保温设备(如恒温垫)。麻醉深度判断:(1)浅麻醉:角膜反射存在,对疼痛刺激(如夹趾)有反应,呼吸频率快;(2)手术麻醉:角膜反射减弱,痛觉消失,呼吸平稳(小鼠80~100次/分钟,大鼠60~80次/分钟);(3)过深麻醉:角膜反射消失,呼吸频率<10次/分钟,心跳减慢或节律不齐。4.实验动物术后护理的关键环节有哪些?答:(1)保温:使用恒温垫或暖灯维持体温(小鼠32~34℃,大鼠30~32℃),防止低体温;(2)镇痛:根据实验目的给予非甾体抗炎药(如布洛芬)或阿片类药物(如布托啡诺),避免疼痛应激;(3)饮食:术后6小时提供软质饲料或葡萄糖水,逐步恢复正常饮食;(4)感染预防:观察手术切口是否红肿、渗液,必要时局部使用抗生素软膏;(5)单笼饲养:避免群居动物互相啃咬伤口;(6)行为观察:记录活动量、进食量,异常时及时处理。5.实验动物环境控制的主要参数及标准是什么?答:根据GB14925-2021,(1)温度:普通环境18~26℃,屏障环境18~22℃;(2)相对湿度:40%~70%;(3)换气次数:普通环境8~10次/小时,屏障环境15~20次/小时;(4)照度:工作照度150~300lx,动物照度100~200lx;(5)噪声:≤60dB;(6)氨浓度:≤14mg/m³;(7)气流速度:≤0.2m/s(屏障环境)。五、案例分析题(每题10分,共20分)案例1:某实验室进行小鼠糖尿病模型构建实验,采用链脲佐菌素(STZ)腹腔注射。操作中发现部分小鼠注射后30分钟内死亡,解剖显示腹腔内有血性渗出液。分析可能原因及改进措施。答:可能原因:(1)STZ剂量过高(STZ对小鼠的半数致死量约为180mg/kg,需根据体重精确计算);(2)注射部位错误(误入肠管或肝脏,导致内脏损伤出血);(3)动物未禁食(胃内容物多,注射时损伤胃壁);(4)STZ溶液配置不当(未现用现配,或pH值不符合要求导致毒性增强)。改进措施:(1)预实验确定最佳剂量(如50mg/kg连续5天);(2)规范注射操作:提起小鼠腹部皮肤形成“皮丘”,针头倾斜30°~45°刺入皮下后回抽无血液或内容物再推注;(3)注射前禁食4~6小时;(4)STZ用0.1mol/L柠檬酸缓冲液(pH4.5)现配,冰浴保存,30分钟内使用。案例2:某实验室开展大鼠皮肤刺激性实验,将受试物涂抹于背部去毛区域后,未对动物进行固定。48小时观察期内,部分大鼠因舔舐受试物出现呕吐、腹泻症状。分析问题原因及预防措施。答:问题原因:(1)未使用伊丽莎白圈或固定装置,导致大鼠舔舐受试物;(2)去毛范围过大(超过体表面积10%),皮
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