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文档简介

病理技师三基模拟题与答案一、单项选择题(每题2分,共30分)1.关于组织固定的叙述,错误的是A.固定液需为组织体积的5-10倍B.4%中性多聚甲醛适用于电镜标本固定C.冰冻切片标本可直接固定于95%乙醇D.胃黏膜标本应先展平再固定答案:B解析:4%中性多聚甲醛是光镜常用固定液,电镜标本需用2.5%戊二醛等电镜专用固定液。2.HE染色中,盐酸酒精分化的主要目的是A.增强细胞核着色B.去除胞质多余染料C.使细胞核与胞质对比度清晰D.防止切片脱片答案:C解析:苏木素染色后,细胞核和部分胞质均被染色,盐酸酒精分化可溶去胞质中多余苏木素,保留细胞核内结合牢固的染料,使核质对比清晰。3.免疫组化染色中,内源性生物素干扰最常见于A.肝脏、肾脏组织B.乳腺、甲状腺组织C.皮肤、软骨组织D.神经、肌肉组织答案:A解析:肝脏(肝细胞)、肾脏(肾小管上皮)含丰富内源性生物素,使用链霉亲和素-生物素系统时易出现非特异性着色。4.冰冻切片制作时,组织表面出现冰晶的主要原因是A.组织未及时取材B.冷冻温度过低(<-30℃)C.组织含水量过高D.冷冻速度过慢答案:D解析:冰晶形成与冷冻速度负相关,快速冷冻(如异戊烷预冷至-150℃)可减少冰晶,常规冷冻台(-20~-25℃)若组织未贴紧冷冻面导致降温慢,易形成冰晶。5.病理标本接收时,发现“送检标本为‘右乳肿块’,但申请单标注为‘左乳’”,正确处理流程是A.联系临床医生确认后接收B.直接按申请单信息登记C.拒绝接收并退回D.自行修正申请单信息答案:A解析:标本与申请单信息不符时,需第一时间联系送检医生核实,确认无误后标注修正并双方签字,不可擅自修改或拒收。6.石蜡切片厚度控制在3-5μm的主要原因是A.减少抗原丢失B.避免切片断裂C.保证显微镜观察时细胞结构重叠少D.降低染色时间答案:C解析:过厚切片(>6μm)会导致细胞重叠,影响形态学观察;过薄(<2μm)易断裂且抗原保存差,3-5μm为最佳观察厚度。7.关于组织脱水的叙述,错误的是A.脱水剂浓度应梯度递增(70%→85%→95%→无水乙醇)B.脂肪组织需延长脱水时间C.胃镜小标本脱水时间可缩短至2-3小时D.脱水不彻底会导致透明时组织发白答案:B解析:脂肪组织含脂类多,乙醇穿透性差,需缩短脱水时间(避免过度收缩),或改用正丁醇等脂溶性脱水剂。8.瑞氏染色适用于A.骨髓涂片B.肾穿刺组织C.肝脏活检D.乳腺细针穿刺答案:A解析:瑞氏染色主要用于血液、骨髓等细胞悬液标本,通过酸性伊红和碱性亚甲蓝染色,显示血细胞形态。9.免疫组化结果判读时,“阳性细胞呈胞膜线性着色”提示A.细胞增殖标记(如Ki-67)B.膜抗原(如CD20)C.核抗原(如P53)D.胞质抗原(如CK)答案:B解析:CD20、HER2等膜表面抗原阳性表现为细胞膜线性或环状着色;核抗原为核内颗粒状,胞质抗原为胞质弥漫或颗粒状。10.关于组织包埋的注意事项,错误的是A.胃黏膜标本应垂直包埋(黏膜面向上)B.骨组织需脱钙后再包埋C.淋巴结应沿长轴平行包埋D.较大组织需分开包埋以保证切片完整性答案:A解析:胃黏膜、肠黏膜等表面结构标本应水平包埋(黏膜面与包埋盒底面平行),确保切片能显示黏膜全层结构;垂直包埋会导致黏膜层被切断。11.原位杂交(ISH)检测HPV时,常用的探针类型是A.双链DNA探针B.单链RNA探针C.寡核苷酸探针D.蛋白质探针答案:C解析:HPV检测多使用针对E6/E7基因的寡核苷酸探针,特异性高且穿透力强,适合石蜡切片检测。12.切片机刀片角度调整不当会导致A.切片褶皱B.切片出现平行刀痕C.切片厚度不均D.切片脱片答案:B解析:刀片角度过大(>5°)或过小会导致刀刃与组织接触不均匀,产生平行于切片方向的细刀痕;切片褶皱多因展片水温过高或组织过软。13.关于病理档案保存的要求,正确的是A.切片保存15年,蜡块保存30年B.切片和蜡块均永久保存C.电子病理资料保存10年D.外检申请单保存5年答案:B解析:根据《病理科建设与管理指南》,病理切片、蜡块、申请单等原始资料需永久保存;电子资料保存时间不低于30年。14.荧光原位杂交(FISH)实验中,杂交后洗涤的主要目的是A.去除未结合的探针B.增强荧光信号C.固定杂交复合物D.防止背景着色答案:A解析:洗涤步骤通过不同浓度SSC缓冲液洗脱未与靶序列结合的探针,减少非特异性信号,提高信噪比。15.关于组织透明的叙述,正确的是A.透明剂需与脱水剂(乙醇)互溶B.二甲苯透明时间越长越彻底C.脂肪组织可用氯仿代替二甲苯D.透明不充分会导致包埋时石蜡无法渗透答案:A解析:透明剂(如二甲苯)需与乙醇互溶,才能置换组织内的乙醇,为石蜡渗透做准备;透明过度会导致组织变脆,脂肪组织因脂溶性高,二甲苯透明时间应缩短。二、多项选择题(每题3分,共15分,少选得1分,错选不得分)1.影响组织固定效果的因素包括A.固定液类型B.组织体积(厚度)C.固定时间D.组织取材后至固定的时间间隔答案:ABCD解析:固定液渗透压、pH、穿透速度(如甲醛穿透速度约1mm/h),组织厚度(>5mm需切开),固定时间(一般6-24小时),以及取材后延迟固定(导致自溶)均影响固定效果。2.免疫组化质量控制应包括A.阳性对照(已知阳性组织)B.阴性对照(省略一抗)C.空白对照(不加任何抗体)D.内对照(组织内自身阳性细胞)答案:ABD解析:空白对照(不加一抗和二抗)无实际意义,常规质控包括阳性对照(验证试剂有效性)、阴性对照(排除非特异性结合)、内对照(如淋巴结内CD20阳性B细胞)。3.冰冻切片常见问题及处理方法正确的是A.切片破碎——降低冷冻温度B.切片皱缩——提高展片水温(45-50℃)C.冰晶过多——缩短组织冷冻前暴露时间D.组织发脆——减少冷冻时间(或提高冷冻温度至-18℃)答案:CD解析:切片破碎多因组织过硬(冷冻过度),应提高冷冻温度(-18~-22℃);切片皱缩因展片水温过低(<35℃),需调至38-42℃;冰晶过多因冷冻速度慢,应确保组织紧贴冷冻面快速降温;组织发脆因冷冻时间过长,需减少冷冻时间或降低冷冻强度。4.关于HE染色流程,正确的步骤是A.脱蜡:二甲苯Ⅰ(5min)→二甲苯Ⅱ(5min)B.复水:无水乙醇→95%乙醇→85%乙醇→70%乙醇(各2min)C.苏木素染色(5-10min)→自来水冲洗→盐酸酒精分化(数秒)→返蓝(温水或稀氨水)D.伊红染色(30s-2min)→梯度乙醇脱水→二甲苯透明→封片答案:ACD解析:复水应从高浓度到低浓度,即无水乙醇→95%乙醇→85%乙醇→70%乙醇(各1-2min),但实际操作中常简化为无水乙醇Ⅰ→无水乙醇Ⅱ→95%乙醇→85%乙醇→70%乙醇,避免直接从二甲苯到低浓度乙醇导致组织肿胀。5.病理技术室生物安全防护措施包括A.甲醛操作在通风橱内进行B.处理新鲜标本戴手套、护目镜C.废弃切片放入感染性废物袋D.高压蒸汽灭菌处理废弃蜡块答案:ABC解析:蜡块主要成分为石蜡,无生物活性,废弃蜡块可按一般固废处理;感染性废物(如未固定标本、血液污染的切片)需高压灭菌或化学消毒后处理。三、判断题(每题1分,共10分)1.胃黏膜活检标本应先放入10%中性福尔马林固定,再用滤纸展平防止卷曲。(×)解析:应先将黏膜面平铺于滤纸上,再放入固定液,避免固定后卷曲无法展平。2.免疫组化中,热修复(高压热修复)比酶消化更适用于大多数抗原的修复。(√)解析:热修复(EDTA或柠檬酸缓冲液)通过高温破坏蛋白交联,适用于90%以上抗原;酶消化(胰酶、蛋白酶K)主要用于被过度固定的抗原(如某些病毒抗原)。3.冰冻切片染色后,可用中性树胶封片。(×)解析:冰冻切片因未脱蜡,需用甘油明胶或水溶性封片剂,中性树胶(二甲苯溶剂)会溶解冰冻切片中的水分,导致细胞变形。4.组织脱水时,无水乙醇可重复使用至浑浊后更换。(×)解析:无水乙醇吸水后浓度降低,需定期检测(如用酒精计),低于99%时应更换,否则影响脱水效果。5.电子显微镜标本固定需在取材后30分钟内完成,组织块大小不超过1mm³。(√)解析:电镜标本对固定及时性要求高(避免超微结构破坏),组织块过大会导致固定液无法穿透中心区域。6.瑞氏染色时,染液与缓冲液比例为1:1,混合后覆盖涂片10-15min。(×)解析:瑞氏染色需先滴染液覆盖涂片1-2min(固定细胞),再滴等量缓冲液混合,染色5-8min,避免长时间染色导致背景过深。7.切片脱片的常见原因包括组织固定不足、载玻片防脱片处理不佳、烤片温度过高。(√)解析:固定不足导致组织与玻片结合力差;防脱片处理(如APES、多聚赖氨酸)失效;烤片温度过高(>70℃)导致组织收缩脱离玻片。8.骨组织脱钙完全的标志是用针刺骨组织无阻力。(√)解析:脱钙程度检测可通过针刺法(完全脱钙时易刺入)或X线法(无钙盐密度影)。9.免疫组化结果中,“阳性细胞数<1%”可报告为阴性。(√)解析:多数抗体判读标准中,阳性细胞数<1%视为阴性,需结合阳性对照判断是否为真阴性。10.病理技术记录应包括取材时间、固定液种类、脱水包埋参数、染色编号等,保存时间不少于30年。(√)解析:技术记录作为质量控制的关键环节,需长期保存以追溯问题。四、简答题(每题8分,共40分)1.简述石蜡切片制作的主要流程及各步骤关键注意事项。答案:主要流程:取材→固定→脱水→透明→浸蜡→包埋→切片→展片→烤片→染色→封片。关键注意事项:(1)取材:大小2×1.5×0.3cm,避免挤压;(2)固定:10%中性福尔马林(pH7.2-7.4),体积为组织5-10倍,时间6-24小时;(3)脱水:梯度乙醇(70%→85%→95%→无水乙醇Ⅰ→无水乙醇Ⅱ),每级30-60min(小标本缩短);(4)透明:二甲苯Ⅰ(15-20min)→二甲苯Ⅱ(10-15min),避免过度透明(组织变脆);(5)浸蜡:60℃石蜡(熔点56-58℃),2-3级(每级30-60min),确保石蜡渗透;(6)包埋:组织方向正确(如黏膜面平行包埋盒底),蜡温适宜(避免烫伤组织);(7)切片:厚度3-5μm,刀片角度3-5°,避免刀痕;(8)展片:水温38-42℃,避免褶皱;(9)烤片:60℃烤片30-60min(或45℃过夜),确保贴附牢固。2.列举5种免疫组化非特异性染色的原因及解决方法。答案:(1)内源性过氧化物酶:常见于血细胞、肝脏等,解决方法:3%H₂O₂孵育10min阻断;(2)内源性生物素:肝、肾组织,解决方法:使用生物素阻断试剂盒(avidin-biotin封闭);(3)抗体浓度过高:背景弥漫着色,解决方法:优化抗体稀释度(通过预实验确定);(4)血清封闭不充分:非特异性蛋白结合,解决方法:增加正常血清(与二抗同源)封闭时间(20-30min);(5)孵育时间过长:室温孵育超过1小时,解决方法:4℃冰箱孵育过夜(16-18小时),减少非特异性结合;(6)洗涤不彻底:缓冲液残留抗体,解决方法:PBS洗涤3次(每次5min),振荡洗涤。3.试述冰冻切片的质量要求及常见问题的原因分析。答案:质量要求:切片完整无破碎,厚度4-6μm,细胞结构清晰无冰晶,染色对比鲜明。常见问题及原因:(1)切片破碎:①组织过硬(冷冻过度,温度<-25℃);②组织含纤维成分多(如乳腺纤维腺瘤);③刀片钝或角度过大;(2)冰晶形成:①冷冻速度慢(组织未紧贴冷冻台);②组织含水量高(如脑、卵巢囊肿壁);③冷冻温度波动(冷冻台制冷不稳定);(3)切片皱缩:①展片水温过低(<35℃);②组织过软(如脂肪组织);③切片机推进速度过快;(4)染色模糊:①固定不充分(丙酮固定时间<10min);②染色时间不足(如HE染色苏木素<3min);③分化过度(盐酸酒精作用时间过长);(5)组织发脆:①冷冻时间过长(>5min);②组织含钙化灶(未脱钙直接冷冻);③冷冻温度过低(<-30℃)。4.简述病理技术质量控制的主要内容。答案:(1)标本接收:核对信息(姓名、标本类型、数量),记录送检时间,拒收不合格标本(如无标识、自溶严重);(2)取材制片:规范取材大小、固定液选择,定期校准切片机厚度(误差<0.5μm),监控脱水机温度(乙醇槽45℃,石蜡槽60℃);(3)染色质量:每日运行HE染色质控片(标准组织如扁桃体),记录染色评分(核蓝、质红、对比清晰);免疫组化每批检测带阳性/阴性对照,结果判读符合判读标准(如HER20-3+);(4)仪器设备:切片机每月维护(刀片更换记录),脱水机每季度校准温度/时间,烤片机温度误差≤2℃,冰箱温度监控(4℃±2℃,-20℃±5℃);(5)人员培训:定期考核切片厚度控制、染色操作、设备使用,新员工需通过技能认证(如切片合格率>95%);(6)记录追溯:保存技术记录(取材时间、固定液批号、染色编号、仪器参数),电子

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