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文档简介
1、DNA提取方法介绍,DNA提取的几种方法,基因组DNA提取,CTAB SDS法等,DNA提取的几种方法,非基因组DNA提取,质粒DNA提取,碱溶煮沸,线粒体和叶绿体DNA提取,差速离心结合SDS裂解,基因组DNA CTA等。CTAB法(植物DNA提取的经典方法)的原理是CTAB(十六烷基三甲基溴化铵),它是一种阳离子洗涤剂,能溶解细胞膜并与核酸形成复合物。它具有从低离子强度的溶液中沉淀核酸和酸性多糖的特点。在这种情况下,蛋白质和中性多糖保留在溶液中。该复合物可溶于高盐溶液(0.7摩尔/升氯化钠),核酸可通过有机溶剂提取分离,除去蛋白质、多糖和酚类等杂质,然后加入乙醇沉淀。注意:十六烷基三甲基溴
2、化铵溶液在低于15时会沉淀,因此在加入到冷的植物原料中之前必须预热,离心时温度不应低于15。5,经典配方5,CTAB萃取缓冲液,Tris-HCl (pH8.0)提供缓冲环境,防止核酸被破坏;乙二胺四乙酸螯合Mg2或Mn2离子并抑制脱氧核糖核酸酶活性。氯化钠为DNP(脱氧核糖核蛋白)提供了高盐环境。CTAB溶解细胞膜并结合核酸,这使得核酸易于分离。-巯基乙醇是一种抗氧化剂,能有效防止苯酚氧化成醌,避免褐变,并使苯酚易于去除。基因组DNA CTAB法。十六烷基三甲基溴化铵(CTAB)萃取缓冲液的改进配方,聚乙烯吡咯烷酮(PVP)是一种酚的络合物,它能与多酚类物质形成不溶性络合物,有效地去除多酚类物
3、质,减少酚对DNA的污染;同时,它可以与多糖结合,有效去除多糖。基因组DNA CTAB法。聚乙烯吡咯烷酮(PVP),PVP按其平均分子量分为四个等级,通常用K值表示,不同的K值代表相应的聚乙烯吡咯烷酮的平均分子量范围。K值实际上是与聚乙烯吡咯烷酮水溶液相对粘度相关的特征值,粘度是与聚合物分子量相关的物理量,因此K值可以用来表征聚乙烯吡咯烷酮的平均分子量。通常,k值越高,粘度越高,附着力越强。在研磨过程中,加入聚乙烯吡咯烷酮,其中的一氧化碳氮基团有很强的能力结合多酚,这减少了从源头氧化酚类的机会。同时,在提取物中加入还原剂巯基乙醇,可以破坏多酚氧化酶中的二硫键,使多酚不易氧化,然后通过提取去除。
4、8,CTAB法流程图,植物材料,裂解物,上清液溶液,液氮研磨,提取,细胞裂解,干燥和溶解,离心洗涤,醇沉,DNA溶液,基因组DNA CTAB法,9,SDS法原理,基因组DNASDS法,SDS是一种阴离子洗涤剂增加盐的浓度(KAc或NH4Ac)和降低温度(冰浴)以沉淀蛋白质和多糖杂质,并在离心后除去沉淀物;用苯酚/氯仿提取上清液中的脱氧核糖核酸,重复提取后用乙醇沉淀水相中的脱氧核糖核酸。十二烷基硫酸钠脱氧核糖核酸提取缓冲液,10,2.65水浴60分钟,其间缓慢摇动几次。3.加入150微升5毫升/升LKac,混合均匀,冰浴约15分钟。11,SDS法流程图(以动物组织为例),SDS法基因组DNA,1
5、2,其他方法的基因组DNA,物理方法:玻璃珠法,超声波法,研磨法,冻融法化学方法:异硫氰酸胍法,碱裂解法生物方法:根据不同的细胞裂解方法:13,其他方法的基因组DNA,吸附材料结合法:根据不同的核酸分离纯化方法:硅胶材料阴离子交换树脂磁珠,高盐低酸碱度结合核酸,低盐高酸碱度洗脱。快速高效。低盐高酸碱度结合核酸,高盐低酸碱度洗脱。它适用于高纯度要求的实验。磁性粒子上不同的基团可以吸附不同的物体,从而达到分离的目的。基因组DNA的其他方法,浓缩盐法:有机溶剂萃取法:密度梯度离心法:RNP和DNP因其在盐溶液中的溶解度不同而被分离,有机溶剂作为蛋白质变性剂,同时抑制核酸酶的降解,不同的内容物根据不同
6、的内容物密度不同的原理被分离。15、质粒DNA碱裂解法,碱裂解法的原理是,染色体DNA大于质粒DNA分子。当DNA溶液用碱处理时,线性染色体DNA容易变性,共价闭合的质粒DNA回到中性pH时,恢复其自然构象;变性的染色体DNA片段与变性的蛋白质和细胞片段结合形成沉淀,而复性的超螺旋质粒DNA分子以溶解状态存在于液相中,因此它们可以通过离心分离。16,质粒DNA的碱裂解,碱裂解的流程图,对数期细菌,溶液三的中和,溶液一的完全再悬浮,溶液二的裂解,上清液,提取,离心洗涤,醇沉淀,干溶解,沉淀,质粒DNA溶液,17,SDS碱裂解提取质粒DNA中溶液1的成分和功能,乙二胺四乙酸抑制DNA酶活性。在该步
7、骤中,还可以将核糖核酸酶加入到溶液中,不受乙二胺四乙酸的影响,并且可以在随后的步骤中去除。0.2M氢氧化钠/1%十二烷基硫酸钠溶液主要是碱,而不是十二烷基硫酸钠,所以称之为碱提取。溶液3M醋酸钾/2M醋酸钾代替十二烷基磺酸钠中的钠,得到十二烷基磺酸钾沉淀;SDS容易与蛋白质结合,平均两个氨基酸与一个SDS分子结合。钾离子和钠离子置换产生的大量沉淀将自然沉淀大多数蛋白质,同时,基因组DNA也将被PDS共沉淀。18、质粒DNA沸腾法,沸腾法原理,染色体DNA比质粒DNA分子大得多,而染色体DNA是线性分子,而质粒DNA是共价闭合的环状分子;当DNA溶液加热时,线性染色体DNA容易变性,而共价闭环质
8、粒DNA在冷却时恢复其自然构象;变性的染色体DNA片段与变性的蛋白质和细胞片段结合形成沉淀,而复性的超螺旋质粒DNA分子以溶解状态存在于液相中,因此它们可以通过离心分离。19,细胞器DNA的差速离心,差速离心的原理,是一种利用物质的不同比重来分离混合物的方法。将待分离的物质置于均匀介质(蔗糖)中,以一定速度离心,比重较高的物质优先沉降,而比重较低的物质在上层,从而被分离。线粒体和叶绿体是生物体中的半自主细胞器,它们可以自己编码蛋白质。它们的比重和大小是恒定的,因此在相同的离心场中沉降速度也是恒定的。根据这一原理,细胞中的各种成分以不同的速度离心分离。20,脱氧核糖核酸提取的基本步骤,一,材料制
9、备二。细胞破裂或胶囊内容物释放。核酸分离和纯化。核酸的沉淀或吸附以及杂质的去除v .溶于适量缓冲液或水中的核酸。材料制备,优选使用新鲜材料,低温保存的样品材料不应反复冷冻和解冻以提取血液基因组DNA。选择有核细胞(白细胞)进行组织培养时,细胞培养时间不宜过长,否则会导致DNA降解。含病毒的液体物质DNA含量较少,因此在提取前应进行富集,提取基因组DNA、提取质粒DNA,在对数生长期使用新鲜细菌时应增加筛选压力(老化细菌导致开环质粒增加),否则细菌容易污染,质粒容易丢失。尝试选择高拷贝质粒。如果是低拷贝或大质粒,应增加细菌数量,不应频繁转移菌株(质粒丢失)。22、严格质粒和松散质粒。根据复制特性
10、,质粒可分为两类:一类是严格质粒,当一个细胞的染色体复制一次时,质粒复制一次,只有12个质粒一般来说,大分子量质粒属于严格型。分子量较小的质粒属于松弛型。质粒的复制有时与其宿主细胞有关。一些质粒在大肠杆菌中复制紧密,而在变形杆菌中复制松散。细胞裂解时,材料应适当,过多会影响裂解,导致脱氧核糖核酸少,纯度低。根据不同的材料,选择合适的裂解预处理方法:植物材料研磨动物组织匀浆或研磨组织培养细胞蛋白酶K细菌溶菌酶破壁酵母酶或玻璃珠高温浴,定期轻轻摇动,提取基因组DNA,提取质粒DNA,将适量细菌的培养基完全去除,细菌在悬浮液中充分悬浮和变性的时间不要太长(5分钟),否则质粒容易被打断,复性时间也不要
11、太长,否则会有基因组DNA的污染。G菌和酵母质粒的提取应采用酶或机械方法进行破壁处理。24、核酸分离和纯化,当用吸附材料分离脱氧核糖核酸时,应提供相应的缓冲体系。当使用有机(苯酚/氯仿)萃取时,应充分混合。然而,当两相通过温和的离心分离时,应确保一定的速度和时间(猕猴桃提取,10,000转20分钟)。根据不同材料的特点,提取过程辅以相应的杂质去除方法、基因组DNA提取、质粒DNA提取、25、核酸分离纯化。蛋白质去除:苯酚/氯仿萃取物用变性剂(SDS、异硫氰酸胍等)处理。)和高盐洗涤蛋白酶。26。脱多糖:高盐法:用乙醇沉淀时,向待沉淀溶液中加入1/2体积的5M氯化钠,高盐能溶解多糖。多糖水解酶降
12、解多糖。在提取缓冲液中加入一定量的氯苯(1/2体积),氯苯可以与多糖的羟基反应,从而去除多糖。用聚乙二醇8000代替乙醇沉淀脱氧核糖核酸:在500升脱氧核糖核酸溶液中加入200升20%聚乙二醇8000(含1.2 M氯化钠),冰浴20min。核酸的分离和纯化,多酚的去除:添加试剂以防止酚类的氧化:巯基乙醇、抗坏血酸、半胱氨酸、二硫苏糖醇等。添加容易与酚类结合的试剂,如聚乙二醇和聚乙二醇,它们与酚类有很强的亲和力,可以防止酚类与脱氧核糖核酸结合。核酸的分离和纯化,盐离子的去除:70核酸的沉淀和溶解,当沉淀时间有限时,用预冷的乙醇或异丙醇进行沉淀,当沉淀更充分时加入1/10体积的NaAc(pH5.2
13、,3M),这有利于充分沉淀,然后用70%的乙醇洗涤除去盐离子和干燥的DNA。让乙醇完全挥发(不要过度干燥)。如果储存时间较长,建议用TE缓冲液将乙二胺四乙酸溶解在TE中,以螯合Mg2或Mn2离子,并抑制DNase的酸碱度至8.0,这样可以防止DNA的酸解、基因组DNA的提取、质粒DNA的提取、29、DNA中含有蛋白质、多糖、多酚等杂质,并且在溶解之前,还有酒精残留。酒精抑制随后的酶水解反应的脱氧核糖核酸中残留的金属离子,重新纯化脱氧核糖核酸,去除蛋白质、多糖、多酚等杂质。(见前面的方法),重新沉淀脱氧核糖核酸,并充分挥发乙醇,以增加70乙醇的洗涤次数(2-3次)。脱氧核糖核酸提取中的常见问题,
14、问题1:不纯的脱氧核糖核酸样品抑制随后的酶水解和聚合酶链反应。原因,对策,30,材料不新鲜或反复冻融不能很好地抑制内源核酸酶的活性。提取过程过于激烈,脱氧核糖核酸被机械中断,并被外源核酸酶污染。试着用新鲜的材料。低温保存材料,避免反复冻融。在液氮中研磨或匀浆组织后,应在解冻前加入裂解缓冲液。从富含内源核酸酶的物质中提取脱氧核糖核酸时,可以增加裂解液中螯合剂的含量。细胞裂解后的后续操作应尽可能温和。所有试剂应使用无菌水制备。消耗品应在高温下灭菌,并储存脱氧核糖核酸,对策,原因,31,实验材料较差或较少破碎或开裂,沉淀时DNA丢失,洗涤不完全,尽量选择新鲜(幼)的材料,动植物应匀浆并充分研磨;G菌和酵母在裂解前用生物酶或机械手段破碎时,时间应适当延长(对于动物细胞和细菌,可增加PK的量)。当沉淀时间延长,加入辅料促进沉淀洗涤时,最好用枪头吸出洗涤液,但不要倾倒。在脱氧核糖核酸提取中有一个共同的问题。问题3:提取的脱氧核糖核酸量很少。策略,原因。32,猕猴桃DNA提取实例,1。十六烷
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