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文档简介

1、微生物的分离与纯化,指导教师:王海丽,实验目的、要求,(1)学习并掌握细菌、放线菌、霉菌和酵母菌等四大类微生物的稀释分离、划线分离等技术。 (2)学习从样品中分离、纯化出所需菌株。 (3)了解四大类微生物的培养条件和培养时间。 (4)学习平板菌落计数法(下次实验)。 以细菌为例,实验原理,纯种分离技术是微生物学中重要的基本技术之一。分离:从混杂的微生物群体中获得单一菌株纯培养的方法。纯种(纯培养):一株菌种或一个培养物中所有的细胞或孢子都是由一个细胞分裂、繁殖而产生的后代。 微生物的分离与纯化技术的应用:分离具有特殊功能的微生物、优良菌种及纯化被污染的菌种等。 土壤是微生物的大本营,混杂着大量

2、的微生物,从中分离可得到只含有这一种微生物的纯培养。 稀释分离法有倾注法和涂布法两种;菌种被其他杂菌污染时或混合菌悬液常用划线法进行纯种分离。 要获得某种微生物的纯培养,还需提供有利于该微生物生长繁殖的最适培养基及培养条件。 微生物四大类菌的分离培养基、培养温度、培养时间详见实验指导书P67表格。细菌常用牛肉膏蛋白胨培养基,在30-37 温度下培养1-2天。 平板菌落计数活菌计数,0.9,0.1,0.9ml,分离纯化基本流程,实验仪器、材料,实验材料 菌源:土样10g; 培养基 牛肉膏蛋白胨培养基; 实验仪器与用具 1)超净工作台、恒温培养箱、酒精灯 2)1000ul及100ul移液枪、100

3、0ul及100ul枪头、无菌1.5ml的离心管、离心管架 3)无菌平皿、涂布棒、接种环 实验试剂:无菌水;,实验内容,1、采土样: 选择肥沃土壤,去表层土,挖520cm深度的土壤数10g,装入已灭菌的牛皮纸袋,封好袋口,带回实验室。 2、制备土壤稀释液: 称取土样1.0g,放入盛99ml无菌水的三角瓶中,置摇床振荡20min使土壤均匀分散成为土壤悬液(10-2)。用100ul移液枪从中吸取100ul土壤悬液,注入事先分装有900ul无菌水的离心管中,吹吸3次,振荡均匀(10-3)。然后同样方法,配置成稀释度为10-4,10-5的土壤菌悬液。,3、分离1)涂布法 用一支新的无菌枪头,由低浓度开始

4、,从各浓度土壤稀释液中各吸取100ul,对号较均匀地放入已写好稀释度的牛肉蛋白胨培养基平板上,用灼烧冷却后的无菌玻璃涂棒涂匀。每个浓度做3个平板(重复)。 2)倾注法 用一支新的无菌枪头,由低浓度开始,从各浓度土壤稀释液中各吸取100ul,对号较均匀地放入已写好稀释度的空白无菌平皿中,然后在各平皿中加入已经融化并冷却到45 -50的牛肉膏蛋白胨培养基(已灭菌)12-15ml,将培养皿在超净工作台面上轻轻转动,使稀释的菌悬液与融化的培养基混合均匀,直至培养基凝固。 注意:无菌操作;用枪头吸取菌悬液时注意“吹打数次”确保混匀。 4、培养 待平板上液体被完全吸收,将平板倒置于370C温箱中培养24h

5、;,5、菌落计数含菌样品的微生物经稀释分离培养后,每一个活菌细胞可在平板上繁殖形成一个肉眼可见的菌落,故可据平板上菌落的数目推算出每克含菌样品中所含的活菌总数(菌落形成数目)。 每克含菌样品中微生物的活细胞数(菌落形成数,CFU (同一稀释度平板上菌落平均数 10稀释倍数)/含菌样品克数,菌落计数规则: 选择平均菌落数在30300间的平板 1、只有一个稀释度符合,以该稀释度的平均菌落数乘以稀释倍数报告; 2、有两个稀释度符合,取决于二者比值(高稀释度的菌落数除以低稀释度的菌落数的值): 1)若0.5比值2,以两稀释度的菌落数乘稀释倍数所得的值的均值报告。 2)若2比值或比值 0.5,则取其中较

6、少的菌落总数进行报告。 3、若所有稀释度的菌落平均数均大于300,则按稀释倍数最高的平均菌落数乘以稀释倍数报告; 4、若所有稀释度的菌落平均数均小于30,则按稀释倍数最低的平均菌落数乘以稀释倍数报告; 所有菌落数均不在30300间 以最接近30或300的平均菌落数乘稀释倍数,6、挑菌划线分离 挑取单个菌落(细菌菌落),分别在平板上做分区和连续划线。 370C培养48h检查菌落是否单纯。 划线方法:详见实验指导书P72、P237 无菌操作( 近火焰处操作): 接种环灼烧灭菌、冷却 左手取涂布分离培养后平板 右手用接种环挑取涂布分离培养的平板中的目的单菌落 用已经粘有菌体的接种环 于另一新的空白平板中划线 分区划线法:灼烧、冷却、取菌 区1划线 灼烧、冷却 区2划线 区3划线 灼烧、冷却 区4划线 完毕、灼烧 连续划线法:灼烧、冷却、取菌 连续划线 完毕、灼烧,结果与讨论,计算含菌样品中的

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