标准解读

《GB 4789.36-2016 食品安全国家标准 食品微生物学检验 大肠埃希氏菌O157:H7/NM检验》与《GB/T 4789.36-2008 食品卫生微生物学检验 大肠埃希氏菌O157:H7/NM检验》相比,主要在以下几个方面有所不同:

  1. 标准性质的调整:从推荐性国家标准(GB/T)变更为强制性国家标准(GB),表明该标准从自愿采用转变为必须执行,体现了国家对食品安全控制的加强。

  2. 检验方法的更新:新版标准可能引入了更先进的检测技术和方法,以提高检测的准确性和灵敏度。例如,可能采用了分子生物学技术如实时荧光PCR等快速检测手段,替代或补充了原有的培养法,以加快检测速度并提升检测效率。

  3. 采样方案和限量要求:2016版标准可能根据最新的风险评估结果调整了采样计划和大肠埃希氏菌O157:H7/NM的限量标准,使之更加科学合理,更能反映当前食品安全的实际需求。

  4. 质量控制要求增强:新标准可能对实验室的质量控制体系提出了更严格的要求,包括但不限于增加了内部质控、外部质控的具体实施步骤,以及对实验环境、仪器设备校准、人员培训等方面的规定,以确保检验结果的可靠性和可追溯性。

  5. 适用范围或样品类型扩展:虽然两者均针对大肠埃希氏菌O157:H7/NM的检验,但新标准或许扩大了适用的食品类别范围,涵盖了更多类型的食品,反映了食品安全监管范围的拓宽。

  6. 术语定义和分类的明确:为适应科学进步和国际接轨,2016版标准可能对相关专业术语进行了修订或新增,使得标准内容更加清晰准确,便于理解和执行。

  7. 规范性引用文件的更新:随着科学技术的发展,新标准引用了最新的国内外相关标准和文献,确保检验方法和技术的先进性和国际一致性。


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  • 现行
  • 正在执行有效
  • 2016-12-23 颁布
  • 2017-06-23 实施
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GB 4789.36-2016 食品安全国家标准 食品微生物学检验 大肠埃希氏菌O157H7NM检验_第1页
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文档简介

016食品安全国家标准食品微生物学检验大肠埃希氏菌7/016 前 言本标准代替008食品卫生微生物学检验大肠埃希氏菌7/本标准与008相比,主要变化如下:标准名称修改为“食品安全国家标准食品微生物学检验大肠埃希氏菌7/修改了标准的范围;修改了设备和材料;修改了培养基和生化反应的文字描述;删除“第二法免疫磁珠捕获法的原理”;删除“第三法全自动酶联荧光免疫分析仪筛选法”;删除“第四法全自动病原菌检测系统筛选法”。0161 食品安全国家标准食品微生物学检验大肠埃希氏菌7/围本标准规定了食品中大肠埃希氏菌7/7/检验方法。本标准适用于食品中大肠埃希氏菌7/ 设备和材料除微生物实验室常规灭菌及培养设备外,其他设备和材料如下:温培养箱:361。箱:25。温水浴箱:461。平:质器。微镜:10倍100倍。菌吸管:110移液器及吸头。菌均质杯或无菌均质袋:容量500菌培养皿:直径90波紫外光灯:365率6W。量离心管:板、磁板架、样品混合器。生物鉴定系统。3 良n):良山梨醇麦康凯琼脂(糖铁琼脂(养琼脂:固体琼脂:桂基硫酸盐胰蛋白胨肉汤化酶试剂:兰氏染色液:碲酸钾(0162 孢克肟(肠埃希氏菌肠埃希氏菌定试剂盒。一法 常规培养法4 检验程序大肠埃希氏菌7/1 大肠埃希氏菌7/菌以无菌操作取检样25g(或25入到含有225拍击式均质器上连续均质1放入盛有225000r/0000r/61培养18h24h。0163 离取增菌后的线接种于61培养18h24h,观察菌落形态。在型菌落为圆形、光滑、较小的无色菌落,中心呈现较暗的灰褐色;在大肠埃希氏菌步生化试验在0个可疑菌落,分别接种时接种用大肠埃希氏菌株(阳性对照和大肠埃希氏菌7(阴性对照,于361培养18h24h。必要时进行氧化酶试验和革兰氏染色。在型菌株为斜面与底层均呈黄色,产气或不产气,不产生硫化氢(置肠埃希氏菌7/荧光。挑取可疑菌落,在营养琼脂平板上分纯,于361培养18h24h,并进行下列鉴定。清学试验在营养琼脂平板上挑取分纯的菌落,用于穿刺接种半固体琼脂,检查动力,经连续传代3次,动力试验均阴性,确定为无动力株。如使用不同公司生产的诊断血清或乳胶凝集试剂,应按照产品说明书进行。营养琼脂平板上挑取菌落,进行生化试验。大肠埃希氏菌7/1 大肠埃希氏菌7/2色)鸟氨酸脱羧酶阳性(紫色)纤维二糖发酵阴性棉子糖发酵阳性荧光)0164 选择生化鉴定试剂盒或微生物鉴定系统,应从营养琼脂平板上挑取菌落,用稀释液制备成浊度适当的菌悬液,使用生化鉴定试剂盒或微生物鉴定系统进行鉴定。力基因测定(可选项目)样品中检出大肠埃希氏菌7或需要进一步检测通过接种察细胞病变进行判定;也可使用基因探针检测或聚合酶链反应(法进行志贺毒素基因(使用试剂盒检测上述基因,应按照产品的说明书进行。6 结果报告综合生化和血清学试验结果,报告25g(或25品中检出或未检出大肠埃希氏菌7或大肠埃希氏菌M。第二法 免疫磁珠捕获法7 检验程序大肠埃希氏菌7/2 大肠埃希氏菌7/0165 8 按照生产商提供的使用说明进行免疫磁珠捕获与分离。当生产商的使用说明与下面的描述可能有偏差时,按生产商提供的使用说明进行。微量离心管按样品和质控菌株进行编号,每个样品使用1只微量离心管,然后插入到磁板架上。开盖器打开每个微量离心管的盖子, 取入到微量离心管中,盖上盖子,然后轻微振荡10s。每个样品更换1只加样吸头,质控菌株必须与样品分开进行,避免交叉污染。合:在1830环境中,将上述微量离心管连同磁板架放在样品混合器上转动或用手轻微转动10 捕获:将磁板插入到磁板架中浓缩磁珠。在3保悬液中与盖子上的免疫磁珠全部被收集起来。此时,在微量离心管壁中间明显可见圆形或椭圆形棕色聚集物。取上清液:取1支无菌加长吸管,从免疫磁珠聚集物对侧深入液面,轻轻吸走上清液。当吸到液面通过免疫磁珠聚集物时,应放慢速度,以确保免疫磁珠不被吸走。如吸取的上清液内含有磁珠,则应将其放回到微量离心管中,个样品换用1支无菌加长吸管。免疫磁珠的滑落:某些样品特别是那些富含脂肪的样品,其磁珠聚集物易于滑落到管底。在吸取上清液时,很难做到不丢失磁珠,在这种情况下,可保留50L100果在后续的洗涤过程中也这样做的话,脂肪的影响将减小,也可达到充分捕获的目的。涤:从磁板架上移走磁板,在每个微量离心管中加入1在样品混合器上转动或用手轻微转动3涤免疫磁珠混合物。疫磁珠悬浮:移走磁板,将免疫磁珠重新悬浮在1000 涂布平板:将免疫磁珠混匀,各取50后用无菌涂布棒将免疫磁珠涂布平板的一半,再用接种环划线接种平板的另一半。待琼脂表面水分完全吸收后,翻转平板,于361培养18h24h。注:若在361下干燥100布时避免将免疫磁珠涂布到平板的边缘。落识别大肠埃希氏菌7/0166 9 结果报告同第6章。0167 附 录 良n)0mg/法除新生霉素外,所有成分溶解在水中,加热煮沸,在2025装。于121高压灭菌15用。制备浓度为20mg/滤法除菌。待培养基温度冷至50以下时,按1000最终浓度为20。良山梨醇麦康凯(梨醇麦康凯(法除琼脂、结晶紫和中性红外,所有成分溶解在蒸馏水中,加热煮沸,在2025入琼脂、结晶紫和中性红,煮沸溶解,分装。于121高压灭菌15 0168 法将亚碲酸钾溶于水,过滤法除菌。孢克肟(法将头孢克肟溶解于95%乙醇中,静置1装试管,储存于有效期1年。解冻后的头孢克肟溶液不应再冻存,且在28下有效期14d。1的山梨醇麦康凯(脂,加入1,混匀后倾注平板。糖铁琼脂( 6法除酚红和琼脂外,将其他成分加于400沸溶解,在2025将琼脂加于600沸溶解。将上述两溶液混合均匀后,加入5%酚红水溶液5匀,分装小号试管,每管约212115成高层斜面。冷却后呈桔红色。如不立即使用,在28条件下可储存一个月。0169 法将各成分溶解于蒸馏水中,加热煮沸至完全溶解,装。于121高压灭菌15法将各成分溶解于蒸馏水中,加热煮沸至完全溶解,装小试管,于121高压灭菌15立凝固备用。桂基硫酸盐蛋白胨肉汤 2法将各成分溶解于蒸馏水中,加热煮沸至完全溶解,于2025装到带有倒管的试管中,每管10121高压灭菌1501610 分N,N,N,N法少量新鲜配制,于冰箱内避光保存,在7 试验方法用无菌棉拭子取单个菌落,滴加氧化酶试剂,10为氧化酶试验阳性。不变色者为氧化酶试验阴性。醇20法将结晶紫完全溶解于乙醇中,然后与草酸铵溶液混合。法将碘与碘化钾先行混合,加入蒸馏水少许充分振摇,待完全溶解后,再加蒸馏水至300 01611 法将沙

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