常用标本的采集及检查前后的护理ppt课件

常用标本的采集及检查前后的护理 目录 1、血标本采集 2、血培养标本采集 3、血气分析标本采集 4、尿标本采集 5、便标本采集 6、呼吸道标本采集 7、导管培养标本采集 一、血标本采集 （一）、评估和观察要点： 1、评估患者病情、意识及合作程度，空腹取血要了解是否空腹 2、评估穿刺部位皮肤，血管情况及肢体活动度。 （二）、操作要点： 1、取下采血管的同时立即将该采血管 轻轻颠倒混匀 5 8 次（ 抗凝血）， 使试管内预置的添加剂与血样充分混匀，但不可 剧烈摇晃以免造成标本溶血。 2、标本采集后应尽快送至实验室，若不能及时送检，已采集的 标本要按检验规定的贮存条件； 3、标本运送要注意防止标本外溢、蒸发和污染，用有盖容器采 集、运送标本 （带生物安全标识的运送箱） ； 4、采集的标本运送到实验室，要共同核对标本来源、标本属 性、检查项目、标本采集和运送是否合乎要求等，标本送出 人员和标本接收人员都要做认真的记录并签字存档。 5、检验科专人接收标本，不合格标本退回，运送工人条码扫描 入库， 只要入库的标本就可查寻（包括病人信息、检查项目、入库 时 间等） （三） 采血 注意事项 1. 空腹以应禁食 12小时 14小时采集标本（空腹以晚上 6 点至第二天早上 8点） 2. 避免剧烈运动 3. 采血前 4h勿喝茶或咖啡、勿吸烟喝酒。 4. 微生物培养最好在使用抗生素之前。 5. 若患者正在输液治疗，应从非输液侧采集。 6. 同时采集多种血标本时，根据采血管说明书要求依次采 集血标本。 7. 采血时尽可能缩短止血带的结扎时间。 8. 标本采集后尽快送检，送检过程中避免过度震荡。 常用采血管 最后一管应在 取下试管后 拔出采血针 ，以防血液 返流 正确贴条 形码 专用血气 采集针 标本不合格原因： 1.溶血； 2.凝血； 3.标本量不足； 4.空管； 5.抗凝剂 /血量比例错误； 6.乳糜血； 7.标本容器错误； 8.采样时间错误； 9.标本类型错误； 10.运输时间不合格； 11.运输条件不合格； 12.标本丢失或未收到； 13.标本容器损坏； 14.标本污染； 15.其它。 二：血培养标本采集 （一）、评估和观察要点： 1、评估患者病情、治疗、心理状态及合作程度， 2、评估穿刺部位皮肤，血管情况及肢体活动度， 3、了解寒战和发热的高峰时间， 4、了解抗生素使用情况。 （二）、操作要点： 1、注射器直接穿刺采血。 2、经外周穿刺的中心静脉导管取血：取 1支注射器抽 20ml0.9%NS备用，另备 2支注射器，连接 1支注射器，抽 5ml 血液弃去，如正在输液，先停止输液 20S，另接 1支注射器抽 足够的血标本。用 20ml0.9%NS脉冲式冲管，消毒导管口，清 除残留血迹。 常规血培养不宜从静脉导管或静脉留置装置中采集，检出污染或 定植菌的可能性较大。除非怀疑导管相关性血流感染，请参照 导管相关性血流感染的采血方法。 3、 3、成人每次采集 10-20ml，婴儿和儿童 1-5ml。采血量不足时应优 先保证需氧瓶，因临床 90以上的血流感染为需氧菌或兼性需 氧菌感染。 血培养物每增加一毫升，真性菌血症成年人微生物的检出率增 加 3。但并非越多越好，超过一定数量的采血量会稀释培养瓶 内的肉汤，使肉汤无法有效中和血中的抑制物质（补体、抗 体、抗生素）。所以血液与肉汤的最佳比例为 1： 4 1： 10 4、 用 75%酒精消毒血培养瓶橡皮塞子酒精消毒血培养瓶橡皮塞子 60秒。自然待干。将标本注秒。自然待干。将标本注 入培养瓶内。颠倒混匀标本与培养液，以避免血液凝集。入培养瓶内。颠倒混匀标本与培养液，以避免血液凝集。 （三） 采血 注意事项 1、血培养瓶应在室温下避光保存。 2、根据是否使用过抗生素，准备合适的需氧瓶和厌氧瓶。 3、尽可能在患者寒战或开始发热时采血 4、在患者接受抗生素治疗前采血。如患者已经应用抗菌药物进 行治疗，应在下一次用药之前采血培养 5、血标本注入厌氧菌培养瓶时，勿将注射器内空气注入瓶内。 6、 2次血培养采血时间至少间隔 1小时。 7、经外周穿刺的中心静脉导管取血时，每次至少采集 2套血标 本，其中一套从独立外周静脉采血。两套采血时间必须接近（ 小于 5分钟），并做好标记。 1、 血培养阳性率与体温 变 化的相关性不大 ，最重要的是 临 床 须 遵从 “用 药 前 ” 采血！ 2、在 使用抗生素之前采血，阳性率是用 药后采血的 2.2 倍 ！ 3、成人 “一套 ” 血培养应该包括需氧 瓶和厌氧瓶各一个，也叫 “一份 ”。 4、注意：一次穿刺采血，算 “一套 ”， 采集第二套应从另一个穿刺点获得。 5、儿童一般可只做需氧培养，但仍需 从多个部位采集多次。特殊患者必须考虑厌 氧培养。 三：血气分析标本采集 （一）、评估和观察要点： 1、评估患者体温、吸氧状况或患者呼吸机参数的设置， 2、评估穿刺部位皮肤，动脉搏动情况。 （二）、操作要点： 1、患者取坐位或卧位，暴露穿刺部位（选择桡动脉及股动脉）。 2、用血气专用针采血。 3、选择并消毒穿刺皮肤及操作者的食指、中指，以 2指固定动脉搏 动最明显处，持注射器在 2指间垂直或沿动脉走向呈 40角刺入 动脉，采血 1ml。 4、拔针后立即将针尖斜面刺入无菌橡皮塞。压迫穿刺点 5-10分 钟。 5、轻轻转动血气针，使血液与抗凝剂充分混匀，防止凝血。 （三） 采血 注意事项 1、洗澡、运动后休息 30分钟再采血。 2、标本应与空气隔绝，避免混入静脉血和气泡。 3、凝血功能障碍者穿刺后延长压迫时间至少 10分钟。 4、采集标本后 30分钟内送检。 四：尿标本采集 （一）、评估和观察要点： 1、排尿情况及配合程度。 2、女性患者是否在月经期，若在月经期，则不宜留取尿标本。 （二）、操作要点： 1、晨尿：晨起第一次尿液的中段尿放入清洁容器内。 2、尿定量检测：将规定时间内的尿液装入含防腐剂的洁净容器 内，混匀后记录总量，取 100-200ml送检。 3、尿胆原检测：以留取 14:00-16:00时间段的尿液为宜。 4、尿培养标本检测： （ 1）中段尿采集法：要求在膀胱内保留 4-6小时以上，用清水冲 洗会阴，用灭菌水冲洗尿道口。排尿，留中段 10ml于灭菌容 器内送检。 （ 2）尿管尿液采集法：尿储留患者导尿弃去前段，留取 10-15ml 于灭菌容器内送检。留置导尿患者先夹闭尿管 30S，消毒导尿管外 部及尿道口，用注射器从导尿管抽取尿液，防止带入消毒剂，长 期导尿者，应在更换导尿管后留取尿标本。 （三）注意事项 1、会阴部分泌物过多时，应先清洁或冲洗会阴后再留取。 2、避免经血、白带、精液、粪便或其他异物混入标本。 3、选择在抗生素使用前留取尿培养标本。 4、不能留取尿袋中的尿液送检。 5、留取尿标本前不宜过多饮水。 6、尿标本留取后要及时送检。 五：便标本采集 （一）、评估和观察要点： 1、评估患者病情、治疗、排便情况及配合程度。 2、女性患者是否在月经期。 （二）、操作要点： 1、自然排便后留取便标本。 2、采集标本时，应选取中央部分或有粘液、脓血部分。 3、检查蛲虫卵：清晨排便后由肛门周围拭取，立即镜检。 4、找寄生虫或虫卵计数：采集 24小时便。 5、便隐血试验：检查前 3天禁食肉类、肝类、并禁服铁剂。 6、检查阿米巴原虫，应在采集前用热水将容器加温，便后连同 容器一起送检。 （三）注意事项 1、灌肠后的粪便、粪便过稀混有甘油，不宜做为留检标本。 2、便标本应新鲜，不可混入尿液及其他杂物。 六：呼吸道标本采集 （一）、评估和观察要点： 1、评估患者年龄、病情、治疗、排痰情况及配合程度。 2、评估患者口腔黏膜有无异常。 3、观察痰液的颜色、性质、量、分层、气味、粘稠度及有无肉眼可见的异常物质等。 （二）、操作要点： 1、自行咳痰采集法：晨痰为佳，用冷开水漱口，深吸气后用力 咳出呼吸道深部痰液，标本量不少于 1ml，痰少者可用生理盐 水雾化后将痰咳出。 2、难于自然咳痰、不合作、人工辅助呼吸者：将患者取舒适卧 位，先叩击患者背部，然后将集痰器与吸引器连接，抽吸痰 液 2-5ml。 3、气管镜采集法：协助医生在气管镜检查下，直接采集标本。 4、咽拭子采集法：患者用清水漱口，取出无菌试子蘸取少量无 菌生理盐水，用压舌板轻压舌部，迅速擦拭患者口腔两侧腭 弓及咽、扁桃体的分泌物，避免咽拭子触及其他部位，迅速 吧把咽拭子插入无菌试管塞紧。 5、 24小时痰采集：在广口集痰瓶内加少量清水。患者起床后 进食前漱口后第一口痰开始留取，次日晨起床后进食前漱口 后第一口痰结束，全部留入集痰瓶内，记录痰标本总量、外 观和性质。 （三）注意事项 1、除 24小时痰外，痰标本收集时间应选择早上。 2、查痰培养及肿瘤细胞的标本应立即送检。 3、避免在进食后 2小时内留取咽拭子标本，以防呕吐，棉签不要 触及其他部位，以免影响检查结果。 七：导管培养标本采集 （一）、评估和观察要点： 1、评估患者病情、导管局部皮肤情况。 2、了解导管留置时间。 3、评估穿刺部位皮肤情况及肢体活动度。 （二）、操作要点： 1、采集血培养标本 2套，一套从可疑感染的导管采集，另一套 从独立外周静脉采集。 2、协助患者摆放体位，使导管穿刺点位置低于心脏水平。 3、缓慢移出导管，迅速按压穿刺点、检查导管尖端是否完整。