DNA和RNA的提取与纯化.ppt

第四章 基因工程的主要技术及其原理 第一节 DNA和RNA的提取与纯化 制备纯的高分子量的DNA 是基因工程操作的基础之一 一、DNA提取的基本原理与方法 化学性质比较稳定 潜在的反应基团隐藏在中央螺旋内，并经氢键紧密连接。它的 碱基对外侧受磷酸和糖形成的强大环层的保护，这种保护因内 在的碱基堆积力而进一步加强。 1. DNA的性质： 核苷 核苷酸 碱基 高分子质量DNA长而弯曲，仅具有极微的侧向稳定性，因 而容易受到最柔和的流体剪切力的伤害。双链DNA在溶液中随 机卷曲，并由于碱基堆积力和DNA骨架上磷酸基团间的静电排 斥力而变得黏滞。 由吸液，振荡，搅拌所导致的水流对黏滞的盘绕物产生拖 拉力，能切断DNA的双链。DNA分子越长，断裂所需的力越弱 。因此，基因组DNA容易成片段地获得，所需分子质量越大， 获得的难度也相应增加。 物理性质 2. 2. 天然天然DNADNA的来源和用途的来源和用途 n n 天然天然DNADNA包括染色体包括染色体DNA,DNA,病毒病毒DNA(DNA(噬菌体噬菌体 DNA),DNA),质粒质粒DNA,DNA,线粒体及叶绿体线粒体及叶绿体DNADNA等等, ,可从不可从不 同的生物体中提取同的生物体中提取. . 染色体DNA.原核和真核生物均含有染色体DNA. 其分子巨大,可长达106kb,小的也有1000kb左右.是生物界 含量最丰富的DNA资源,蕴藏着地球上极大部分的遗传信息. 是分离目的基因和基因表达调控因子的主要材料,也可提供 构建染色体载体和染色体基因整合平台系统之用. 病毒和噬菌体DNA. 含DNA的病毒和噬菌体的种类很多,能在相应的原核生物 和真核生物宿主细胞内大量增殖.由于此类DNA可被体外包 装,所以主要用于构建基因克隆载体,承载较大片段的外源 DNA,经体外包装,导入受体细胞.此类DNA也编码一些结构 基因,可作为分离目的基因和基因表达调控因子的材料. 质粒DNA 很多微生物细胞内含有质粒DNA,游离于细胞质中,所以被称 为染色体外遗传物质.每种质粒都有复制起始位点,能自我复制. 主要用于构建载体.也要用于分离目的基因和基因表达调控因 子. 线粒体和叶绿体DNA. 真核生物特有的染色体外遗传物质,分别含有与呼吸作用和 光合作用有关的基因.可用于分离目的基因及构建载体 不同生物（植物、动物、微生物）的基因组DNA的提取方 法有所不同; 不同种类或同一种类的不同组织因其细胞结构及 所含的成分不同，分离方法也有差异。在提取某种特殊组织的 DNA时必须参照文献和经验建立相应的提取方法， 以获得可 用的DNA大分子。 （一）DNA提取的基本原理 DNA分子是极性分子，溶于水，不溶于乙醇、氯仿等有机 溶剂，其钠盐比游离太更易溶于水。 酸性溶液中，DNA易水解，在中性或弱碱性溶液中较稳定。 生物细胞中大部分DNA集中在细胞核，多以脱氧核糖核蛋白 (DNP)形式存在。而DNP在盐溶液中的溶解度受盐溶液浓度 的显著影响，0.14 mol/L NaCl溶液中最低，仅为水中溶解度 的1%，浓度升高，溶解度增加，到1 mol/L时，比纯水高2倍 。而核糖核蛋白(RNP)在盐溶液中的溶解度受盐浓度的影响较 小，在0.14 mol/L NaCl的溶解度较大。据此，可分享DNP和 RNP. 一般DNA提取都分为两步，即先是温和或机制裂解细胞及 溶解DNA，接着采用几种化学和酶学方法中的任一种， 以去 除蛋白、RNA及其它的大分子。 1生物材料的准备 选用的材料应该是处于提取DNA得率最高的生长期,或者是 DNA容易提取和含量高的组织.对于细菌,一般取对数生长后期 .对于植物一般取幼嫩的植株,并且暗培养1-2天,甚至黄化苗. 提取动物肝脏DNA应清除胆囊,因其含有多种高活性酶. 2细胞的裂解和DNA的溶解 细胞不裂解,则DNA释放不出来.裂解不完全,得率就低.如果细胞裂 解过于激烈,会导致DNA的断裂.裂解方法因物种而异. 对于原核生物,可用溶菌酶处理.用NaOH,SDS,用煮沸及冰冻,超声 波处理等方法使细胞裂解. 对结构复杂的动植物材料要进行磨样(粉碎)。一般方法是将材料 放入研钵（放在冰中预冷），加入液氮，快速磨碎成粉状。然 后再参照裂解原核生物细胞的方法裂解细胞. 一般用SDS、CTAB、溶菌酶和蛋白酶K来裂解细胞。 所用缓冲液一般为TE（TrisC-HCl EDTA）缓冲液。 提取缓冲液：100mmol/L Tris Cl(pH8.0),50mmol/L EDTA (pH8.0),500mmol/L NaCl,10mmol/L 巯基乙醇。 在提取时，将10SDS加入缓冲液中于65预热一定时间。然 后加入到装有样品的离心管中，于65保温6090min。其间 轻轻摇动数次。 4下12000rpm离心10min,将上清转入另一离心管中,上清即为 DNA的粗提物。 正常条件下，由于细胞的区室化隔离，DNA酶，氧化酶等分布于特定 区隔中，不与DNA接触。细胞破碎，则容易导致DA N降解。 因此提取过程中对DNA 的保护显得非常重要。 措施： （）利用液氮超低温下研磨，减少损失。 （）快速加入缓冲液并迅速混匀，对细胞溶浆中DNA进行保护。 加入EDTA和抗氧化剂及PVP等 3核酸的纯化 主要根据核酸的性质,使其与细胞内其它成分分离开来, 从中进一步抽提DNA.（杂质的去除） 核酸通过有机溶剂抽提并进行纯化。污染的RNA通过 RNase消化清除。 在粗提物中加入等体积的氯仿异戊醇（或酚氯仿 异戊醇）轻轻颠倒混匀，12000rpm离心5min，上清液为 DNA的水溶液，根据需要，还可以重复这一步或用氯仿/异 戊醇颠倒混匀再离心. 此过程目的是用酚和氯仿去除蛋白质。 在提取DNA时有机溶剂的使用 酚和氯仿为非极性分子，水是极性分子，当蛋白水溶液与酚 和氯仿混合时，蛋白质分子之间的水分子就被酚或氯仿挤去 ，使蛋白失去水合状态而变性。经过离心，变性蛋白质的密 度比水的密度为大，因而与水相分离，沉淀在水相下面，从 而与溶解在水相中的DNA分开。而酚与氯仿有机溶剂比重更 大，保留在最下层。 作为表面变性的酚和氯仿，在去除蛋白质的作用中，各有 利弊. 酚的变性作用大，但酚与水相有一定程度的互溶，大约10 15的水溶解在酚相中，因而损失了这部分水相中的 DNA，而氯仿变性作用不如酚效果好，但氯仿与水不相混溶 ，不会带走DNA。所以在抽提过程中，混合使用酚与氯仿效 果最好。经酚第一次抽提后的水相中有残留的酚，由于酚与氯 仿是互溶的，可用氯仿第二次变性蛋白质，此时一起将酚带走 。也可以在第二次抽提时，将酚与氯仿混合使用。 在抽提DNA时，为了混合均匀，必须振荡容器数次，这时在 混合液内易产生气泡，气泡会阻止相互间的充分作用。加入 异戊醇能降低分子表面张力，所以能减少抽提过程中的泡沫 产生。一般采用氯仿与异戊醇之比为24：1，也可采用酚、 氯仿与异戊醇之比为25：24：1（不必先配制，可在临用前 把一份酚加一份24：1的氯仿与异戊醇即成），同时异戊醇 有助于分相，使离心后的上层水相，中层变性蛋白相以及下 层有机溶剂相维持稳定。 酚的平衡和饱和 酚的饱和： 因为酚与水有一定的互溶，苯酚用水饱和的目 的是使其在抽提DNA过程中，不致吸收样品中含有DNA的 水分，减少DNA的损失。用Tris 调节其PH值到8.0称为酚的 平衡，其原因是DNA分子在此条件下，比较稳定。 4 沉淀DNA 用无水乙醇（异丙醇）沉淀DNA， 这是实验中最常用的方法 。 具体方法是将上面所提的上清液加入2倍体积的无水乙醇和0.2 -0.4 mol/L的NaCl，颠倒混匀，冰冻30min. 可以观察到絮状的沉 淀,即为DNA，经离心，除去上清液。 DNA溶液是DNA以水合状态存在，当加入乙醇时，乙醇会夺 去DNA周围的水分子，使DNA失水而易于聚合。一般实验中， 是加2倍体积的无水乙醇与DNA相混合，其乙醇的最终含量占67 左右。也可改用95乙醇来替代无水乙醇（价格考虑）。 在PH为8左右的DNA溶液中，DNA分子是带负电荷的，加 一定浓度的NaAc或NaCL,使Na离子中和DNA分子上的负电荷, 减少DNA分子之间的同性电荷相斥力, 易于互相聚合而形成 DNA钠盐沉淀。当加入盐溶液浓度太低时，只有部分DNA形 成DNA钠盐而聚合，这样就造成DNA沉淀不完全，当加入的 盐溶液浓度太高时，其效果也不好，因为过多的盐杂质杂在 ，影响DNA的酶切等后续反应。 5 DNA的溶解和贮存 回收的DNA沉淀在溶解以前须在实验台上敞口放置一段时 间，使残余的乙醇挥发掉（或真空抽干），然后加入适当体 积的TE缓冲液，使DNA溶解。DNA的TE溶液贮存于超低温 冰箱（长时间）或20冰箱。 (二 )DNA提取的几种方法 根据细胞破碎后，分离DNA 与蛋白质所采用的技术策略 不同，可分为以下几种： 1浓盐法 原理：RNP和DNA在电解溶液中溶解度不同，从而分离。 方法：用1mol/L NaCl抽提，得到的DNP黏液中加入含有 少量辛醇的氯仿一起揺荡，使之乳化，再离心，使蛋白质 凝胶停留在水相及氯仿相中间，而DNA 位于上层水相中。 回收水相，用2倍体积95% 乙醇可将DNA 钠盐沉淀出来。 2.SDS法 细胞破碎后，加入SDS使细胞膜裂解，并同时使蛋白 质变性，将蛋白质和多糖等杂质与DNA 分开，加入 乙酸钾，可使SDS-蛋白质复合物转变成溶解度更小的 钾盐形式，沉淀更加完全。 3.CTAB法 细胞破碎后，加入CTAB分离缓冲液，将DNA 溶解出来 再经氯仿异戊醇抽提，除去蛋白，得到DNA 4.苯酚抽提法 苯酚作为蛋白变性剂，同时可抑制DNA 酶的降解作用。 苯酚处理后，蛋白质分子溶于酚相，而DNA 溶于水相， 离心分层后取出水层，多次重复操作，再合并水相，用 乙醇沉淀DNA. 5.水抽提法 利用核酸溶解于水的性质，将组织细胞破碎后，用低盐 溶液除去RNA,然后将沉淀溶于水中，使DNA 充分溶解 于水中，离心后收集上清液，在上清中加入NaCl调节至 2.6 mol/L，加入2倍体积的95%乙醇，立即用搅拌法搅出 ，然后用不同浓度的乙醇洗涤。空气干燥。 有多种从细菌中提纯质粒DNA的方法，无一例外都包括以下 三个步骤： 培养细菌 氯霉素的加入 收集和裂解 离心 寄主细胞裂解：可采用非离子型或离子型去污剂，有机溶剂 或碱处理及加热处理等。根据质粒大小、菌株和裂解后用于 纯化质粒DNA的技术，采用不同的方法。 用溶菌酶或十二烷基硫酸钠（） ( (三）质粒的提取三）质粒的提取 质粒的提取是基因工程研究中经常性的工作。 纯化质粒DNA 染色体分子以高分子量的形式释放，可用高 速度心方法除去得到清裂解液。但仍然会含有相当 数量的片段化的染色体分子。因此必须进行 纯化。 铯是铯是5555号元素，由号元素，由Wihelm BunsenWihelm Bunsen于于18551855年发现。由于铯原子很年发现。由于铯原子很 重，重，CsClCsCl的浓缩液在高速离心数小时后即可形成密度梯度。大分的浓缩液在高速离心数小时后即可形成密度梯度。大分 子物质的浮力密度如与密度梯度中某一位置的子物质的浮力密度如与密度梯度中某一位置的CsClCsCl浓度相符，大浓度相符，大 分子物质就会准确地漂浮在这一位置上分子物质就会准确地漂浮在这一位置上. . 离心管中离心管中CsClCsCl起始溶液的密度通常要进行调整起始溶液的密度通常要进行调整, ,使其与有待研究的使其与有待研究的 分子或颗粒的密度相对应。分子或颗粒的密度相对应。 如多数双链线状如多数双链线状DNADNA分子的浮力密度约为分子的浮力密度约为1.70g/ml,1.70g/ml,形成梯度形成梯度 的的CsClCsCl溶液的起始密度应为溶液的起始密度应为1.70g/ml1.70g/ml 1氯化铯密度梯度离心法 细胞裂解及分离过程中，大分子量的细菌染色体 容易发生断裂形成相应的线性片段，而质粒 则由于其分子量较少，结构紧密，所以仍保持完 整状态。根据此差别进行密度梯度离心纯化。 利用在浓缩的盐溶液中，溴化乙锭（EB)扁平分子在 碱基对之间的嵌入作用。 染色体分子线性片段具有游离的末端而易于解旋 ，可结合大量的EB分子。而质粒的共价闭合环状的 分子，由于没有游离末端，只能发生有限的解旋反 应，结合分子的数量少。分子结合数量越 多，则密度越小。密度梯度离心后，处于不同的位置，从 而达到纯化质粒之目的。 2碱变性抽提法 染色体DNA为线性DNA分子，质粒DNA为超螺旋共价闭合环状 DNA. 根据共价闭合环状质粒与线性染色体片段之间 在拓扑学的差异而发展出来的。 通过加热，尤其在pH值介于12.0-12.5这个狭窄范围内，线性的 会被变性，而cccDNA则不会变性。 即根据染色体DNA与质粒DNA的变性与复性的差异而达 到分离目的。 变性处理过的质粒和染色体混合物，通过致冷或恢复 中性pH，便会迅速地复性。在复性过程中，两种构型的分子， 其双链再结合的精确性有本质上的差别，所以复性快而准确。 而随机断裂产生的线性的染色体分子，彼此已经分离开 来的互补链之间的复性作用就不会迅速。常聚集成网状结构， 通过离心分离便会与变性的蛋白质及一道沉淀下来。从 而分离。 碱变性法一般要用到三种溶液即: 溶液I，50 mM葡萄糖 /25 mM Tris-Cl / 10 mM EDTA，pH 8.0； 葡萄糖最大的好处只是悬浮后的大肠杆菌不会快速沉积到管子的底部 EDTA，是要把大肠杆菌细胞中的所有二价金属离子都螯合掉 . Tris-Cl 控制溶液的pH 溶液II，新鲜的0.4 N的NaOH和1的SDS等体积混合 ； 新鲜的NaOH,是为了保证NaOH没有吸收空气中的CO2而减弱了碱性 这一步要注意: 第一，时间不能过长，千万不要这时候去接电话，因为在这样的碱性条件下基因组 DNA片断会慢慢断裂； 第二，必须温柔混合，不然基因组DNA也会断裂。基因组DNA的断裂会带来麻烦. 这其实是十二烷基硫酸钠（sodium dodecyl sulfate）遇 到钾离子后变成了十二烷基硫酸钾（potassium dodecylsulfate,PDS），而PDS是水不溶的，因此发生 了沉淀. SDS专门和蛋白质结合，平均两个氨基酸上结 合一个SDS分子，钾钠离子置换所产生的大量沉淀自然 就将绝大部分蛋白质沉淀了，同时大肠杆菌的基因组 DNA也一起被共沉淀了。 2M的醋酸是为了中和NaOH，因为长时间的碱性条件会 打断DNA，所以要中和之。基因组DNA一旦发生断裂 ，只要是50100 kb大小的片断，就没有办法再被PDS 共沉淀了 . 溶液III，3M 醋酸钾 / 2 M 醋酸。 溶液III加入后就会有大量的沉淀 . 3影响质粒产量的因素 1.寄主菌株的遗传背景 使用endA基因突变的菌株，失去了合成具有功能活性的 核酸内切酶能力，从而增进所含有的质粒分子 的稳定性。 2.质粒的拷贝数及分子大小 理论产量=质粒拷贝数*分子量大小 *每亳升培养液中的大肠杆菌细胞总 数 RNA性质与结构 核糖核酸。 因为核糖残基在2 带有羟基, 所 以RNA比DNA的化学性质活跃, 易被污染的RNA酶（具有水解 核糖残基和磷酸二酯键能力的 酶）切割。 二、 RNA提取的基本原理与方法 （一）总RNA提取的原理与方法 1.总RNA提取的原理 (1) 单链状，但许多区 域可自身进行碱基配对 ，形成回折。 (2) 碱基配对规则：A-U，G-C，不能配对 区域形成突起。 (3) RNA分子比DNA分子小得多，一般含几 十至几千个核苷酸 核苷酸之间的连结方 式：3,5-磷酸二酯 键 提取RNA 的关键 分离纯化完整的mRNAS是进行分子克隆和基因表达分析 的基础，真核生物RNA分子方要分布于细胞质和核仁，其中 mRNA占总RNA的1-5%，分子量大小不一，多数与蛋白质结 合成核蛋白体的形式存在。 能否成功地提取真核生物的RNA,关键在于能否完全抑制或 除去RNA酶活性，分离获得全长RNA。 RNARNA酶的特点酶的特点 (1)RNA酶的稳定性 由于RNA酶链内二硫键的存在，使许多RNA酶可抵抗长 时间煮沸和温和变性剂，变性的RNA酶可迅速重新折叠。所 以RNA酶很稳定。 (2)RNA酶分布的广泛性 RNA酶是所有生物生存所必须的酶.玻璃器皿、操作平台 、以及浮尘中,人类的身体表面都有。 (3)RNA酶的活性 和大多数DNA酶不同，RNA酶不需要二价阳离子 激活，因此难以被缓冲溶液中加入的EDTA或其他金 属离子螯合剂失活。 所以在提取RNA时，防止RNA酶的降解是最重要 的环节。防止RNA酶的最好办法就是在第一步即避免 污染。 外源性的RNA酶通常有两个来源： （1）被污染的缓冲液：由于粗心的无菌操作，使缓冲液被 细菌或其他的微生物污染。不能通过高压灭菌而除去，被污染 的溶液或怀疑可能污染的溶液必须丢弃。 （2）移液装置：如果自动移液器以前被用来分配含有RNA 酶的溶液，那么使用一次性没有RNA酶的移液器头已经没有意 义。如果移液器枪管或金属枪栓与试管的边缘接触，它就成了 非常有效的散布RNA酶的载体。 进行RNA操作时，为了防止RNA酶，所采取的措施 包括： （1）仪器和缓冲液专用，如移液器，电泳槽、玻璃器皿、塑 料制品和缓冲液。对于移液器，用声誉好的厂家证明无RNA 酶的一次性移液器枪头和微量离心管。为了减少污染的机会 ，当从原包装取出这些小的器具放到实验室架子上时最好用 无菌的镊子。所用的溶液以及玻璃器皿以及电泳装置等都要 用RNA酶抑制剂进行处理。 （2）在分离RNA的过程中，用抑制剂以抑制RNA酶的活性。 RNARNA酶的抑制剂类型酶的抑制剂类型 焦碳酸二乙酯（DEPC） 是一种高活性的烷化剂，通过组胺基团的乙氧基甲酸化形式 破坏RNA酶的活性。用来灭活缓冲液和玻璃器皿中的RNA 酶。 氧钒核糖核苷复合物 能与多种RNA酶活性位点结合并几乎百分之百地抑制 RNA酶的活性。因为该复合物不能共价修饰RNA酶，因此 在提取纯化RNA的各个步骤中都必须应用。由于该复合物 强烈抑制RNA聚合酶和RNA在体外的翻译，因此必须用 0.1%的羟基喹啉的苯酚多次抽提以从最终产物中除去。 RNA酶的蛋白质抑制剂 这类蛋白质可以与RNA酶非共价的结合，形成复合物从而 使RNA酶失活。 不同商家出售的商业名称不同，如RNAsin,Promega,Prime Inhibitor,5 Prime3 Primer等。由于它们不能在变性剂如SDS 和胍存在时使用，所以在裂解细胞时，不能加此类蛋白。但 在随后的纯化RNA的所有步骤中均可使用。由于可以被抽提 用的苯酚除去，所以在纯化过程中需补充几次抑制剂。 提取RNA的关键点： 细胞的有效破碎 使核蛋白复合体充分变性，解离，使核酸释放到溶液中。 有效的抑制RNA酶的活性 将RNA和DNA、蛋白质和多糖分开。 方法： （）先提总核酸，然后用氯化锂将RNA沉淀出来。 （）直接在酸性条件下酚氯仿混合液抽提，低pH的酚将 使RNA进入水相，使其与仍留在有机相中的蛋白质和DNA分开。 水相中的RNA分子用异丙醇沉淀浓缩，然后复溶于异硫氰酸胍 溶液中，再用异丙醇进行二次沉淀，随后用乙醇洗涤沉淀， 即可去除所有残留的蛋白质与无机盐。 RNA的贮存 用去离子甲酰胺溶解并贮存于20。 2. 总RNA的提取方法 酚异硫氰酸胍(GIT)提取法 原理如下：GIT与巯基乙醇共同作用抑制RNase的 活性；GIT与 十二烷基肌氨酸钠 （Sarcosyl）作用使蛋白 质变性，从而释放RNA；酸性条件下DNA极少发生解离 ，同蛋白质一起变性被离心下来，RNA则溶于上清中。 该法所提RNA纯度高,完整性好较适合纯化mRNA，逆转 录及构建cDNA文库，因此为大多数人采用。与氯化铯方 法比较，虽然纯度稍差一些，小分子RNA，如tRNA、 snRNA不易去除，但产量高完整性好，盐易去除。 离心分离法 利用RNA吸附硅胶或玻璃质离心管代替有同溶剂提取 步骤，可避免有机溶剂的损伤。如Qiagen公司开发设计 的试剂 盒 . （二）mRNA的提取 1、RNA的种类及其结构 tRNA分子 功能：tRNA：转运RNA，负责运送氨基酸 tRNA分子 特点： v数百种，分子量小，只有73-93个核苷酸组成 ，主要特点为含稀有核苷。 vv有较多的修饰成分有较多的修饰成分 vA-U，G-C碱基对双螺旋 区为臂，其它区域为环 。四臂四环。 v3端都为CCA，用以接 受氨基酸，叫叶柄； 5端都为pG v 有十几个恒定的核苷酸 ，对于维持其空间结构 和实现生物功能起重要 作用 tRNA分子 vA-U，G-C碱基对双螺旋 区为臂，其它区域为环 。四臂四环。 v3端都为CCA，用以接 受氨基酸，叫叶柄； 5端都为pG vv 有较多的修饰成分有较多的修饰成分 tRNA分子 vv 反密码环由反密码环由7 7个核苷酸个核苷酸 组成，有组成，有3 3个反密码子个反密码子 v可变环，由3-18核苷 酸组成 v二氢尿嘧啶(D环) tRNA分子 vTC(为假尿苷) 3、tRNA的三级结构 倒L型：一端是CCA，另一端是反密码子环。 二级结构：三叶草形 四环 二氢尿嘧啶环（D环）、反密码环、额外环、TC环 四臂 氨基酸臂、二氢尿嘧啶臂、反密码臂、TC臂 结构为行 使功能提 供基础 tRNA分子 rRNA分子 核糖体核糖体rRNArRNA 原核生原核生 物物 70S70S 30S30S 16S16S 50S50S 23S23S、5S5S 真核生真核生 物物 80S80S 40S40S 18S18S 60S60S 28S28S、5S5S、5.8S5.8S v占细胞内总RNA的80左右，由120-5000个核苷酸组成 ，但种类很少，只有3-4种。 rRNA分子结构特点 v与蛋白质结合，组成大小亚基。 v具有酶功能，如核酶。 v合成蛋白质的场所。 v二级结构可形成茎环结构。 也呈茎 环结构 大肠杆菌 5S rRNA 的二级结构模型 rRNA分子 大肠杆菌 5S rRNA 的三级结构模型 rRNA分子 mRNA分子 原核生物和真核生物的原核生物和真核生物的mRNAmRNA在结构上有所不同：在结构上有所不同： 1) 原核生物的mRNA是多顺反子的，真核生物的 mRNA是单顺反子的； 2) 原核mRNA 5端无帽子结构，真核mRNA 5端 有一段帽子结构（m7GpppNmpNmp-）； 3) 原核mRNA 3端无PolyA，真核mRNA 3端有 PolyA。 mRNA分子 v含量少，单链分子大小不一，也能形成茎环结构。 vmRNA是蛋白质生物合成的模板。 v每一种蛋白质都有对应的mRNA，种类多。 2、真核生物mRNA的分离 （1)得到总RNA后，可用oligo(dT)-纤维素层析法提取 mRNApoly(A)+RNA . 其原理是大多数真核mRNA 3端带有足够长的多聚腺苷 酸残基，可通过其与挂有寡聚d(T)的纤维素亲和形成稳 定的RNADNA杂合链，不含polyA的RNA从介质中洗 去后，应用低盐缓冲液解离双链结构，并从介质中洗脱 poly(A)+RNA, 从而使mRNA得以纯化。这些相异的 mRNA分子合起来，实际上编码了细胞内所有的多肽。 有柱层析的方法和批量层析两种。 （2)提取mRNA的另一种方法是包被抗生素蛋白链菌素的 聚乙烯磁珠法 其优点是可以直接从含异硫氰胍的裂解液中分离mRNA。 在典型的实验中，组织、细胞或细胞悬液用硫氰胍裂解， 将带生物素的oligo（dT）引物直接加入裂解液，放置一段时 间，使引物与细胞mRNA poly(A)尾杂交，然后加入交联抗 生素蛋白链菌素的磁珠。抗生素蛋白链菌素抓住带生物素的 oligo(dT)+复合物，使它们附于磁珠上，然后用磁体将磁珠从 裂解液中回收，以便用高盐溶液洗涤磁珠。最后，用水将 poly(A)+mRNA 从磁珠上洗脱，用乙醇沉淀收集。用磁珠法 获得的poly(A)+mRNA与传统的oligo(dT)-纤维素层析相当或 更多。 最大的优点是操作快，配体结合仅需几分钟，磁力分离 只需几秒钟，洗涤和洗脱在大多数时候仅需5min或更短 的时间完成。 但磁珠法有两个最大的问题： （1）一次只能处理最多1g组织或细胞， （2） 磁珠昂贵。 三、核酸浓度纯度和相对分子质量的测定 广泛用于测定制备物中核酸的质量的方法有两类。 1若样品较纯时，可通过分光光度法测定碱基吸收紫外线