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RNA干扰的作用机制及小干扰RNA的合成方法RNA干扰(RNA interference,缩写为RNAi)是指一种分子生物学上由双链RNA诱发的基因沉默现象,其机制是通过阻碍特定基因的翻译或转录来抑制基因表达。当细胞中导入与内源性mRNA编码区同源的双链RNA时,该mRNA发生降解而导致基因表达沉默1。与其它基因沉默现象不同的是,在植物和线虫中,RNAi具有传递性,可在细胞之间传播,此现象被称作系统性RNA干扰(systemic RNAi)2,3。在秀丽隐杆线虫上实验时还可使子一代产生基因突变,甚到于可用喂食细菌给线虫的方式让线虫得以产生RNA干扰现象。RNAi现象在生物中普遍存在。1. RNAi的作用机制 目前关于基因沉默的假说认为,转录后水平的基因沉默,主要包括起始阶段、效应阶段和倍增阶段。1.1起始阶段外源性导入或由转基因、转座子、病毒感染等多种方式引入双链核糖核酸(dsRNA), 在细胞内特异性与RNA酶(RNAase核酸内切酶) Dicer结合,dsRNA被切割成2123nt长度的带有3端单链尾巴及磷酸化的5端的短链dsRNA,即小干扰RNA(siRNA)。1.2效应阶段双链siRNA可以与含Argonauto(Ago)蛋白的核酶复合物结合形成RNA诱导沉默复合体(RNA-induced silencing complex,RISC)并被激活。在ATP供能情况下,激活的RISC将siRNA的双链分开,RISC中核心组分核酸内切酶Ago负责催化siRNA其中一条链去寻找互补的mRNA链,然后对其进行切割。反义链先与同源mRNA配对结合,然后RISC在距离siRNA 3端12个碱基的位置将mRNA切断降解,从而阻止靶基因表达,使基因沉默1。1.3 倍增阶段siRNA在RNA依赖性RNA聚合酶(RdRP)的作用下,以mRNA为模板,siRNA为引物,扩增产生足够数量的dsRNA作为底物提供给Dicer酶,产生更多的siRNA, 可再次形成RISC,并继续降解mRNA,从而产生级联放大效应。并作用于靶mRNA。如此反复倍增,从而使RNAi的作用进一步放大。因此少量的siRNA就可以产生高效的基因沉默效果4。2.RNAi的设计及合成2.1siRNA的设计 设计高效率的siRNA首先要通过NCBI、DDBJ、BMBL这3个基因序列数据库,检索相关的基因序列,获得靶向mRNA或cDNA序列,再就是合理设计siRNA。常规siRNA的设计原则是以成熟的mRNA为标准,若以DNA序列为参照,则最好选择cDNA转录区+50到+100以后的下游序列,两端的非翻译区不作为siRNA设计依据。siRNA二聚体的正义链和反义链各含21nt为佳,3端为突出末端。3凸端为尿苷(U),5凹端为腺苷(A)的mRNA序列应作为首选。进行Gen-Bank BLAST查询,确保所选siRNA编码不与其它基因同源5。不是mRNA的所有亚单位都能形成有效的siRNA,大约有60%70%可以发挥沉默效应, 这是由于5和3-UTR有丰富的调控蛋白结合区域,产生UTR结合蛋白或翻译起始复合物均可能影响RISC结合mRNA,从而影响siRNA的效果,所以沉默效应率差异较大,针对一个靶基因需要设计34条siRNA,以保证能够筛选出一条有效序列6。2.2iRNA的合成方法制备siRNA的方法主要有化学合成法、体外转录法、酶消化法、体内转录法等。当已经找到最有效的siRNA时,适合以核苷酸单体为原料,通过化学方法合成两条互补的长约2123 nt的RNA单链,然后退火形成双链复合体,这种方法所获得的产物纯度、干扰效率高,合成简单,但是制备周期长,作用时间短,而且价格昂贵限制了其应用和推广7。体外转录法8是以两段互补的DNA为模板, 在针对靶序列的正义链和反义链上游接上T7启动子,使用T7 RNA聚合酶,各自在体外转录获得两条单链RNA,将两条单链退火后形成双链RNA,然后用RNA酶消化,所得产物经纯化后就是所需的双链RNA,此方法适用于筛选有效的siRNA,但不适用于对特定siRNA进行长期研究。酶消化法9是先在体外化学合成2001000 完整的目的基因长片段dsRNA, 用细胞内形成的siRNA关键酶-Dicer酶或者RNase进行消化,即可得到各种不同的针对同一目的基因的不同位点的siRNA混合物,然后将混合物转染至细胞内,能得到较高的抑制效率。该方法抑制率高,且省时省力, 但此法产生的混合物可能导致非特异性抑制,另外在体外转录长链RNA有困难,Dicer酶费用较高,此方法不适用于长时间的研究项目,或者是需要一个特定的siRNA进行研究,特别是基因治疗。体内转录10是将siRNA的质粒、病毒表达载体或带有siRNA表达盒的PCR产物转入细胞,由细胞表达产生RNA干扰作用。siRNA表达载体常用能在哺乳动物细胞中表达shRNA的含有RNA聚合酶(pol)启动子的载体 ,通过转染含有RNA聚合酶II/III的启动子U6或H1,及其下游一小段特殊结构的质粒或病毒载体到宿主细胞内,转录出shRNA,该RNA在细胞内被Dicer酶剪切成siRNA而发挥作用。该方法的优点是细胞特异性强,适用于基因功能的长时间研究。 siRNA表达框(siRNA expreion caettes,SECs)是一种由PCR制备的siRNA表达模板,可直接转入细胞进行表达而无需事先克隆到载体中。利用引物延伸法进行PCR,产生包含1个RNA聚合酶III启动子U6或H1、一小段编码shRNA的DNA模板和1个RNA聚合酶III终止位点的表达框架,然后直接转染到细胞内。该方法为筛选有效的siRNA片段和合适的启动子提供了较为便捷的工具。其主要缺点是PCR产物转染细胞的难度大,如有转染试剂能提高SECs的转染效率,这一方法将得到更为广泛的应用。参考文献1Fire A, Xu S, Montgomery M, Kostas S, Driver S, Mello C. Potent and specific genetic interference by double-stranded RNA in Caenorhabditis elegans.J Nature. 1998, 391 (6669): 806-11.2Winston, William M. Systemic RNAi in C. elegans Requires the Putative Transmembrane Protein SID-1.JScience. March 2002, 295: 2456.3Jae-Yean, Kim. Regulation of short-distance transport of RNA and protein.J Current Opinion in Plant Biology. February 2005, 8: 45.4PD. Z. RNA interference: Listening to the sound of silenceJ.Nat Struct Biol,2001,8(9):746-750.5 ELBASHIR SM,HARBORTH J,WEBER K, et al. Analysis of gen function in somatic mammalian cells using a small interference RNAs J.Methods in Enzymology,2002,26:199-213.6 D. G. Small silencing RNAs:state-of-the-artJ.Adv Drug Deliv Rev,2009,61(9):672-703.7 R. M. Small interfering RNAs and their chemical synthesisJ.Angew Chem Int Ed Engl,2002,41 (13):2265-2269.8BRUMMELKAMP TR,BERNARDS R,R. A. A system for stable expreion of short interfering RNAs in mammalian cellsJ.Science,2002,296:550-553.9MYERS JW,JONES JT,MEYER T, et

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