人体骨髓基质干细胞冷冻干燥-寻求性实验

1、人体骨髓基质干细胞冷冻干燥-寻求性实验            摘要：人体骨髓基质干细胞已成为组织工程、细胞移植和基因治疗等领域的重要研究对象,目前对它已有低温保存的研究,而通过冷冻干燥的方法对其进行保存国内外未见报导。实验尝试用冻干的方法来保存骨髓基质干细胞。文中选取海藻糖、等作保护剂,应用差示扫描量热仪()测量其结晶温度和玻璃化转变温度;随后对加入保护剂的细胞溶液进行冻干实验,并应用流式细胞仪对冻干样品复水后的细胞活性进行了测定,其中30%+20%海藻糖对细胞的保护效果较好

2、,细胞成活率达到16.40%。 关键词：热工学 冷冻干燥 人体骨髓基质干细胞 冻干保护剂 1前言骨髓中含有两类组织成份:造血干细胞及其分化的子代细胞,和结缔组织(被称为基质)。在基质中除了存在着无成骨性的脂质细胞、网状细胞、内皮细胞和成纤维细胞外,还有一种独立的细胞系基质干细胞(,)。它是一种成纤维细胞样的梭型贴壁细胞,与造血干细胞一样具有多分化潜能,因而日益受到人们的关注。在特定的条件下,骨髓基质干细胞可以分化形成成骨细胞()、软骨细胞()、成肌细胞()和神经细胞()1.2。易于获得、特性稳定,是组织工程中理想的种子细胞,有很好的应用前景。它的广泛应用使其保存问题备受关注。目前,多采用-19

3、6的深低温保存3,但液氮费和管理费用相当昂贵,所以有必要探索新的保存方法。冷冻干燥技术是在低温真空下干燥制品,干燥后体积、形状基本不变,物质呈海绵状,无干缩;复水时能够迅速还原成原来的性状;能够除去物质中90%以上的水分,制品的保存期长,而且在保存过程中可以置于室温下保存;且便于长途运输。由于以上这些无可比拟的优越性,冻干保存倍受人们的关注,但由于活体细胞结构的复杂性,对其冻干保存一直是尚未解决的难题,仍然处于探索阶段46。对人体骨髓基质干细胞进行冻干实验研究,选取了几种保护剂,并应用差示扫描量热仪()对加入不同保护剂的细胞悬液的结晶温度以及其最大浓缩玻璃化转变温度进行了测定;随后对样品进行冷

4、冻干燥实验;并应用流式细胞仪对冻干结果进行了活性检测。2保护剂的选取与配制2.1保护剂的选取在许多生物制品的冷冻干燥过程中,常常采用低聚糖,尤其是二糖作为保护剂。这是因为二糖既能在冻结过程中起到低温保护剂的功能,又能在干燥脱水过程中起到脱水保护剂的作用。在生物制品的冷冻干燥配方中,海藻糖较常用,它具有较好的保护能力,对于海藻糖的保护机理,等认为7:(1)海藻糖的水合分子半径要比其它糖(如蔗糖、葡糖糖)大2.5倍,这使得它的水合分子独立于被保护的蛋白质的水合分子之外,从而起到稳定蛋白质、保护细胞膜和细胞内重要的膜结构的作用;(2)海藻糖能够降低干态膜脂的熔点,从而避免了在复水过程中膜的相变;(3

5、)海藻糖能够形成稳定的二水化合物。在有少量水分存在时,这些二水化合物能防止水分与未水合的海藻糖结合,从而保持较高的玻璃化温度。这样冻干后的样品即便在较为潮湿的环境中也可保存较长时间。由于多元醇与糖的官能团都是羟基,通常认为多元醇在生物制品的冷冻干燥过程能起到保护作用。另外,聚合物能够提高生物制品混合溶液的玻璃化转变温度等有利因素,因而在有些生物制品的配方中常常含有各种聚合物类保护剂。所以本文选用海藻糖、甘露醇、聚乙烯吡咯烷酮()、羟乙基淀粉()和牛血清()等作为保护剂。2.2保护剂的配制实验中所采用的人体骨髓基质干细胞由上海市组织工程研究与开发中心提供。选用的几种实验材料如下:聚乙烯吡咯烷酮3

6、0(30,上海);甘露醇(上海);6%羟乙基淀粉注射液(,北京);海藻糖(上海);小牛血清(,美国)。首先配制不同浓度的组分:(30%,40%,50%/);海藻糖(20%/);甘露醇(10%/),然后将各组分按照一定的配比滴注到细胞悬液中,同时振荡摇匀,配制成的细胞溶液具体如下表(为单纯的细胞悬液):由表2可得:在实验条件下,单纯的细胞悬液的结晶温度为-19.13,它没有明显的玻璃化转变。而在中加入1份20%的海藻糖,以及浓度分别为30%、40%和50%的两份后(,),可以较明显的看出玻璃化转变。样品,的结晶温度分别为-7.17、-17.53和-19.63,但玻璃化转变温度却没有发生较大的变化

7、;没有明显的玻璃化转变;(在中加入甘露醇)出现玻璃化转变,可见甘露醇有利于玻璃化的形成;(在中加入小牛血清)也出现玻璃化转变,与相比,结晶温度升高,而变化不大,均为-35左右。由上表可以看出,不同浓度的溶液的玻璃化转变温度要高于溶液的玻璃化转变温度,即形成玻璃的能力要强于。    4冻干实验实验应用美国冷冻干燥机对细胞溶液进行冷冻干燥。另外,为了采集冻干过程中的温度,在此系统上加装了实测物料、冷阱和隔板温度的热电偶温度计,以及温度数据自动采集记录装置。但由于该冻干机的控制面板尚存在问题,无法精确控制干燥温度,因此干燥过程中隔板的温度过高。冷冻干燥可分为预

8、冻结和升华干燥与解析干燥三个过程,在预冻结过程应该使细胞溶液的温度低于结晶温度和玻璃化转变温度,所以在试验中将其冻结到-40,时间为1.5。随后对样品进行干燥,整个冻干过程持续时间为44小时,此过程中各点温度的变化情况,即冻干曲线,示于图5:由各样品的流式细胞仪的检测结果可知,样品(30%+20%海藻糖+细胞悬液)冻干后骨髓基质干细胞的存活率最高,为16.40%。而随着浓度的升高,如样品(40%+20%海藻糖+细胞悬液)、(50%+20%海藻糖+细胞悬液),细胞存活率逐渐降低。同时从表中可分析出对细胞的保护效果要优于,且加入甘露醇和小牛血清均可提高细胞的存活率。将细胞存活率与各样品的玻璃化转变

9、温度相联系,可以看出没有玻璃化转变温度的样品(6%+20%海藻糖+细胞悬液)冻干后细胞的存活率很低。而、的玻璃化转变温度相对、较高,同时对应的细胞存活率也较高。可见,玻璃化转变温度与冻干的结果是相关的。6结论通过冷冻干燥的方法对骨髓基质干细胞进行保存至今未见报导。实验尝试对人体骨髓基质干细胞进行冷冻干燥。选取海藻糖、等作保护剂,应用差示扫描量热仪()测量其结晶温度和玻璃化转变温度,对冻干进行探索性研究,其中保护剂的组成、浓度、玻璃化转变温度以及冻干过程各因素都对细胞的存活率有影响。在实验条件下,30%+20%海藻糖对细胞的保护效果较好,细胞成活率达到16.40%,表明探索骨髓基质干细胞的冷冻干燥是有希望的。由于实验所用的冻干机仍然不能精确控制干燥温度,在干燥过程中隔板的温度过高,细胞存活率还不够理想,有望在改进实验设备后得到提高。参考文献1