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文档简介

1、供体淋巴细胞在GVHD模型小鼠组织器官中迁移和分布的动态观察            供体淋巴细胞在GVHD模型小鼠组织器官中迁移和分布的动态观察    2008-5-9 11:55:11                     &

2、#160;                                       作者:温宏升,王健民,周虹,夏荣,邱慧颖,高磊,胡晓霞       &#

3、160;【摘要】  本研究应用小鼠GVHD模型探讨异基因T淋巴细胞在移植受体体内的迁移和分布。将C57BL/6 的骨髓细胞和转基因荧光C57BL/6 小鼠的脾淋巴细胞输入经8 Gy全身照射的BALB/c小鼠,建立eGFP 标记供体淋巴细胞的GVHD小鼠模型;应用荧光显微镜和流式细胞术观测GVHD模型中eGFP+细胞的分布;ELISA法检测GVHD靶组织中趋化因子MIP-1水平的改变。结果表明:输入脾细胞和骨髓细胞第8天后出现GVHD临床及病理表现;GVHD模型中,受体鼠肝、皮肤、肠、脾、肺、舌有eGFP+ 细胞浸润;GVHD小鼠肝、脾eGFP+ 细胞中CD4+ 、CD8+ 细胞比例均

4、逐渐升高;GVHD鼠脾、肝组织中MIP-1水平升高,脾中MIP-1水平高峰出现于移植后第3天,肝中MIP-1水平高峰出现于移植后第7天。结论:除肝、肠、皮肤外,肺、舌可能也是GVHD靶器官。肝、脾组织中供体淋巴细胞浸润伴随MIP-1水平的升高。     【关键词】  小鼠GVHD模型; T淋巴细胞;增强型绿色荧光蛋白;巨噬细胞炎症蛋白    Migration and Distribution of Allogeneic T Lymphocytes in  Organs of  Gra

5、ft-Versus-Host Disease Mouse  Model    AbstractThis study was aimed to  investigate the migration and distribution processes of allogeneic donor T lymphocytes in the organs of recipient mice.  GVHD model was established by transfusion of the splenocytes of eGFP tra

6、nsgeneic C57BL/6 mice together with born marrow cells harvested from  C57BL/6 mice into BALB/c mice underwent 8.0 Gy total body irradiation. The migration and homing of eGFP+ cells were tracked by stereo-fluorescent microscopy or inverted fluorescent microscopy and  flow cytometry. The enz

7、yme linked immunosorbent assay (ELISA) was performed on supernatants from the tissue  homogenates to detect the amount of MIP-1. The results indicated that GVHD clinical manifestation and pathological changes of organs appeared on day 8 post transplantation.  eGFP-positive donor T cells in

8、 recipient organs were  observed by inverted fluorescence microscope in frozen section, or by stereo-fluorescence microscopy in living organs, such as liver, spleen, skin, lungs, bowels, and tongue.  The highest expression of MIP-1  was on day 7 post transplantation in the liver (491.

9、3±32.1 pg/ml), and day 3 post transplantation in the spleen (881.5± 45.2 pg/ml),respectively (P<0.05).  It is concluded that  GVHD was induced by splenocytes of eGFP transgeneic C57BL/6 mice. eGFP+ cells in the organs can be observed by fluorescent microscopy. In this GVHD mod

10、el, donor T cells proliferate and infiltrate in liver, skin, bowels, as well as lungs and tongue.  MIP-1  may be in  relation  with  the infiltration of T lymphocytes in  liver and spleen.    Key wordsmurin GVHD model;  T lymphocytes; splenocyte

11、s;  enhanced green fluorescence protein;  macrophage inflammatory protein-1(MIP-1)    移植物抗宿主病(graft-versus-host disease,GVHD)是异基因造血干细胞移植(allo-HSCT)临床应用的主要并发症之一。目前公认GVHD是由供体T淋巴细胞在宿主体内被激活,并攻击靶组织所引起,但对异基因T淋巴细胞在受体体内的迁移、组织分布及激活过程仍不甚清楚,GVHD累及器官的范围也存在一定争议。我们建立了增强型绿色荧光蛋白(enhanc

12、ed green fluorescence protein, eGFP) 标记供体淋巴细胞的GVHD小鼠模型,观察了GVHD模型中eGFP+ T淋巴细胞的分布与激活,为GVHD防治研究提供基础资料。    材料和方法    实验动物     BALB/c(H-2Kd)雌性小鼠、 C57BL/6雄性小鼠(H-2Kb)均为6-8周龄,购自上海生命科学院实验动物中心。eGFP-Tg- C57BL/6雄性小鼠(H-2Kb),6-8周龄,由第二军医大学细胞生物学教研室提供。 

13、   实验材料    PE labeled anti-mouse CD4,PE-cy5 labeled anti-mouse CD8 为Biolegend 公司产品。小鼠MIP-1 ELISA检测试剂盒为R&D公司产品。    供体小鼠骨髓、脾细胞悬液的制备与检测    颈椎脱位法处死C57BL/6及eGFP-Tg-C57BL/6小鼠,无菌取其双侧的股骨和脾。用不含有牛血清的RPMI 1640培养液制备骨髓细胞悬液及脾细胞悬液。以PBS重

14、悬细胞,调整浓度至107/ml。0.4%台盼蓝染色提示骨髓细胞悬液及脾细胞悬液中活细胞在95以上。流式细胞术检测骨髓细胞和脾细胞中CD4+  T、CD8+ T淋巴细胞百分比。    GVHD模型的建立    用60Co-线 全身照射受体BALB/c 雌性小鼠(8.0 Gy,剂量率为0.5 Gy/min),于6-12 小时内每只鼠经尾静脉输入8×106骨髓细胞(BMC)+15×106脾细胞(SC)。分组如下: A组18只BALB/c鼠,输C57BL/6鼠BMC + eGFP-Tg-C57

15、BL/6鼠SC;B组5只BALB/c鼠,输C57BL/6鼠BMC;C组BALB/c鼠5只,输eGFP-Tg-C57BL/6鼠BMC+ C57BL/6鼠SC。    造血重建    移植后第1、3、 5、11、13天,检测外周血细胞数。移植后第13天,制备骨髓细胞悬液片,在Olympus70倒置荧光显微镜下观察。骨髓细胞悬液染色体检查采用短期培养法,显微镜下计数Y染色体的分裂相比例,共观察10个分裂相。    GVHD观察    死亡时W

16、BC<0.5×109/L为移植失败,WBC>1.0×109/L并具有以下症状者为GVHD 发生:倦怠、纳差、体重减轻、弓背、乱毛、脱毛、腹泻甚至死亡。以25天为观察期限,观察小鼠的GVHD发生情况和生存时间。取肝、肠、皮肤组织,用4%中性甲醛固定,石蜡包埋,常规切片,HE染色,光学显微镜下观察。    eGFP+ 淋巴细胞在小鼠体内的分布    取A组小鼠,麻醉后,去毛,切开鼠胸腹部,暴露肝、脾、肠、肺、肾,皮肤、舌、脑、骨等。用Leica MZFL 立体荧光显微镜观察,拍照,曝光时

17、间0.4-1.9秒。取A组小鼠,麻醉,PBS灌注后,切取小鼠的肝、脾、单个肾脏、肠、皮肤、肺、脑实质、舌、肾脏等,冰冻切片(厚10 m),在Olympus 70倒置荧光显微镜下观察绿色荧光。以未输入eGFP细胞小鼠的各组织及冰冻切片分别作对照,排除背景荧光。    MIP-1水平和T细胞亚群检测    取肝、脾、单个肾脏,置于200目不锈钢网中轻轻碾碎,以1 ml PBS分别收集细胞,   500×g 离心 6分种,取上清,行MIP-1  ELISA检测,按试剂盒说明书操作,

18、测450 nm OD值。采用Curve Expert1.3 软件作标准曲线,计算样本OD值对应的浓度值。流式细胞术检测肝、脾、肾细胞悬液中eGFP+ 细胞百分数及以eGFP+ 细胞设门的CD4+、CD8+ 细胞百分数。统计处理    数据用SPSS 10.0 统计软件处理, 生存分析采用Kaplan-Meier分析方法;样本均数间比较采用独立样本t检验。    结果    小鼠骨髓细胞和脾细胞中CD4+ 、CD8+细胞百分比    检测

19、结果见表1。由表1可见,eGFP-Tg-C57BL/6小鼠脾细胞(SC)悬液中CD4+  T或CD8+  T淋巴细胞含量与C57BL/6小鼠相似,CD4+  T均在20左右,CD8+ T均在13                                    &#

20、160;   供体淋巴细胞在GVHD模型小鼠组织器官中迁移和分布的动态观察    2008-5-9 11:55:11                                  

21、60;              左右 。据此推测两种小鼠在引发GVHD方面没有区别。这两种小鼠骨髓细胞中T 淋巴细胞含量均极少,约为2。因此,单输骨髓细胞可能不足以引发GVHD。    移植后造血重建    移植后第3天WBC降至最低值,第8天后WBC恢复至大于1.0×109  ,第13天WBC恢复至3.0×109 以上。移植后第13天后C组鼠的骨髓细胞大

22、多为eGFP+细胞(图1),说明其来源于供体eGFP-Tg-C57BL/6鼠。染色体检查显示受者雌性小鼠骨髓细胞10个分裂相中,8/10-10/10可见Y染色体。Table 1. Percentages of CD4+,CD8+ cells in bone marrow cells (BMC)and splenocytes(SC) of the mice(略)    eGFP+ 淋巴细胞在小鼠体内的分布    立体荧光显微镜、荧光倒置显微镜观察显示,A组小鼠肝、皮肤、肠、脾、肺、舌有eGFP+细胞浸润(图2);肾、

23、脑、骨、心肌、骨骼肌等组织中均未见eGFP+细胞浸润。可见肝、皮肤、肠、肺、舌等组织第13天eGFP+细胞多于第3天。而脾组织第13天eGFP+细胞少于第3天(图3)。    GVHD表现及转归    A组小鼠移植后第8天开始出现GVHD表现,主要为消瘦、弓背、脱毛、乱毛、体重减轻和腹泻,最后全部在25天内死亡。出现GVHD表现小鼠的肝、肠符合急性GVHD的病理改变: 肝组织显著水肿,细胞浊肿、变性,可见灶性坏死,汇管区淋巴细胞浸润; 肠组织学表现黏膜脱落,腺体及绒毛水肿、坏死、糜烂,可见淋巴样圆形细胞浸润(图4)

24、。单输骨髓细胞的B组小鼠无GVHD表现,肝、肠结构基本正常。A组、B组小鼠生存曲线比较表明,A组小鼠生存率明显小于B组小鼠(图5) (P<0.05)。    第3、7、13天, eGFP+ 细胞比例,在肝细胞悬液中逐渐增多,从18.4±3.4%升高至70.8±5.3%;脾细胞悬液中逐渐减低,从60.7±8.3%降低至27.8±4.3%。肝、脾eGFP+ 细胞中CD4+ T、CD8+ T淋巴细胞比例均逐渐升高(表2)。Table 2. Percentages of eGFP+ cells in the cell

25、 suspensions and percentages of CD4+ ,CD8+ cells in eGFP+ cells (略)    肝、肾及脾脏中MIP-1 的表达    与肾脏中MIP-1水平相比,肝、脾中MIP-1水平显著升高(P<0.05);移植后第3天脾MIP-1水平最高,为881.5± 45.2 pg/ml,肝中MIP-1高峰水平出现在第7天,达491.3±32.1 pg/ml (图6)。    讨论  

26、60; 本研究将C57BL/6鼠骨髓细胞与转eGFP基因的C57BL/6鼠脾细胞一起植入经8.0 Gy照射的BALB/c 鼠体内,成功建立了GVHD模型。eGFP可作为标记,用荧光显微镜或流式细胞仪可以直接检测供体T淋巴细胞在受体鼠体内的浸润、扩增情况。本实验系统可用于观察供体细胞的分布及动态变化,为GVHD的发生机理及防治研究提供了方法平台。 目前认为,激活的CD4+ T淋巴细胞分泌免疫应答发生必需的细胞因子,激活CD8+ T淋巴细胞,使其成为细胞毒性T淋巴细胞,从而攻击受者细胞引发GVHD1,2。在本实验模型中,由于供者小鼠骨髓中T淋巴细胞含量极少,单纯输注供者骨髓细胞,虽然也能

27、实现植入和供者型造血重建,但无GVHD发生。同时输注异基因脾细胞可使受者小鼠发生GVHD,在GVHD靶器官中出现受者T淋巴细胞的浸润和增殖。我们观察到受者脾与肝中eGFP细胞呈现不同的动态变化:肝中eGFP细胞逐渐增多,而脾中eGFP细胞逐渐减少。这一结果提示,供体T淋巴细胞在移植初期可能先进入脾等淋巴器官,在异基因抗原作用下,激活、扩增后,离开脾,进入肝、肠等GHVD靶器官。但不能排除肝、皮肤、肠等GHVD靶器官中存在供体T淋巴细胞的激活与扩增。例如最近有学者研究表明,供体T淋巴细胞可在肝、脾、肺中直接与抗原呈递细胞相互作用而激活、扩增3。经典GVHD靶器官主要是肝、肠和皮肤组织,GVHD的

28、临床分级也主要根据这3个组织的损伤程度。临床资料表明,GVHD与移植后的许多并发症均有联系,如间质性肺炎、黏膜炎症或溃疡、出血性膀胱炎、味觉丧失等。有研究显示,脑、肾、牙龈、结缔组织、舌、鼻腔等组织中均可见供体淋巴细胞浸润,并将它们称之为非经典GVHD靶器官4-6。本研究采用荧光显微镜观测eGFP+ 细胞的分布,在肝、肠、皮肤、肺、舌中发现eGFP+ 细胞浸润,这提示除肝、肠和皮肤等传统GVHD靶器外,肺、舌也是潜在GVHD靶器官。我们在肾、脑、肌肉等组织中未观察到明显的eGFP+ 细胞浸润,可能与肾、脑中供体淋巴细胞浸润较少或实验观测方法的敏感性有关。MIP-1是一种重要的趋化因子,活化后的

29、T淋巴细胞、B淋巴细胞、单核细胞和肥大细胞均可产生MIP-1。T淋巴细胞有MIP-1的受体CCR5、CCR7等的表达,MIP-1对T淋巴细胞有趋化作用7。有研究表明,异基因造血干细胞移植的动物的肝、脾组织中MIP-1, MIP-2 和 MIG水平升高;皮肤组织中可见 MIP-1, MIP-2, MCP-1 和 MCP-3 水平升高8,9。本研究发现,GVHD模型中肝、脾组织的MIP-1水平升高,表达高峰分别出现在第7天和第3天。国外有研究也显示,移植后第3天淋巴组织中趋化因子MIP-1表达上调,在脾中MIP-1由激活的T淋巴细胞产生。肝中MIP-1表达晚于淋巴组织 ,由激活的T淋巴细胞产生,并

30、与供者T淋巴细胞浸润一致,用MIP-1单克隆抗体或输入MIP-1-/- 供体T淋巴细胞的方法,均可减少受体肝中CD8+T淋巴细胞浸润,而且血清丙氨酸氨基转移酶 (ALT) 水平和肝GVHD特异性病理表现均较轻9-12。这说明可能存在一个反馈机制,肝浸润T淋巴细胞产生MIP-1,吸引CD8+T 细胞毒性T 细胞进入肝脏。    【参考文献】  1 Ferrara JL. Pathogenesis of acute graft-versus-host disease: cytokines and cellular effectors. J Hema

31、tother Stem Cell Res, 2000; 9: 299-3062 居小平,王健民.移植物抗白血病作用. 中华血液学杂志, 1999;20:443-4453 Panoskaltsis-Mortari A, Price A, Hermanson JR, et al. In vivo imaging of graft-versus-host-disease in mice. Blood, 2004; 103: 3590-35984 Choi EY, Christianson GJ, Yoshimura Y, et al. Real-time T-cell profiling ident

32、ifies H60 as a major minor histocompatibility antigen in murine graft-versus-host disease. Blood, 2002; 100: 4259-42645 Padovan CS, Gerbitz A, Sostak P, et al. Cerebral involvement in graft-versus-host disease after murine bone marrow transplantation. Neurology, 2001;56: 1106-11086 Ma M, Barnes G, P

33、ulliam J, et al. CNS angiitis in graft vs host disease. Neurology, 2002; 59: 1994-19977 Shlomchik WD. Antigen presentation in graft-vs-host disease. Exp Hematol, 2003; 31: 1187-11978 Serody JS, Cook DN, Kirby SL, et al. Murine T lymphocytes incapable of producing macrophage inhibitory protein-1 are impaired in causing graft-versus-host diseas

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