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文档简介
1、迁移试验(cell migration assay)试验介绍细胞迁移与侵袭试验将Transwell小室放入培育板中,小室内称上室,培育板内称下室,上下层培育液以聚碳酸酯膜相隔,将争辩的细胞种在上室内,由于聚碳酸酯膜有通透性,下层培育液中的成分可以影响到上室内的细胞,应用不同孔径和经过不同处理的聚碳酸酯膜,就可以进行共培育、细胞趋化、细胞迁移、细胞侵袭等多种方面的争辩。试验步骤:1材料预备:可拍照显微镜,Transwell小室,孔径8m,没包被胶的(Coster和Corning公司的也较常用),Transwell迁移试验的细胞培育板24孔板。细胞培育板应当与购买的Transwell小室相配套,B
2、D公司的Matrigel,无血清DMEM,(1%胎牛血清)DMEM和1640培育基,DMEM完全培育基,1640完全培育基(也可加到20%血清),无菌PBS,棉签,胰酶,4%多聚甲醛固定液或者甲醇,结晶紫染液(0.1%(g/ml)PBS结晶紫)2步骤和流程2.1基质胶铺板:用BD公司的Matrigel 1:8(依据细胞产生mmp的量来打算)稀释,包被Transwell小室底部膜的上室面,置3730min使Matrigel聚合成凝胶。使用前进行基底膜水化。2.2制备细胞悬液制备细胞悬液前可先让细胞撤血清饥饿1224h,进一步去除血清的影响。但这一步并不是必需的。消化细胞,终止消化后离心弃去培育液
3、,(用PBS洗12遍),用含BSA的无血清培育基重悬。调整细胞密度至5105/ml。2.3接种细胞取细胞悬液100l加入Transwell小室。24孔板下室一般加入600l含20%FBS的培育基,特殊留意的是,下层培育液和小室间常会有气泡产生,一旦产生气泡,下层培育液的趋化作用就减弱甚至消逝了,在种板的时候要特殊留心,一旦消灭气泡,要将小室提起,去除气泡,再将小室放进培育板。培育细胞:常规培育1248h(主要依癌细胞侵袭力量而定)。24h较常见,时间点的选择除了要考虑到细胞细胞侵袭力外,处理因素对细胞数目的影响也不行忽视。2.4结果统计直接计数法,“贴壁”细胞计数,这里所谓的“贴壁”是指细胞穿
4、过膜后,可以附着在膜的下室侧而不会掉到下室里面去,通过给细胞染色,可在镜下计数细胞。取出Transwell小室,弃去孔中培育液,用无钙的PBS洗2遍,甲醇固定30分钟,将小室适当风干。0.1%结晶紫染色20 min,用棉签轻轻擦掉上层未迁移细胞,用PBS洗3遍。400倍显微镜下随即五个视野观看细胞,记数。试验材料(1)Transwell chamber: 24-well, 8.0-m pore membranes (Corning) (2)细胞培育相关试剂:无血清培育基,10血清培育基,PBS,0.02EDTA(3)固定液:甲醇(4)染色液:Giemsa染液(5)封片剂:中性树胶(6)其他:小
5、镊子,棉棒,载玻片,盖玻片操作步骤(1)全部细胞培育试剂和Transwell chamber 放在37温育;(2)待测细胞培育至对数生长期,消化细胞,用PBS和无血清培育基先后洗涤一次,用无血清培育基悬浮细胞,计数,调整浓度为2105 /ml;(3)在下室(即24孔板底部)加入600800l 含10血清的培育基,上室加入100150l细胞悬液,连续在孵箱培育24小时;(4)用镊子当心取出chamber,吸干上室液体,移到预先加入约800l甲醇的孔中,室温固定30分钟;(5)取出chamber,吸干上室固定液,移到预先加入约800l Giemsa染液的孔中,室温染色1530分钟;(6)轻轻用清水
6、冲洗浸泡数次,取出chamber,吸去上室液体,用湿棉棒当心擦去上室底部膜表面上的细胞;(7)用小镊子当心揭下膜,底面朝上晾干,移至载玻片上用中性树胶封片;(8)显微镜下取9个随机视野计数,统计结果。留意事项(1)依据待测细胞体积大小选择合适孔径的chamber。常用的为8.0-m孔径(如AGS细胞),假如细胞体积较大可以考虑用10-m孔径;(2)依据待测细胞的迁移力量强弱调整细胞数和迁移时间。常规24-well chamber接种细胞数约为25104/well,迁移时间1236小时;(3)由于Corning公司的24-Transwell内含12个独立的chamber,为了避开操作污染,每次试
7、验可预先另预备一块24孔一般培育板(Corning);(4)假如细胞迁移力量较弱,下室液体可用3T3细胞无血清培育24小时获得的上清加50g/ml FN(Fibronectin),具体可查阅相关文献;(5)细胞悬液加入膜中心,尽量保证液面水平;(6)固定染色擦洗时动作当心,避开擦去膜底面的细胞。但肯定要充分擦净膜表面上未迁移的细胞,以免影响读数。尤其是膜周边上可用细牙签或小镊子缠上湿棉花擦洗,但要当心避开将膜戳破;(7)Chamber和膜上都无法标记,操作时应当心避开混淆试验组和对比组;(8)充分晾干,避开残留水分导致镜下聚焦不全都。细胞侵袭试验 (cell invasion assay)试验
8、材料(1)Matrigel (BD 5mg/ml),-20保存(2)其余材料同迁移试验操作步骤(1)Matrigel在4过夜溶化;(2)用4预冷的无血清培育基稀释Matrigel至终浓度1mg/ml,冰上操作;(3)在chamber上室底部中心垂直加入100l稀释后的Matrigel,37温育45小时使其干成胶状;(4)后续步骤同迁移试验(1-8)。留意事项(1)Matrigel在过高或过低的温度均易凝固,因此操作所需枪头和离心管应提前在4预冷;(2)铺胶时保证液面水平,胶的厚度均匀全都,切勿产生气泡;(3)其他留意事项同迁移试验。其他Transwell做肿瘤侵袭试验的具体步骤(1) 基质胶预
9、备:将冻存于80度冰箱的BD matrigel 4度过夜(24h),变成液态;(2)取300ul无血清培育基,加入60ul(或50ug/每室)Matrigel ,混匀,( 4操作,最好在冰浴上),加入上室各100ul(3个室);放入37培育箱中,孵育4-5h(5h);此间经常观看,当消灭“白色层”时,说明已经变为固态。注释:无血清培育基和基质胶按1:5稀释,每孔加50ul,在37培育箱中1-2h。(3)消化细胞,无血清培育基洗3次,计数,配成细胞悬液;(4)用无血清培育基洗 Matrigel洗1次;每孔加入100ul细胞悬液;(5)下腔室中加入500ul含有20FBS条件培育基;(6)37培育
10、箱中,孵育20-24h;(7)取出transwell用PBS洗2遍, 5%戊二醛固定,4;(8)加入结晶紫(0.1%)染色或Giemsa染色(510min),室温0.5h,PBS洗2遍,用棉球擦去上表面细胞,显微镜下观看。 迁移试验transwell在24孔板中浸泡1小时;消化细胞,无血清培育基 洗 2 次,计数,配成 细胞悬液,每孔加入100ul细胞悬液;加药刺激;下腔室中加入条件培育基或其他刺激因子;37培育箱中,孵育 20-24h;取出 transwell用 PBS洗2遍,5% 戊二醛固定, 4;PBS洗2遍,加入结晶紫(0.1%)染色,室温0.5h,PBS 洗 2 遍,用棉球擦去上表面细胞,显微镜下观看计数 10 照相,记录。侵袭试验取 300ul 无血清培育基 ,加入 30ul (或 50ug/ 每室) Matrigel ,混匀,( 4 操作,最好在冰浴上),加入上室各 100ul ( 3 个室); 放入 37 培育箱中,孵育 4-5h ( 5h ); 消化细胞,无血清培育基洗 3 次,计数,配成 细胞悬液 ;用无血清培育基洗 Matrigel 洗 1 次;每孔加入 100ul 细胞悬液;下腔室中加入 600ul 无血清 条件培育基;37 培育箱中,孵育 20-24h;取出 transwell 用 PBS 洗 2 遍, 5% 戊二醛固定, 4 ;PBS 洗 2 遍,
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