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文档简介
1、关于实验四细菌质粒的接合转移第1页,共15页,2022年,5月20日,22点13分,星期三一:目的要求了解在自然条件下微生物遗传信息传递的方式;掌握细菌质粒转移的原理和流程。 第2页,共15页,2022年,5月20日,22点13分,星期三二:基本原理在质粒转移过程中,供体菌与受体菌细胞通过结合作用紧密接触,质粒从供体细胞向受体转移,同时进行质粒复制,这就是结合转移的过程。按能否自主转移,将天然存在的质粒分为两大类。 第3页,共15页,2022年,5月20日,22点13分,星期三第4页,共15页,2022年,5月20日,22点13分,星期三1转移型质粒:多为低拷贝的大质粒,含有完整的转移操纵子基
2、因(tra)和转移起始位点。能在同种或亲缘关系近的菌体细胞间进行转移。例如: 大肠杆菌:F因子、R1、R100、R6K、RP4 天蓝色链霉菌:致育性因子pSCP1、pSCP22非转移型质粒:多为高拷贝的小质粒,如大肠杆菌的ColE1、RSF1010等。由于缺少转移基因(tra),不能自主转移,但由于含有与F质粒类似的bom(或nic)位点或诱动基因mob(mobilization),因而能被带有tra基因的转移性质粒诱动而发生转移。 第5页,共15页,2022年,5月20日,22点13分,星期三第6页,共15页,2022年,5月20日,22点13分,星期三第7页,共15页,2022年,5月20
3、日,22点13分,星期三转移子的筛选筛选培养基为:基本培养基+抗生素; 供体和辅助大肠杆菌均营养缺陷型,不能在基本培养基上生长; 未转化成功的受体菌不能在有抗生素的平板上生长。第8页,共15页,2022年,5月20日,22点13分,星期三三:实验菌株供体菌:E.coli DH5(pTR102) (TcR),含有 mob基因 ;受体菌: 紫云英根瘤菌 ( TcS) ;辅助菌: E. coli MM294 (pPK2073)(SpeR),含有tra基因。 第9页,共15页,2022年,5月20日,22点13分,星期三四:实验内容 准备将受体、供体、辅助菌分别培养到对数期: 供体菌:E.coli D
4、H5(pTR102) (TcR),LB + Tc 20g /ml,37震荡培养1夜; 受体菌: Sinorhizobium fredii ( TcS), TY, 28震荡培养2天; 辅助菌: E. coli MM294 (pPK2073)(SpeR),LB + Spe 50 g/ml 37震荡培养1夜第10页,共15页,2022年,5月20日,22点13分,星期三用可调定量移液器吸取供体、辅助菌各 0.4ml,吸受体菌0.6ml,都加入同一eppdorf管内(每个同学做1管),放入离心机内,10000转/min 离心1分钟。倒上清,向沉淀加 1ml 的 TY液体,用 tip上下抽吸,洗涤菌体,
5、再10000转/min离心1分钟,倒上清,留100l左右用于悬浮菌体。倒TY平板,然后用镊子取灭菌滤纸片贴于已准备好的TY平板上(每2个同学1片,2-3片/平板)。用200l的 tip 抽吸eppdorf管内沉淀的菌体,打散成浓菌液,将之加到滤纸片中央(切勿倾斜平板,以免菌液流出滤纸片以外),吹干。28培养2天。 操作步骤(第一天) 第11页,共15页,2022年,5月20日,22点13分,星期三倒SM平板将基本培养基(SM)溶化,加千分之一的维生素混合液,然后加相应量的四环素(15U/ml),每2人1皿。另准备1瓶基本培养基,不加抗生素,用于对照。将倒好的平板用报纸包好后放入4冰箱,备用。(注:四环素在强光下易分解)第12页,共15页,2022年,5月20日,22点13分,星期三向灭菌青霉素瓶中加3ml无菌水,将已培养的TY平板上的滤纸片用无菌镊子放入水中,在震荡混匀器上洗菌体,充分打散。向1ml的ep管加 0.9mL无菌水,取0.1ml菌液,混匀。 吸取 200L涂皿。少数同学另取稀释液,涂1板不加Tc的SM做对照 。 平板放28 培养4-6天后看结果。操作步骤(第三天) 第13页,共15页,2022年,5月20日,22点13分,星期三五:实验报告内容转移频率=SM+Tc平板的单菌落数/纯SM平板的单菌落数 SM+
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