2023年试验设计方案 水循环试验设计方案(3篇)

本文格式为Word版，下载可任意编辑——2023年试验设计方案水循环试验设计方案(3篇)为保证事情或工作高起点、高质量、高水平开展，往往需要提前准备一份具体、详细、针对性强的方案，方案是书面计划，是具体行动实施方法细则，步骤等。写方案的时候需要注意什么呢？有哪些格式需要注意呢？以下是我给大家收集整理的方案计划范文，供大家参考借鉴，希望可以帮助到有需要的朋友。

医学试验设计方案简单试验设计方案篇一

1、学习从土壤中分开、纯化微生物的原理与方法。

2、学习、把握微生物的鉴定方法。

3、对提取的土样进行微生物的分开、纯化培养，并进行简单的形态鉴定

二.试验原理

α-淀粉酶是一种液化型淀粉酶，它的产生菌芽孢杆菌，广泛分布于自然界，特别是在含有淀粉类物质的土壤等样品中。

从自然界筛选菌种的具体做法，大致可以分成以下四个步骤：采样、增殖培养、纯种分开和性能测定。

1、采样：即采集含菌的样品

采集含菌样品前应调查研究一下自己计划筛选的微生物在哪些地方分布最多，然后才可着手做各项具体工作。在土壤中几乎各种微生物都可以找到，因而土壤可说是微生物的大本营。在土壤中，数量最多的当推细菌，其次是放线菌，第三霉菌，酵母菌最少。除土壤以外，其他各类物体上都有相应的占优势生长的微生物。例如枯枝、烂叶、腐土和朽木中纤维素分解菌较多，厨房土壤、面粉加工厂和菜园土壤中淀粉的分解菌较多，果实、蜜饯表面酵母菌较多;蔬菜牛奶中乳酸菌较多，油田、炼油厂附近的土壤中石油分解菌较多等。

2、增殖培养(又称丰富培养)

增殖培养就是在所采集的土壤等含菌样品中参与某些物质，并创造一些有利于待分开微生物生长的其他条件，使能分解利用这类物质的微生物大量繁殖，从而便于我们从其中分开到这类微生物。因此，增殖培养事实上是选择性培养基的一种实际应用。

3、纯种分开

在生产实践中，一般都应用纯种微生物进行生产。通过上述的增殖培养只能说我们要分开的微生物从数量上的劣势转变为优势，从而提高了筛选的效率，但是要得到纯种微生物就必需进行纯种分开。纯种分开的方法好多，主要有：平板划线分开法、稀释分开法、单孢子或单细胞分开法、菌丝尖端切割法等。

三.试验材料

1、器材：

小铁铲和无菌纸或袋(可省)、培养皿8个、载玻片、盖玻片、普通光学显微镜、量筒、滴管、吸水纸、无菌水试管5支(每支4.5ml水)、烧杯3个、三角瓶5个、电炉、玻璃棒、接种环、镊子、恒温培养箱、高温灭菌锅、移液枪(枪头10个)、天平、滤纸、ph试纸等。

2、试剂：

配制牛肉膏蛋白胨培养基的原料(牛肉膏0.9g、nacl1.5g、琼脂4.5g、蛋白胨3.0g)、lugol氏碘液、可溶性淀粉0.6g、结晶紫染液、番红染液、95%乙醇、无菌水等。

3、土样：取自桂林师专甲山校区药用植物园面的土壤，地下10cm左右。

四.试验方法步骤

1、采集土样带上小铁铲和无菌袋到土豆地采集较细碎土壤

2、样品稀释在无菌纸上称取样品1g，放入100ml无菌水的三角瓶中，手摇10分钟使土和水充分混合。用1ml无菌吸管吸取0.5ml注入4.5ml无菌水试管中，梯度稀释至10-6。

3、分开用稀释样品的同支吸管分别依次从10-6、10-5、10-4样品稀释液中，吸取lml，注入无菌培养皿中，然后倒入灭菌并溶化冷至50℃左右的固体培养基，防备摇动冷凝后，倒置于37℃温箱中培养48小时。培养基的配制—称取蛋白胨1.0g;nacl0.5g;牛肉膏0.3g;琼脂1.5g;ph6.4左右;100ml水定容。

4、初步鉴定对多种菌进行形态特征的观测，简单染色、革兰氏染色以及芽孢染色观测，记录结果。

5、α-淀粉酶鉴定

1)试验原理：

2)步骤：

将培养的的各种待测菌种接种在含有2%淀粉液的牛肉膏蛋白胨培养基中，培养基的配制—称取蛋白胨1.0g;nacl0.5g;牛肉膏0.3g;可溶性淀粉0.2g;琼脂1.5g;ph6.4左右;100ml水定容(注：先将可溶性淀粉加少量蒸馏水调成糊状，再加到溶化好的培养基中，调匀)，倒置于37℃温箱中培养18-24小时后，取出平板，向皿中注入l滴lugol氏碘液，因淀粉遇碘变蓝色，如菌落周边有无色圈，说明该菌能分解淀粉。

6、纯化从平板上选取淀粉水解圈直径与菌落直径之比较大的菌落，用接种环沾取少量培养物至斜面上，并进行2-3次划线分开，挑取单菌落至斜面上，培养后观测菌苔生长状况并镜检验证为纯培养。

医学试验设计方案简单试验设计方案篇二

电子从电子枪加热发射而出，经加速电压加速，穿过极板射向荧屏。这个过程产生霍尔效应中所需的工作电流。在无外磁场的状况下，观测亮点的移动状况，测量霍尔电压；在极板处加上垂直于电子束及极板方向的磁场，电子束因此受到洛伦兹力而偏转，在极板积聚，产生电压，测量得霍尔电压uh；除去磁场，观测荧光屏上亮点位置移动状况，待位置稳定后，测量此时电压。

将磁铁和示波管组装在一起，提供磁场；连接外电路开关，开启电源，开始试验；调整聚焦及亮度，使亮点集中到荧光屏中央，测量霍尔电压；加载磁场，测量极板处磁感应强度b，观测荧光屏亮点移动状况；稳定后，测量霍尔电压uh；除去磁场，观测亮点移动状况，测量霍尔电压。试验结果与现象分析试验数据分析在x偏转板处所加磁场的磁感应强度b为0.00017t，示波管内部是固定结构，为使示波管正常工作，对电源供给有一定要求，可分析出加速电压uo为阴极k与其次栅极g2之间的电压，约为1000v（由于试验时g2电位可调范围为±100v，实际加速电压为900v至1100v）。示波器内x偏转板之间的距离（由于在透明的真空壳体内不能确凿测量，目测为1cm）约为0.01m。将示波器的亮度调大，所测电压逐渐增大；当亮度调理到最大时（输入电压约为900v至1100v），所测霍尔电压达到最大值33.8v。理论上，电子经加速电压加速后，亮点在荧光屏上迅速向上偏移，这个过程时间极短。这是受洛伦兹力作用，使电子束向上偏转。由于偏转极板两侧电荷积聚，产生霍尔电压，电子束同时受电场力和洛伦兹力作用平衡。但是由于对于此时电子速度，极板长度不可忽略，所以电子束相对中央位置发生偏转。过3min，待稳定后，再除去磁场，如图5。亮点迅速移动到下方，这是由于磁感应强度为零，霍尔效应消失。这个过程是极短的。这些现象都符合霍尔效应，所以本试验成功验证了霍尔效应。

本文所设计的霍尔效应试验利用电子枪作为电子发射装置，探讨从阴极发射出的电子经过磁场时产生的霍尔效应现象。从荧光屏上电子的亮度变化可以推断出从通过控制光栅中心小孔的电子密度（电子数目）增减；通过观测荧光屏上亮点的移动状况，得到霍尔效应内部的平衡过程；并根据测量x极板上的霍尔电压判断霍尔效应现象的明显程度。相比于传统的霍尔效应试验，本试验仪器最大特点就是试验过程动态可知、试验结果直观易得。通过荧光屏上的亮点亮度变化可以得知电子束密度增减，亦即电流强弱；两极板电压可以直接测量得霍尔电压；通过观测亮点在荧光屏上移动状况，可得知霍尔效应内部电子受力平衡过程。因此本试验可以让学生更加明白地理解霍尔效应的过程和本质。另外本文所设计的霍尔效应试验，由于仪器由示波管简单改装而来，所以制作简单，操作简便，成本低、互换性强，适合学生试验。

医学试验设计方案简单试验设计方案篇三

二、试验目标：让学生通过独立自主的制作临时装片、切片、涂片的方法来感知细胞的形态和结构，从而使学生对细胞达到一定的认识，为以后的教学作下铺垫。制作临时装片的成功，对提高学生的生物学兴趣和生物科学素养都起着重要的作用。同时，这样锻炼了学生的动手能力，也培养了学生的自己动脑思考的能力。

三、试验方法及步骤：

(一)试验材料：显微镜、载玻片、盖玻片、镊子、刀片、吸水纸、解剖针、毛笔、滴管、擦镜纸;清水、碘酒溶液;西红柿、空心莲子草、洋葱;创可贴(切片时可能会有人受伤)

(二)试验步骤：

1、临时装片的制作

⑴准备

擦用擦镜纸把载玻片和盖玻片擦拭清白

问题：由于叶表皮皱缩、学生不熟练等，导致撕下的表皮薄膜过厚，在显微镜视野中难以找到理想的观测对象,致使试验效果较差。

⑵盖盖玻片

⑶染色

染：将玻片倾斜10度左右，从高的一侧滴入碘液，让其自己流入玻片。问题：染色时书中要求是把1-2滴碘液滴在盖玻片的一侧，然后用吸水纸从盖玻片的另一侧吸引，使染液浸润标本的全部。然而，部分同学可能将盖玻片下所有水全部吸干，做出的装片会有好多的大气泡，且气泡将细胞掩盖了，或者有人将气泡误认为细胞。

改进：染色时不用吸水纸吸水，而是将玻片倾斜10度左右，这个角度一定不能太大，太大水就会流出盖玻片下的小空间，然后从较高一侧的盖玻片与载玻片的缝隙往里滴碘液，让碘液自己流进盖玻片下，假使有液体流到盖玻片外，用吸水纸擦拭，但一定要强调不能从盖玻片边缘吸水，盖玻片周边一定要有充盈的液体，这样才不会出现大气泡。

⑷镜检

用显微镜观测

2、临时切片的制作

⑴选材

选择软硬适度的材料，先截成适当长度，一般以20-30mm为宜(便于手持即可)，材料太软，可用马铃薯块茎、胡萝卜根或肥皂将欲切取的材料夹住一起进行切片，本试验用空心莲子草，可直接用于切片。

⑵切片

用三只手指夹住空心莲子草，(使其高于手指，右手持刀片(刀片用水润湿)，将空心莲子草削去一层，形成平面，刀口向内，与断面平行，以均匀的动作，自左前方向右后方快速拉刀，滑行切片(注意要整个臂部用力，而不要腕部用力)。

⑶镜检

如此连续动作，切下一些薄片，然后用毛笔将最薄的几片材料移至滴有一滴清水的清白的载玻片中央，盖上盖玻片，用显微镜观测。

3、临时涂片的制作

⑴把成熟的番茄果肉放在培养皿内，让汁液流出(汁液中有均匀的.离散细胞)。⑵吸取汁液，滴在清白的载玻片上，将涂抹的液滴滴于载玻片的中央或偏右约1/4处，左