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Page3of25中6.1.4中的a井水取样检测频率改1
0102011-6-27
次/12小时
6.10水质异常纠偏措施:增加井水余氯大于
A12012-7-7
0.3mg/l,水质异常纠偏措施
A22013-7-25修订6.2.1水样微生物检验
修订6.2.2水质总碱度的测定、6.2.3水质总硬度的
测定、6.2.4水质PH的测定6.2.5水质电导率的测
A32013-9-25
定6.2.6水质浊度的测定、6.2.7水质游离余氯的测
定
分发号:(仅适用于控制文件)
(仅盖有红色印章的文件才有效)
1.0目的
规定了生产用水检测的方法和标准。
2.0适用范围
适用水处理工序设备运行过程水质监控及水处理系统清洗消毒结果验证
3.0术语
3.1菌落总数:水样在营养琼脂上有氧条件下37℃培养48h后,所得.1ml水样所含菌落的总
数。
3.2总大肠菌群:指一群在37?培养24h能发酵乳糖、产酸产气、需氧和兼性厌氧的革兰氏
阳性无芽胞杆菌。
3.3耐热大肠菌群:用提高培养温度的方法将自然环境中的天肠菌群与粪便中的大肠菌群区
分开,在44.5C仍能生长的大肠菌群,称为耐热大肠菌群。
3.4总碱度:是指水中能够接受口门离子即与强酸发生中和反应的物质总量。
3.5总硬度:水中钙、镁离子和其它金属离子的总含量。因其它金属离子的含量很少,一般
恃况下,总硬度表示钙、镁离子的含量。
4.0职责
4.1质检部负责水质检测和生产部门作业监控
4.2生产部负责设备设施及相应工序的操作
5.0工作流程图(无)
6.0内容及要求
6.1标准
6.1.1原水、工艺水水质感官:无色、无味、无肉眼可见杂质;
6.1.2原水水质必须达到以下要求:
自来水浊大肠菌群
碱度硬度井水浊度菌落总数余氯
项目pH度MPN/100m
mg/1mg/1NTUcfu/mlmg/1
NTU1
标准6.5-8.5<150W450W3W1W100不得检出0.05-0.3
注:其中硬度、碱度均以CaC(U+
6.1.3工艺水水质必须达到以下要求:
碱度硬度浊度电导率余氯菌落总数大肠菌群
项目pH
mg/1ng/1NTUus/cmmg/1cfu/mlMPN/100ml
标准6.5-8.5W75W75W1W200W0.1<100不得检出
注:其中硬度、碱度均以CaCO,计
6.1.4取样时间与频率:
a.生产过程中,原水(井水或自来水)理化指标检测取样检测频率1次/12小时
b.生产过程中,工艺水理化指标检测取样检测频率1次/2小时
c.井水、工艺水微生物检测取样检测频率1次/I周
6.2水质测定
6.2.1水样微生物检验
6.2.1.1取样前的准备工作
将带塞子的三角瓶(具体视取样点个数)放于高压灭菌锅内121℃灭菌30分钟后备
用,再取一定数量的棉球(具体视取样点个数)放于塑料烧杯中,加入75%乙醇液至棉球
全部浸没,浸泡30分钟以上(即酒精棉球)待用,同时将取样用的镜子(取样端)也放入
上述75%乙醇液中浸泡消毒备用。
6.2.1.2取样
打开取样阀(开启度根据取样适合为宜)排水3〜5分钟,取样前先用消毒后的镜子取
一酒精棉球将取样口仔细擦试,再换取一酒精棉球将取样口重新擦试,然后用灭菌后的三
角瓶取水样200ml左右,迅速盖上塞子,注意操作过程中手不要接触到瓶II内侧和塞子下
端,以免造成操作上的污染,同时清理用过的酒精棉球,将样品带回微生物室待检。
6.2.1.3样品的处理
取回的水样必须在2小时内进行菌落总数和大肠菌群的检验,以免过长时间的放置造
成检验结果的不准。
6.2.1.4菌落总数(平皿计数法)
I培养基与试剂:营养琼脂
成分(g/L):蛋白陈10g氯化钠5g牛肉膏粉3g琼脂15g
配制:称取本品33克,加入1300ml蒸储水中,加热煮沸溶解,分装,121℃高压灭菌15分
钟备用;
II仪器
高压蒸汽灭菌器、干热灭菌箱、培养箱36±1℃、电炉、天平、冰箱、放大镜、pH计或
精密pH试纸、灭菌试管、平皿(直径9cm)、刻度吸管、采样瓶等。
III检验步骤
以无菌操作方法用灭菌刻度吸管吸取1ml充分混匀的水样,注入灭菌平皿中,倾注约
15ml已融化并冷却到45c左右的营养琼脂培养基,并立即旋摇平皿,使水样与培养基充分
混匀。每次检验时应做一平行接种,同时另用一个平皿只倾注营养琼脂培养基作为空白对
照。待冷却凝固后,翻转平皿,使底面向上,置于36±1℃培养箱内培养48h,进行菌落计
数,即为水样hnl中的菌落总数。
IV菌落计数及报告方法
作平皿菌落计数时,可用限睛直接观察,必要时用放大壁检查,以防遗漏。在记下各平
皿的菌落数后,应求出同稀释度的平均菌落数,供下一步计算时应用。在求同稀释度的平均
数时,若其中一个平皿有较大片状菌落生长时,则不宜采用,而应以无片状菌落生长的平皿
作为该稀释度的平均菌落数。若片状菌落不到平皿的一半,而其余一半中菌落数分布乂很均
匀,则可将此半平皿计数后乘2以代表全皿菌落数。然后再求该稀释度的平均菌落数。
i不同稀释度的选择及报告方法
①首先选择平均菌落数在30-300之间者进行计算,若只有一个稀释度的平均菌落数符合此
范围时,则讲该菌落数乘以稀释倍数报告之(见表1中实例1)。
②若有两个稀释度,其生长的菌落数均在30-300之间则视二者之比值来决定,若其比值小
于2应报告两者的平均数(如表1中实例2)。若大于2则报告其中稀释度较小的菌落总数
(如表1中实例3)。若等于2亦报告其中稀释度较小的菌落数(见表1中实例4)。
③若所有稀释度的平均菌落数均大于300,则应按稀释度最高的平均菌落数乘以稀释倍数
报告(见表1中实例5)。
©若所有稀释度的平均菌落数均小于30,则应以按稀释度最低的平均菌落数乘以稀释倍数
报告之(见表1中实例6)。
⑤若所有稀释度的平均菌落数均不在30-300之间,则应以最接近30或300的平均菌落数
乘以稀释倍数报告之(见表1中实例7)。
⑥若所有稀释度的平板上均无菌落生长,则以未检出报告之。
⑦如果所有平板上都有菌落密布,不要用“多不可计”报告,而应在稀释度最大的平板
二,任意数其中2个拼版1c而中的菌落数,除2求出每平方厘米内平均菌落数,乘以皿底面
积63.6cm2,在乘其稀释倍数坐报告。
⑧菌落计数的报告:菌落数在100以内时按实有数报告,大于100时,采用两位有效数
字,在两位有效数字后面数值,以四舍五入方法计算,为了缩短数字后面的零也可用10的
指数来表示(见表1”报告方式”栏)。
表1稀释度选择及菌落总数报告方式
实例不同稀释度的平均菌落数两个稀释度菌落总数报告方式/(cfu/ml)
菌落数之比(cfu/ml)
101io-210^
1136516420—1640016000或1.6X10'
22760295461.63775038000或3.8X10,
32890271602.22710027000或2.7XIO,
4150303215001500或1.5X103
5多不可计1650513—513000510000或5.1X105
627115——270270或2.7X102
7多不可计30512——3050031000或3.1X10,
6.2.1.5总大肠菌群(多管发酵法)
I培养基与试剂
i乳糖胆盐发酵培养基
成分(g/1):蛋白陈(20g)、乳糖(10g)、猪胆盐(5g)、溪甲酚紫(0.01g);
配制方法:称取乳糖胆盐发酵培养基35g,加入1000ml蒸储水中,加热煮沸溶解,分装于
有倒立发酵管的试管中,115℃高压灭菌15min,备用;
ii伊红美蓝琼脂
成分:腺(10g),牛肉浸粉(3g)、氯化钠(5g)、曙红纳(0.4g)、亚甲蓝
(0.065g)>乳糖(10g)、琼脂(14g);
配制方法:称取本品42.5克,加入1000ML蒸储水中,加热煮沸溶解,分装,121℃高压灭
菌,20min后备用;
iii革兰氏染色液
①结晶紫染色液
A成分:
a结晶紫1g
b乙醇(95%,体积分数)20mL
c草酸铁水溶液(10g/L)80mL
B制法:将结晶紫溶于乙醇中,然后与草酸镂溶液混合。
注:结晶紫不可用龙胆紫代替,前者是纯品,后者不是单一成分,易出现假阳性.结晶
紫溶液放置过久会产生沉淀,不能再用。
②革兰氏碘液
A成分:
a碘1g
b碘化钾2g
c蒸屈水300M1
B制法:将碘和碘化钾先进行混合,加入蒸播水少许,充分振摇,待完全溶解后,再
加蒸镯水。
③脱色剂
乙醉(95%,体积分数)。
④沙黄复染液
A成分:
a沙黄0.25g
b乙醇(95%,体积分数)10mL
c蒸储水90mL
B制法:将沙黄溶解于乙醇中,待完全溶解后加入蒸储水。
⑤染色法
A将培养18h-24h的培养物涂片。
B将涂片在火焰上固定,滴加结晶紫染色液,染1川in,水洗。
C滴加革兰氏碘液,作用Imin,水洗。
D滴加脱色剂,摇动玻片,直至无紫色脱落为止,约30s水洗。
E滴加亚染剂,复染Imin,水洗,待干,镜检。
II仪器
培养箱:36±1℃、冰箱:0℃-4℃、天平、显微镜、平皿:直径为90mm、试管、分度
吸管:1mL,10mL、锥形瓶、小导管、载玻片。
III检测步骤
i乳糖发酵试验
取10mL水样接种到10mL双料乳糖蛋白冻培养液中,取1mL水样接种到10mL单料乳糖
蛋白冻培养液中,另取1mL水样注入到9mL灭菌生理盐水中,混匀后吸取1疝(即0.1mL水
样)注入到10mL单料乳糖蛋白陈营养液中,每一种稀释度接种5管。检验水源水时,如污
染较严重,应加大稀释度,可接种1,0.1,0.01mL甚至0.1,0.0.1,0.001mL每个稀释度接种
5管,每个水样共接种15管。接种1mL以下水样时,必须作10倍递增稀释后,取1mL接
种,每递增稀释一次,换用一支1矶灭菌刻度吸管。将接种管置36℃±1℃培养箱内,培养
24h±2h,如所有乳糖蛋白陈培养管都不产气产酸,则可报告为大肠菌群阴性,如有产酸产气
者,则按下列步骤进行。
ii分离培养
将产酸产气的发酵管分别转种在伊红美蓝琼脂平板上,于366±1℃培养箱内培养18h-
24h,观察菌落形态,挑取符合下列特征的菌落作革兰氏染色、镜检和证实试验。
深紫黑色、具有金属光泽的菌落;
紫黑色、不带或略带金属光泽的菌落;
淡紫红色、中心较深的菌落。
iii证实试验
经上述染色镜检为革兰氏阴性无芽胞杆菌,同时接种乳糖蛋白冻培养液,置36C±1C
培养箱内培养24h±2h,有产酸产气者,即证实有总大肠菌群存在。
iv结果报告
根据证实为总大肠菌群阳性的管数,查MPNGnostprobablenumber,最可能数)检索
表,报告每100mL水样中的总大肠菌群最可能数(MPN)值。5管法结果见表2,15管法结果
见表3.稀释样品查表后所得结果应乘稀释倍数。如所有乳糖发酵管均阴性时,可报告总大
肠菌群未检出。
表2用5份10mL水样时各种阳性和阴性结果组合时的最可能数(MPN)
5个10mL管中阳性管数最可能数(MPN)
0<2.2
12.2
25.1
39.2
416.0
5>16
表3总大肠菌群MPN检索表
(总接种量55.5M1,其中5份10mL水样,5份1mL水样,5份0.1mL水样)
接种量/mL总大肠菌群/接种量/mL总大肠菌群/
1010.1(MPN/100M1)1010.1(MPN/100M1)\
000<21002
00121014
00241026
00351038
004710410
005910512
01021104
01141116
01261128
013711310
014911412
0151111514
02041206
02161218
022712210
023912312
0241112415
0251312517
接种量/mL总大肠菌群/接种量,mL总大肠菌群/
1010.1(MPN/100M1)1010.1(MPN/100M1)
03061308
031713110
032913212
0331113315
0341313417
0351513519
040814011
041914113
0421114215
0431314317
0441514419
0451714522
050915013
0511115115
0521315217
0531515319
0541715422
0551915524
接种量/mL总大肠菌群/接种量/mL总大肠菌群/
1010.1(MPN/100M1)1010.1(MPN/100M1)\
20053008
201730111
202930213
2031230316
2041430420
2051630523
210731011
211931114
2121231217
2131431320
2141731423
2151931527
220932014
2211232117
2221432220
2231732324
2241932427
2252232531
接种量/矶总大肠菌群/接种量/mL总大肠菌群/
1010.1(MPN/100M1)1010.1(MPN/100M1)
2301233017
2311433121
2321733224
2332033328
2342233432
2352533536
2401534021
2411734124
2422034228
2432334332
2442534436
2452834540
2501735025
2512035129
2522335232
2532635337
2542935441
2553235545
接种量/mL总大肠菌群/接种量/mL总大肠菌群/
1010.1(MPN/100M1)1010.1(MPN/100M1)\
4001350023
4011750131
4022150243
4032550358
4043050476
4053650595
4101751033
4112151146
4122651263
4133151384
41436514110
41542515130
4202252049
4212652170
4223252294
42338523120
42444524150
42550525180
接种量/mL总大肠菌群/接种量/mL总大肠菌群/
1010.1(MPN/100M1)1010.1(MPN/100M1)
4302753079
43133531110
43239532140
43345533180
43452534210
43559535250
44034540130
44140541170
44247542220
44354543280
44462544350
44569545430
45041550240
45148551350
45256552540
45364553920
454725541600
45581555>160
6.2.1.6耐热大肠菌群
I培养基与试剂
iEC培养基
成分:胰蛋白脓(20g)、三号胆盐(1.5g)、乳糖(5g)、硫酸氢二钾(4g)、氯化钠
(5g)、磷酸二氢钾(1.5g);
配制方法:称取本品37克,加入1000ML蒸储水中,加热煮沸溶解,分装到有玻璃小导管的
试管中,每管81nLi21℃高压灭菌15min后备用;
ii伊红美蓝琼脂(同上)
II仪器
恒温水浴:44.5℃±0.5℃或隔水式恒温培养箱、其他同总大肠菌群多管发酵法
III检验步骤
自总大肠菌群乳糖发酵试验中的阳性管(产酸产气)中取1滴转种于EC培养基中,置
于44.5℃水浴箱或隔水式恒温培养箱内(水浴箱的水面应高于试管中培养基液面),培养
24h±2h,如所有管均不产气,则可报告为阴性,如有产气者,则转种于伊红美蓝琼脂平板
上,置44.5C培养18h-24h,凡平板上有典型菌落者,则证实为耐热大肠菌群阳性。如检测
未经氯化消毒的水,且只想检测耐热大肠菌群时,或调查水源水的耐热大肠菌群污染时,可
用直接多管耐热大肠菌群方法,即在第一步乳糖发酵试验时按总大肠菌群接种乳糖胆盐发酵
培养基在44.5℃±0.水浴中培养。
IV结果报告
根据证实为耐热大肠菌群的阳性管数,查最可能数(MPN)检索表,报告每1000mL水样
中耐热大肠菌群的最可能数(MPN)值。
6.2.2水质总碱度的测定
6.2.2.1原理:用标准浓度的盐酸溶液滴定水样,用甲基橙做指示剂,根据指示剂颜色的变
化判断终点。根据滴定水样所消耗的标准浓度的盐酸溶液用量,即可计算出水样的总碱度。
6.2.2.2术语:是指水中能够接受川,%广即。强酸发生.中和反应的物质总量。
6.2.2.3仪器
50mL移液管
25mL酸式滴定管
250mL锥形瓶
6.2.2.4试剂
0.5%甲基橙指示剂
0.05mol/L盐酸标准溶液
6.2.2.4试剂
甲基橙指示剂(5g/L)
硫代硫酸钠溶液(0.Imol/L)
盐酸标准滴定溶液(0.02mol/L)
6.2.2.5步骤
6.2.2.5.1水样中余氯可破坏指示剂,当水样中含有余氯时,需要加入1-2滴0.Imol/L硫
代硫酸钠溶液消除。
6.2.2.5.2移取50.00mL水样于250mL锥形瓶中.加入4滴甲基橙指示剂.摇匀。用盐酸标
准溶液滴定至溶液由桔黄色刚刚变为桔红色为止。记录盐酸标准溶液用量vl0
6.2.2.5.3水样中总碱度的计算
总碱度P(以CaC(h计,mg/L)=[C(HCL)XO.05005XV,]/VX10e
式中:p(CaCO3)水样的总碱度,mg/L;
c(HCl)―盐酸标准溶液的浓度,mol/L;
V.一一滴定水样消耗标准盐酸溶液的体积,矶;
V所取水样的体积,mL;
0.05005——与1.00mL盐酸标准滴定溶液[c(HC1)=1.000mol/L]相当的,以克
表示的碳酸钙(l/2CaC03)的质量。
6.2.3水质总硬度的测定
6.2.3.1原理:水样中的钙、镁离子与铭黑T指示剂形成紫红色螯合物,这些螯合物的不稳
定常数大于乙二胺四乙酸钙和镁整合物不稳定常数。当PH=10时,乙二胺四乙酸二钠先与钙
离子,再与镁离子形成螯合物,滴定至终点时,溶液呈现出络黑T指示剂的纯蓝色。
6.2.3.2总硬度术语:水中钙、镁离子和其他金属离子的总含量,因其他金属离子的含量很
少,一般情况下,总硬度表示钙、镁离子的含量。
6.2.3.3仪器
50mL移液管
25mL酸式滴定管
250mL锥形瓶
6.2.3.4试剂
铭黑T指示剂(0.5%)
缓冲溶液(pH=10)
乙二胺四乙酸二钠标准滴定溶液(0.01mol/L)
6.2.3.5步骤
6.2.3.5.1吸取50.0mL水样(若硬度过高,可取适量水样,用蒸馀水稀释至50mL,若硬度
过低,改用100mL),置于25QmL锥形瓶中。
6.2.3.5.2加入1〜2mL缓冲溶液(pH=10)和5滴辂黑T指示剂,立即用乙二胺四乙酸二钠
标准溶液滴定至溶液从紫红色成为不变的纯蓝色为止,若水祥经过稀释则需做空白试验,记
下乙二胺四乙酸二钠标准溶液用量。
6.2.3.5.3水样中钙、镁含量较大时,要预先酸化水样,并加热除去二氧化碳,以防碱化
后生成碳酸盐沉淀,滴定时不易转化。
6.2.3.5.4水样中总硬度的计算
(匕-^)x^xl00.09xl000
p(CaCO,)=
,(6)
式中:p(CaC03)一一总硬度(以CaCO:,计),mg/L;
V.一一滴定中消耗EDTA-2Na溶液体积,mL;
Vo一一空白消耗EDTA-2Na溶液体枳,mL;
c一一EDTA-2Na-标准溶液的浓度,mol/L;
V——水样的体积,单位为亳升(mL)
100.09—与1.00mLEDTA-2Na标准溶液[c(EDTA-2Na)=l.000mol/L]相当的
以克表示的碳酸钙的质量;
6.2.4水质PH的测定
6.2.4.1原理:以玻璃电极为指示电极,饱和甘汞电极为参比电极,插入溶液中组成原电
池。当氢离子浓度发生变化时,玻璃电极和甘汞电极之间的电动势也随着变化,在25℃
时,每单位PH标度相当于59.1mV电动势变化值,在仪器上直接以PH的读数显示,在仪器
二有温度差异补偿装置。
6.2.4.2仪器
G.2.4.2.1酸度计(6173PH):测量范围-6.00-20.00PH单位,精密度_L0.01PH
6.2.4.2.250mL烧杯
6.2.4.3步骤
6.2.4.3.1酸度计的操作按仪器使用说明书或操作规程的要求进行。
6.2.4.3.2测量时,用洗瓶缓缓淋洗电极数次,再用待测水样淋洗3-5次,然后插入待测
水样中,待仪器数值显示稳定后,读出水样的PH值。
6.2.5水质电导率的测定
6.2.5.1原理:在电解质的溶液里,离子在电场的作业下,由于离子的移动具有导电作业。
在相同温度下测定水样的电导G它与水样的电阻R呈倒数关系按下式⑴计算:
G=1+R(1)
在一定条件下,水样的电导随着离子含量的增加而升高,而电阻则降低。因此,电导
率r就是电流通过单位面积A为Icn?距离L为1cm的两钻黑电极的电导能力,按式⑵计
算:
r=GX14-R(2)
即电导率r为给给定的电导率常数C与水样电阻R,的比值,按⑶式计算
r=CXGs=C-7-RsX10"(3)
只要测定出水样的Rs或水样的Gs,电导率r即可得出,单位表示为Ps/cmo
6.2.5.2仪器
6.2.5.2.1DDS-307A电导率仪:测量范围:0-1X104Ps/cm
6.2.5.2.250mL烧杯
6.2.5.3步骤
6.2.5.3.1电导率仪的操作按仪器使用说明书或操作规程的要求进行。
6.2.5.3.2测量时,用洗瓶缓缓淋洗电极数次,再用待测水样淋洗3-5次,然后浸入待测水
样中进行电导率的测定,重复取样测定2-3次,测定结果读数相对误差均在±设以内,即
为所测的电导率值。
6.2.6水质浊度的测定
6.2.6.1原理:在相同条件下,用无浊度水的散射光的强度与水样的散射光的强度进行比
较,散射光强度越大,表明浊度越高。
6.2.6.2试剂
无浊度水:将蒸储水通过0.2um滤膜过滤,收集于用滤过的水淋洗两次的烧杯中。
6.2.6.3仪器:
TSZ型台式浊度仪:量程:0-400NTU,最小分辨:0.001NTU
6.2.6.4步骤
6.2.6.4.1TSZ型台式浊度仪的操作按仪器使用说明书或操作规程的要求进行。
6.2.6.4.2装入待测水样的测量瓶需擦净水迹或指卬并放入样品池里。
6.2.6.4.3待仪器数值显示稳定后直接读取水样的浊度。
6.2.7水质游离余氯的测定
6.2.7.1术语
游离余氯:以次氯酸,次氯酸离子和溶解的单质氯形式存在的氯。
62.7.2检测方法
PicketColorimeter'1II口袋型比色计法;
3,3-,5,5•一四甲基联苯胺比色法;
DPD余氯检测法
6.2.7.3PicketColorimeter11II口袋型比色计法
6.2.7.3PicketColorimeter™I【口袋型比色计的操作按仪器使用说明书或操作规程的
要求进行。
6.2.7.3.1水样采样后应立⑷测定,自始至终避免强光、振摇和温热,测定过程应在一分
钟内完成。
6.2.7.3.2假如在水样中添加试剂后,有短暂黄色产生,表示水中氯浓度过高,请重新稀
稗水样后,再重新分析,读值后,再乘以稀释倍数,得实际浓度
6.2.7.43,3',5,5四甲基联苯胺比色法
6.274.1原理
在PH小于2的酸性溶液中,余氯与3,3',5,5-四甲基联苯胺(以下简称四甲基联苯
胺),生成黄色的酸式化合物,用目视比色法定量,本法可用重珞酸钾配制永久性余氯标
准色列。
6.2.7.4.2试剂J
1.氯化钾-盐酸缓冲溶液(PH2.2):称取3.7g经100CTUTC干燥至恒重的氯化钾,用纯
水溶解,再加0.56ml盐酸(盐酸密度为1.19g/ml),并用纯水稀释至1000ml。
2.盐酸溶液(1+4)
3.3,3',5,5-四甲基联苯胺溶液(O.3g/L):称取O.O3g3,3,,5,5-四甲基联苯胺用
100ml盐酸溶液[c(HCL)=0.1mol//L]分批加入并搅拌使试剂溶解(必要时可加温助溶),混
匀,次溶液应无色透明,储存于棕色瓶中,常温下课保存6个月。
4.重倍酸钾-格酸钾溶液:称取0.1550g经120℃干燥至恒重的重铝酸钾及0.4650g经120℃
干燥至恒重的铝酸钾,溶解于氯化钾-盐酸缓冲溶液中,并稀释至1000m]。此溶液生成的颜
色相当于lmg/L余氯与四甲基琰苯胺生成的颜色。
5.岫2-EDTA溶液(20g/L)
6.2.7.4.3仪器
具色比色管,50ml
6.2.7.4.4分析步骤
6.2.7.4.4.1永久性余氯标准比色管(0.005mg/L-1.0mg/L)的配制。按表2所列用量分别吸收
重铝酸钾-辂酸钾溶液注入50ml具色比色管中,用氯化钾-盐酸缓冲溶液稀释至50ml到刻
度,在冷暗处可保存6个月o
表20.005mg/L-1.0mg/L永久性余氯标准比色管的配制
余氯(mg/L)重辂酸钾■珞酸钾溶液/ml余氯(mg/L)重锯酸钾-钠酸钾溶液/句
0.0050.250.4020.0
0.010.500.5025.0
0.031.500.6030.0
0.052.500.7035.0
0.105.00.8040.0
0.2010.00.9045.0
0.3015.01.050.0
注;若水样余氯大于1mg/L时,可将重辂酸钾-锚酸钾溶液的浓度提供10倍,配成相当
lOmg/L余氯的标准色,配制成1.0mg/L-10mg/L的永久性余氯标准色列
6.2.7.4.4.2于50ml具色比色管中,先加入2.5ml四甲基联苯胺溶液,加入澄清水样至
50ml刻度,混合后立即比色,所得结果为游离余氯;放置10分钟,比色所得结果为总余
氯,总余氯减去游离余氯即为化合余氯。
注:1.PH值大于7的水样可先用盐酸溶液调节PH为4再进行测定。
2.水样中钛离子大于0.12mg/L时,,可在每50ml水样中加1-2滴Na2-EDTA溶液,以消
除干扰。
3.水温低于20c时,可先温热水样至25C-3(TC,以加快反应速度。
4.测试时,如显浅蓝色,表明显色液酸度偏低,可多加1ml试剂,又如加试剂后,出现
桔色,表示余氯含量过高,可改用余氯1.0mg/L・10mg/L的标准系列,并多加1ml试剂。
6.2.7.5DPD余氯检测法
6.2.7.5.1试剂
DPD余氯检测试剂盒
6.2.7.5.2检测方法
取水样于15ml试剂瓶至刻度,加入一袋DPD余规检测试剂,充分摇匀,10s后与DPD余氯检测
试剂盒内的比色卡比色,比色卡余氯浓度范围为O.O5mg/L-10mg/L,试剂瓶内颜色与比色卡
二颜色接近的浓度即为水样的余氯含量。
6.2.8测定结果必须做好质量记录并存档。
6.2.9水质异常纠偏措施
水
序样异常情况描述纠正措施
号
停止用水,排放或更换自来水。然后查明原因,采取相应的纠正
1检出大肠菌群
预防措施,待验证评估井水合格后方可使用
菌落总数大于停止用水,排放或更换自来水。然后查明原因,采取相应的纠正
2
100CFU/mL预防措施,待验证评估井水合格后方可使用
停止用水,排放或更换自来水。然后查明原因,采取相应的纠正
3有异味
预防措施,待验证评估井水合格后方可使用
停止用水,排放或更换自来水。然后查明原因,采取相应的纠正
值大于
4pH8.5预防措施,待验证评估井水合格后方可使用
井停止用水,排放或更换自来水。然后行明原因,采取相应的纠正
水总硬度大于
5450mg/l预防措施,待验证评估井水合格后方可使用
停止用水,排放或更换自来水。然后查明原因,采取相应的纠正
5总碱度大于150mg/l
预防措施,待验证评估井水合格后方可使用
停止用水,排放或更换自来水。然后查明原因,采取相应的纠正
7浊度大于1NTU
预防措施,待验证评估井水合格后方可使用
停止用水,排放或更换自来水。然后查明原因,采取相应的纠正
余氯大于
30.3mg/l预防措施,待验证评估井水合格后方可使用
停止用水,补加余氯或更换自来水,待验证评估井水合格后方可
余氯小于
90.05mg/l使用
工停止用水,依据《工艺水处理系统清洗消毒规范》对水处理设备
10检出大肠菌群
艺进行清洗消毒
水由落总数大亍停止用水,依据《工艺水处理系统清洗洎毒规范》对水处理设备
11
100CFU/mL进行清洗消毒
停止用水,依据《工艺水处理系统清洗消毒规范》对水处理设备
12有异味
进行清洗消毒
13pH值大于8.5调节混合水比例,待验证评估合格后方可使用
14总硬度大于75mg/l调节混合水比例,待验证评估合格后方可使用
15总碱度大于75mg/l调节混合水比例,待验证评估合格后方可使用
16浊度大于1NTU调节混合水比例,待验证评估合格后方可使用
17电导率大于200u/cm调节混合水比例,待验证评估合格后方可使用
18余氯大于0.lmg/1调节混合水比例,待验证评估合格后方可使用
6.3水处理系统清洗、消毒效果验证
清消
洗
毒
法
序清洗介方质量控制
设备名称消毒介质效果验证方法
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