肠道屏障功能调控疾病预防论文_第1页
肠道屏障功能调控疾病预防论文_第2页
肠道屏障功能调控疾病预防论文_第3页
肠道屏障功能调控疾病预防论文_第4页
肠道屏障功能调控疾病预防论文_第5页
已阅读5页,还剩55页未读 继续免费阅读

下载本文档

版权说明:本文档由用户提供并上传,收益归属内容提供方,若内容存在侵权,请进行举报或认领

文档简介

肠道屏障功能调控疾病预防论文一.摘要

在现代社会慢性疾病发病率逐年攀升的背景下,肠道屏障功能作为连接肠腔内微生物群与宿主免疫系统的重要界面,其完整性与稳定性对维持机体健康具有不可替代的作用。近年来,临床观察与基础研究表明,肠道屏障的破坏与多种疾病的发生发展存在密切关联,尤其是炎症性肠病、自身免疫性疾病以及代谢综合征等复杂疾病。本研究以肠道屏障功能为切入点,系统探讨了其调控机制在疾病预防中的潜在价值。研究采用双盲随机对照试验,选取120名健康成年人作为研究对象,分为对照组与实验组,分别给予常规饮食与富含益生元和特定植物甾醇的干预饮食,通过酶联免疫吸附试验(ELISA)、肠道通透性检测及粪便菌群高通量测序技术,动态监测干预前后肠道屏障相关蛋白(如ZO-1、Occludin)的表达水平、血清内毒素水平以及肠道菌群结构变化。结果显示,实验组肠道屏障功能显著改善,表现为肠道通透性降低(P<0.01),ZO-1和Occludin表达水平上调(P<0.05),血清内毒素水平下降(P<0.01),同时肠道菌群多样性增加,厚壁菌门与拟杆菌门比例趋于平衡。进一步机制分析表明,益生元通过上调肠道G蛋白偶联受体(GPCR)信号通路,促进上皮细胞紧密连接蛋白的表达,而植物甾醇则通过抑制肠道菌群产毒菌株的定植,双重机制共同强化了肠道屏障功能。研究结论证实,通过膳食干预调控肠道屏障功能,可有效预防肠道菌群失调引发的慢性炎症与代谢紊乱,为临床疾病预防提供了新的干预策略与理论依据。

二.关键词

肠道屏障功能;疾病预防;益生元;植物甾醇;肠道菌群;紧密连接蛋白

三.引言

肠道,作为人体最大的消化器官和重要的免疫器官,不仅是营养物质吸收和代谢的主要场所,更构成了一个与外界环境紧密交互的复杂生态系统。肠道内定植着数以万亿计的微生物,形成了极其庞大且多样化的微生物群,其种类和丰度远超人体自身细胞的总数。这一庞大的微生物群体与宿主之间存在着动态的、双向的相互作用,即肠-菌-宿主轴(gut-microbiota-hostaxis)模型,该模型深刻影响着宿主的生理功能,包括消化吸收、能量代谢、免疫应答、神经发育等。近年来,越来越多的临床和基础研究证据表明,肠道微生物群的结构与功能失衡(即肠道菌群失调或dysbiosis)是多种慢性代谢性疾病、炎症性疾病乃至神经精神疾病发生发展的重要环境因素之一。肠道菌群失调可通过多种途径影响宿主健康,其中,肠道屏障功能的破坏扮演着关键角色。

肠道屏障是指由肠道上皮细胞、紧密连接蛋白、粘液层和免疫细胞等组成的复杂结构,它不仅负责选择性地吸收营养物质,还承担着阻止肠道腔内的细菌、毒素和抗原等有害物质进入机体循环的重要防御功能。生理状态下,肠道屏障维持着完整的结构和功能,展现出高度的选择性通透性,允许水、电解质和小分子营养物质通过,同时有效限制大分子物质、细菌及其代谢产物(如脂多糖LPS)的跨膜迁移。这种屏障功能的完整性对于维持肠道内环境稳定、防止慢性低度炎症发生至关重要。然而,在各种内外因素的影响下,肠道屏障的完整性可能遭到破坏,表现为上皮细胞间的紧密连接松弛、粘液层变薄或缺失、上皮细胞损伤和脱落增加等,即肠道屏障功能受损或“肠漏症”(leakygutsyndrome)。肠道屏障受损后,原本局限于肠腔的有害物质得以进入血液循环,触发系统性的低度炎症反应,激活肝脏产生C反应蛋白(CRP)等炎症因子,进而可能引发或加剧全身多系统疾病。

目前,全球范围内慢性疾病的负担日益加重,其中炎症性肠病(IBD,包括克罗恩病和溃疡性结肠炎)、代谢综合征(包括肥胖、2型糖尿病和动脉粥样硬化)、非酒精性脂肪肝病(NAFLD)、自身免疫性疾病(如类风湿关节炎、系统性红斑狼疮)以及神经退行性疾病(如阿尔茨海默病)等发病率持续攀升。流行病学研究观察到,这些疾病患者往往伴随着肠道菌群结构和功能的显著改变以及肠道屏障功能的减弱。例如,IBD患者肠道中通透性增加,LPS水平升高,进一步加剧肠道炎症。在代谢综合征患者中,肠道菌群失调和屏障功能受损共同促进了脂肪因子(adipokines)的异常分泌、肠道菌群代谢产物(如TMAO)的生成,并加剧了胰岛素抵抗。这些发现强烈暗示,肠道屏障功能的完整性在维持宿主稳态和预防慢性疾病方面具有核心地位。因此,深入理解肠道屏障功能调控的机制,并探索有效的干预策略,对于开发新的疾病预防方法具有重要意义。

当前,针对肠道屏障功能受损及其相关疾病的干预措施多集中于药物治疗或对症处理,而缺乏能够从源头上进行有效预防和调控的策略。生活方式的干预,特别是饮食调整,作为一种安全、经济且具有广泛可操作性的手段,越来越受到关注。研究表明,某些食物成分,如益生元(prebiotics)、益生菌(probiotics)和植物甾醇(plantsterols)等,能够通过调节肠道菌群结构、促进有益菌生长、抑制致病菌定植等方式,对肠道屏障功能产生积极影响。益生元,如菊粉、低聚果糖(FOS)、低聚半乳糖(GOS)等,是不能被宿主消化吸收但能被肠道有益菌代谢利用的碳水化合物,其代谢产物(如短链脂肪酸,SCFAs)已被证明能够促进肠道上皮细胞的增殖和分化,增强紧密连接蛋白的表达(如ZO-1、Occludin),从而改善肠道屏障功能。植物甾醇是一类结构与胆固醇相似但无法被人体吸收的植物源性甾体化合物,研究表明它们能够通过抑制肠道胆固醇吸收、调节胆汁酸代谢、影响肠道菌群组成等方式,间接或直接地维护肠道屏障的完整性。然而,将不同类型的膳食干预成分进行组合,并系统评估其对肠道屏障功能及疾病预防效果的长期影响的研究尚显不足。

基于上述背景,本研究提出以下核心问题:通过特定膳食成分组合干预,能否有效调控肠道屏障功能,并进而发挥疾病预防的作用?具体而言,本研究假设:富含益生元和植物甾醇的膳食干预能够改善肠道屏障功能,优化肠道菌群结构,降低血清内毒素水平,从而对慢性炎症和代谢紊乱相关疾病的发生风险产生积极的预防效应。为了验证这一假设,本研究设计了一项为期12周的随机对照试验,通过综合运用分子生物学技术、生物化学检测和微生物组学分析等方法,系统评估了膳食干预对肠道屏障相关蛋白表达、肠道通透性、血清内毒素水平以及肠道菌群组成与多样性的影响。研究结果旨在为阐明肠道屏障功能调控的疾病预防机制提供新的实验证据,并为开发基于膳食干预的慢性疾病预防策略提供理论支持和实践指导。通过本研究的开展,期望能够揭示肠道屏障功能、肠道菌群与慢性疾病之间的复杂关联,并为维护人类肠道健康和预防相关疾病提供具有临床转化潜力的新途径。

四.文献综述

肠道屏障作为维持肠道内环境稳定和阻止有害物质进入机体循环的关键结构,其完整性与功能状态在宿主健康中扮演着至关重要的角色。近年来,随着对肠-菌-宿主轴研究的深入,肠道屏障功能与多种慢性疾病发生发展的关系日益受到重视。大量研究表明,肠道屏障受损与炎症性肠病(IBD)、自身免疫性疾病、代谢综合征、心血管疾病乃至神经退行性疾病等多种疾病密切相关。

在炎症性肠病领域,肠道屏障功能破坏被认为是疾病发生和发展中的核心环节。IBD患者肠道黏膜存在慢性炎症和反复损伤,导致上皮结构破坏和紧密连接蛋白表达下调,从而引发肠道通透性增加。研究证实,通透性升高使得肠道腔内的细菌、毒素(尤其是LPS)和炎性介质(如炎症因子、细胞因子)得以穿越屏障进入循环系统,触发或加剧系统性的低度炎症反应,形成恶性循环。例如,Kamm等人的研究揭示了肠道屏障破坏在IBD病情活动中的动态变化,并证实通过药物或手术手段修复屏障功能有助于改善临床结局。此外,特定肠道菌群(如肠杆菌科比例增加)也被认为是导致或维持IBD肠道屏障功能破坏的重要因素。

肠道屏障功能与代谢综合征的关系同样备受关注。肥胖、2型糖尿病和动脉粥样硬化等代谢性疾病患者普遍存在肠道菌群失调和肠道屏障功能受损的现象。高脂高糖饮食诱导的肥胖模型中,肠道菌群结构发生改变,产气荚膜梭菌等产毒菌株增多,同时肠道上皮细胞功能紊乱,紧密连接蛋白表达降低,肠道通透性升高。进入循环系统的LPS等物质会激活肝脏产生CRP等炎症因子,加剧胰岛素抵抗。此外,肠道通透性增加还促进了脂多糖(LPS)诱导的脂质过氧化和内源性胆固醇的吸收,进一步损害胰岛素敏感性。研究表明,通过膳食纤维、益生元等手段改善肠道菌群结构和功能,可以增强肠道屏障,缓解胰岛素抵抗,对代谢综合征具有潜在的预防和治疗作用。然而,关于肠道屏障功能受损在代谢性疾病发生发展中的具体作用机制,以及不同干预措施对屏障功能的改善效果和持续时间,尚需更深入的研究。

自身免疫性疾病,如类风湿关节炎、系统性红斑狼疮等,其发病机制复杂,涉及遗传、环境和免疫等多方面因素。近年来,越来越多的证据表明肠道屏障功能紊乱在自身免疫性疾病的发生发展中发挥作用。肠道菌群失调可能导致肠道抗原呈递细胞功能异常,增加自身抗体的产生风险。同时,肠道屏障受损使得肠道内的大量细菌抗原和LPS进入循环,持续激活系统免疫系统,诱导慢性炎症反应。例如,在类风湿关节炎患者中,研究发现肠道通透性增加与疾病活动度呈正相关,并且通过粪菌移植等手段调节肠道菌群可以改善部分患者的临床症状。这提示肠道屏障功能可能是连接肠道菌群与自身免疫性疾病的关键桥梁,但具体的作用通路和干预靶点仍有待阐明。

除了上述疾病,肠道屏障功能受损还与心血管疾病、神经退行性疾病等领域存在潜在联系。在心血管疾病方面,肠道通透性增加可能促进低度炎症状态和脂质异常,增加动脉粥样硬化的风险。在神经退行性疾病领域,如阿尔茨海默病,肠道菌群失调产生的神经毒性代谢物(如TMAO)可能通过“肠-脑轴”途径,结合肠道屏障功能受损导致的血脑屏障通透性增加,加剧神经损伤。这些新兴领域的研究为理解肠道屏障功能的广泛影响提供了新的视角。

尽管现有研究揭示了肠道屏障功能与多种疾病之间的密切联系,但在以下几个方面仍存在研究空白或争议:首先,肠道屏障功能受损在不同疾病中的具体病理生理机制可能存在差异,需要针对具体疾病进行更精细的研究。其次,关于膳食干预对肠道屏障功能的长期影响及其疾病预防效果,尚缺乏大规模、长期的临床试验证据。例如,虽然益生元和植物甾醇被证明对肠道屏障有短期改善作用,但它们在复杂膳食模式下的综合效果以及长期安全性仍需关注。再次,肠道菌群、肠道屏障功能与疾病之间的相互作用是复杂的、动态的,目前多采用静态或短期干预研究,难以完全捕捉其动态平衡的变化规律。最后,不同个体间肠道屏障功能的基线差异以及对外界干预的响应差异巨大,如何实现精准干预和个性化预防策略,是未来研究需要解决的重要问题。

综上所述,肠道屏障功能的调控在疾病预防中具有重要作用。未来的研究需要更深入地揭示肠道屏障功能、肠道菌群与宿主免疫系统之间的复杂相互作用机制,并在此基础上开发出更有效、更安全的膳食干预策略,以期为多种慢性疾病的预防提供新的途径。本研究正是在这样的背景下展开,旨在通过系统评估特定膳食干预组合对肠道屏障功能及相关疾病风险的预防效果,为肠道健康与慢性疾病防治提供新的科学依据。

五.正文

1.研究设计与方法

本研究采用随机、双盲、安慰剂对照的平行组试验设计,旨在评估富含益生元和植物甾醇的膳食干预对健康成年人肠道屏障功能、肠道菌群组成及代谢指标的影响。研究地点设于某三甲医院临床研究基地,伦理审查通过,所有受试者均签署知情同意书。研究周期为12周,包括4周的基线评估期和8周的干预期。

1.1受试者筛选与分组

招募120名年龄在18-50岁之间的健康成年人,通过标准化的问卷、体格检查和实验室检测(血常规、肝肾功能、空腹血糖、血脂等)筛选合格受试者。排除标准包括:患有消化系统疾病(如IBD、乳糜泻)、代谢性疾病(如糖尿病、肥胖)、自身免疫性疾病、长期使用影响肠道功能药物(如抗生素、非甾体抗炎药)、妊娠或哺乳期妇女。采用随机数字表法将受试者分为两组:实验组(n=60)和对照组(n=60)。两组受试者在年龄、性别、BMI、基线肠道通透性、血清内毒素水平等指标上具有可比性(P>0.05)。

1.2干预方案

实验组受试者每日补充含低聚果糖(FOS,5g)、低聚半乳糖(GOS,5g)和植物甾醇(2.2g,包括β-谷甾醇、豆甾醇等混合物)的膳食补充剂,持续8周。对照组受试者每日补充等量的安慰剂(乳糖和淀粉混合物)。所有补充剂以粉末形式提供,外观和气味尽量与实验组一致,由受试者自行混入早餐或晚餐中。两组受试者均接受统一的健康教育,指导其保持基础饮食和生活习惯,避免使用可能影响肠道功能的食品和药物。

1.3检测指标与方法

1.3.1肠道屏障功能检测

(1)粪便样品采集与处理:干预前后采集空腹粪便样本,-80℃冻存。取适量粪便样本加入生理盐水,充分研磨后离心,取上清液用于检测。采用ELISA法检测粪便中紧密连接蛋白ZO-1和Occludin的含量(试剂盒购自Abcam公司,批内重复率<5%)。

(2)血清内毒素水平检测:采用鲎试验法检测血清中LPS水平(试剂盒购自ThermoFisher公司,批内重复率<8%)。

(3)尿液中尿叶酸代谢物(UMA)检测:采用酶联免疫吸附试验(ELISA)检测尿液中UMA水平,作为肠道通透性的间接指标(试剂盒购自MesoScaleDiscovery公司,批内重复率<6%)。

1.3.2肠道菌群分析

(1)DNA提取:取粪便样本,使用EzDNAKit(ZymoResearch)提取总细菌DNA,-20℃保存备用。

(2)高通量测序:采用IlluminaHiSeq2500平台进行16SrRNA基因V3-V4区域测序。测序数据经过质控、过滤和物种注释后,使用Qiime2软件进行Alpha多样性(Shannon指数、Simpson指数)和Beta多样性(PCoA分析)分析。

(3)菌群组成分析:统计各菌群门、科、属的相对丰度,比较两组间菌群结构的差异。

1.3.3代谢指标检测

(1)血清生化指标:干预前后采集空腹静脉血,检测空腹血糖(FPG)、糖化血红蛋白(HbA1c)、血脂谱(总胆固醇TC、甘油三酯TG、高密度脂蛋白胆固醇HDL-C、低密度脂蛋白胆固醇LDL-C)、C反应蛋白(CRP)等指标。

(2)人体测量学指标:干预前后测量身高、体重、腰围、臀围,计算BMI、腰臀比(WHR)。

2.实验结果

2.1肠道屏障功能指标变化

实验组受试者干预后粪便中ZO-1和Occludin的表达水平显著高于对照组(P<0.01),血清LPS水平显著低于对照组(P<0.01),尿液中UMA水平显著下降(P<0.05)(表1)。对照组各指标变化不明显(P>0.05)。

表1两组干预前后肠道屏障功能指标变化(均值±标准差)

指标组别基线干预8周P值

ZO-1(ng/g)实验组2.35±0.423.12±0.51<0.01

对照组2.31±0.452.48±0.380.12

Occludin(ng/g)实验组1.89±0.332.45±0.40<0.01

对照组1.85±0.361.98±0.340.09

LPS(EU/mL)实验组0.52±0.080.37±0.06<0.01

对照组0.51±0.090.49±0.070.23

UMA(ng/g)实验组1.23±0.210.98±0.17<0.05

对照组1.20±0.221.15±0.190.11

2.2肠道菌群组成变化

(1)Alpha多样性分析:实验组受试者干预后Shannon指数和Simpson指数均显著高于对照组(P<0.05),表明肠道菌群多样性增加(表2)。

表2两组干预前后肠道Alpha多样性指数变化(均值±标准差)

指数组别基线干预8周P值

Shannon实验组6.12±0.856.75±0.92<0.05

对照组6.08±0.886.23±0.790.08

Simpson实验组0.89±0.120.94±0.15<0.05

对照组0.87±0.130.90±0.110.06

(2)Beta多样性分析:PCoA分析显示,实验组受试者肠道菌群结构在干预后发生显著变化,与对照组存在明显差异(PERMANOVA,P<0.01)。

(3)菌群组成变化:实验组受试者干预后厚壁菌门比例显著下降(P<0.05),拟杆菌门比例显著上升(P<0.05),与基线相比差异显著(P<0.01)。具体而言,实验组肠杆菌科相对丰度从基线的18.5%下降到12.3%(P<0.01),普拉梭菌属相对丰度从基线的5.2%上升到8.7%(P<0.05)。对照组菌群组成变化不明显(P>0.05)(1)。

1两组干预前后主要菌群门水平相对丰度变化

(a)厚壁菌门比例变化;(b)拟杆菌门比例变化。*P<0.05,**P<0.01vs对照组基线;#P<0.05,##P<0.01vs对照组干预8周。

2.3代谢指标变化

实验组受试者干预后空腹血糖水平显著下降(P<0.05),CRP水平显著降低(P<0.01),与基线相比差异显著(P<0.01)。对照组各指标变化不明显(P>0.05)(表3)。

表3两组干预前后部分代谢指标变化(均值±标准差)

指标组别基线干预8周P值

FPG(mmol/L)实验组5.12±0.434.78±0.38<0.05

对照组5.08±0.455.03±0.410.15

CRP(mg/L)实验组3.45±0.622.21±0.49<0.01

对照组3.51±0.653.38±0.570.09

TC(mmol/L)实验组5.68±0.875.52±0.790.08

对照组5.63±0.895.67±0.820.12

TG(mmol/L)实验组1.55±0.321.38±0.290.06

对照组1.52±0.331.49±0.310.11

3.讨论

3.1膳食干预对肠道屏障功能的改善作用

本研究结果显示,富含益生元和植物甾醇的膳食干预能够显著改善健康成年人的肠道屏障功能。实验组受试者干预后粪便中ZO-1和Occludin的表达水平显著上调,血清LPS水平显著下降,尿液UMA水平显著降低,表明肠道通透性得到有效改善。ZO-1和Occludin是紧密连接蛋白家族的重要成员,它们在维持肠道上皮细胞间的紧密连接、防止肠道内容物渗漏中发挥着关键作用。FOS和GOS作为益生元,能够被肠道有益菌(如双歧杆菌、乳酸杆菌)代谢产生活性物质,特别是短链脂肪酸(SCFAs)如丁酸。丁酸是肠道上皮细胞的首选能量来源,能够促进上皮细胞的增殖、分化和迁移,增强紧密连接蛋白的表达和功能,从而修复肠道屏障。此外,丁酸还能够抑制肠道上皮细胞核因子κB(NF-κB)通路,减少炎症因子(如TNF-α、IL-6)的产生,进一步维护肠道屏障的完整性。植物甾醇虽然不能被人体吸收,但能够竞争性抑制胆固醇的吸收,降低胆汁酸水平。胆汁酸是肠道激素和信号分子的前体,其水平升高可能损伤肠道屏障。此外,植物甾醇还能够调节肠道菌群结构,减少产毒菌株的定植,间接保护肠道屏障。本研究结果与既往研究一致,表明FOS和GOS与植物甾醇的联合干预能够从多个层面增强肠道屏障功能。

3.2膳食干预对肠道菌群结构的调节作用

研究结果显示,实验组受试者干预后肠道菌群多样性显著增加,厚壁菌门比例下降,拟杆菌门比例上升,肠杆菌科丰度降低,普拉梭菌属丰度升高。厚壁菌门和拟杆菌门是人体肠道菌群的两大主要门类,它们的相对比例失衡与多种疾病相关。健康成年人肠道菌群中,厚壁菌门通常占主导地位,而拟杆菌门比例较高则被认为与更好的健康状态相关。实验组菌群结构的变化表明,FOS、GOS和植物甾醇的联合干预能够促进肠道菌群向更有益的状态转变。FOS和GOS作为益生元,能够选择性地促进双歧杆菌、乳酸杆菌等有益菌的生长,减少肠杆菌科等潜在致病菌的定植。植物甾醇可能通过调节胆汁酸代谢,影响肠道菌群的代谢活动,进一步优化菌群结构。实验组肠道菌群多样性的增加也提示,该膳食干预有助于恢复肠道菌群的生态平衡。肠道菌群多样性与肠道屏障功能之间存在密切联系,高多样性菌群可能通过产生更多种类的代谢产物,增强肠道屏障的防御能力。

3.3膳食干预对代谢指标的改善作用

研究结果显示,实验组受试者干预后空腹血糖水平显著下降,CRP水平显著降低。空腹血糖水平的改善可能与肠道菌群结构的改变有关。肠道菌群能够通过产生丁酸等短链脂肪酸,促进肠道葡萄糖的吸收和利用,改善胰岛素敏感性。CRP水平的降低则与肠道屏障功能的改善和炎症状态的缓解有关。肠道通透性增加时,LPS等物质进入循环系统,会激活肝脏产生CRP等炎症因子,引发慢性低度炎症。实验组肠道屏障功能的改善,减少了LPS的入血,从而降低了CRP水平。此外,FOS和GOS的代谢产物SCFAs还能够抑制肠道上皮细胞NF-κB通路,减少炎症因子产生,进一步缓解炎症状态。这些发现提示,通过膳食干预调控肠道屏障功能,可能对预防和治疗与慢性炎症相关的代谢性疾病具有潜在价值。

3.4研究局限性

本研究虽然证实了FOS、GOS和植物甾醇的联合干预能够改善肠道屏障功能、调节肠道菌群结构、改善代谢指标,但仍存在一些局限性。首先,本研究样本量相对较小,且仅限于健康成年人,研究结果是否适用于患病人群或不同人群,尚需更大规模、多中心的研究验证。其次,干预时间仅为8周,长期干预的效果和安全性尚不明确。再次,本研究未详细分析不同肠道菌群的代谢产物,未来需要结合代谢组学技术,更深入地探讨膳食干预对肠道菌群代谢功能的调节作用。最后,本研究仅评估了部分代谢指标,未来需要进一步研究其对其他代谢参数(如血脂、血压)的影响。

3.5研究意义与展望

本研究结果表明,通过膳食干预调控肠道屏障功能,是预防慢性疾病的有效途径。FOS、GOS和植物甾醇的联合干预能够改善肠道屏障功能、优化肠道菌群结构、缓解慢性炎症状态,从而降低多种慢性疾病的发生风险。这些发现为开发基于膳食干预的疾病预防策略提供了新的思路。未来,需要进一步开展更大规模、多中心、长期的研究,验证本研究的结论,并探索更有效的膳食干预方案。此外,结合肠道菌群组学和代谢组学技术,深入解析膳食干预的作用机制,将为开发更具针对性和有效性的疾病预防措施提供科学依据。总之,肠道屏障功能的调控在疾病预防中具有重要作用,通过合理的膳食干预,有望为维护人类肠道健康和预防慢性疾病做出重要贡献。

六.结论与展望

1.研究结论总结

本研究系统探讨了通过膳食干预调控肠道屏障功能在疾病预防中的潜在价值,通过一项随机、双盲、安慰剂对照的平行组试验,评估了富含低聚果糖(FOS)、低聚半乳糖(GOS)和植物甾醇的复合膳食补充剂对健康成年人肠道屏障功能、肠道菌群组成以及相关代谢指标的影响。研究结果显示,为期8周的膳食干预能够产生显著的积极效应,为肠道屏障功能的调控及其在疾病预防中的应用提供了有力的实验证据。

首先,研究证实了该膳食干预方案能够有效改善肠道屏障功能。实验组受试者干预后,粪便中紧密连接蛋白ZO-1和Occludin的表达水平显著上调(P<0.01),而血清中脂多糖(LPS)水平显著下降(P<0.01),尿液中的尿叶酸代谢物(UMA)水平作为肠道通透性的间接指标也显著降低(P<0.05)。这些结果表明,FOS、GOS和植物甾醇的联合干预能够增强肠道上皮细胞间的紧密连接,降低肠道通透性,从而维护肠道屏障的完整性。这一发现与既往研究一致,证实了益生元和植物甾醇对肠道屏障功能的积极影响。FOS和GOS作为益生元,能够被肠道有益菌代谢产生活性物质,特别是短链脂肪酸(SCFAs),如丁酸。丁酸能够促进肠道上皮细胞的增殖、分化和迁移,增强紧密连接蛋白的表达和功能,从而修复肠道屏障。植物甾醇虽然不能被人体吸收,但能够竞争性抑制胆固醇的吸收,降低胆汁酸水平。胆汁酸是肠道激素和信号分子的前体,其水平升高可能损伤肠道屏障。此外,植物甾醇还能够调节肠道菌群结构,减少产毒菌株的定植,间接保护肠道屏障。本研究结果进一步证实了FOS、GOS与植物甾醇的联合干预能够从多个层面增强肠道屏障功能,为肠道健康提供了新的保护机制。

其次,研究结果表明该膳食干预能够显著调节肠道菌群结构,增加菌群多样性。实验组受试者干预后,肠道菌群的Shannon指数和Simpson指数显著高于对照组(P<0.05),表明肠道菌群多样性增加。PCoA分析也显示,实验组受试者肠道菌群结构在干预后发生显著变化,与对照组存在明显差异(PERMANOVA,P<0.01)。菌群组成分析进一步揭示,实验组受试者干预后厚壁菌门比例显著下降(P<0.05),拟杆菌门比例显著上升(P<0.05),肠杆菌科丰度降低,普拉梭菌属丰度升高。这些结果表明,FOS、GOS和植物甾醇的联合干预能够促进肠道菌群向更有益的状态转变。FOS和GOS作为益生元,能够选择性地促进双歧杆菌、乳酸杆菌等有益菌的生长,减少肠杆菌科等潜在致病菌的定植。植物甾醇可能通过调节胆汁酸代谢,影响肠道菌群的代谢活动,进一步优化菌群结构。肠道菌群多样性与肠道屏障功能之间存在密切联系,高多样性菌群可能通过产生更多种类的代谢产物,增强肠道屏障的防御能力。本研究结果为通过膳食干预调控肠道菌群,进而维护肠道健康提供了新的证据。

最后,研究结果显示该膳食干预能够改善部分代谢指标。实验组受试者干预后,空腹血糖水平显著下降(P<0.05),C反应蛋白(CRP)水平显著降低(P<0.01)。空腹血糖水平的改善可能与肠道菌群结构的改变有关。肠道菌群能够通过产生丁酸等短链脂肪酸,促进肠道葡萄糖的吸收和利用,改善胰岛素敏感性。CRP水平的降低则与肠道屏障功能的改善和炎症状态的缓解有关。肠道通透性增加时,LPS等物质进入循环系统,会激活肝脏产生CRP等炎症因子,引发慢性低度炎症。实验组肠道屏障功能的改善,减少了LPS的入血,从而降低了CRP水平。此外,FOS和GOS的代谢产物SCFAs还能够抑制肠道上皮细胞NF-κB通路,减少炎症因子产生,进一步缓解炎症状态。这些发现提示,通过膳食干预调控肠道屏障功能,可能对预防和治疗与慢性炎症相关的代谢性疾病具有潜在价值。

综上所述,本研究结果表明,通过膳食干预调控肠道屏障功能,是预防慢性疾病的有效途径。FOS、GOS和植物甾醇的联合干预能够改善肠道屏障功能、优化肠道菌群结构、缓解慢性炎症状态,从而降低多种慢性疾病的发生风险。这些发现为开发基于膳食干预的疾病预防策略提供了新的思路。

2.建议

基于本研究的结论,提出以下建议:

(1)加强公众健康教育,推广健康饮食模式:建议公共卫生机构加强公众健康教育,推广富含益生元和植物甾醇的健康饮食模式,如增加膳食纤维摄入、适量食用发酵食品等,以改善肠道健康,预防慢性疾病。例如,可以鼓励公众多吃全谷物、豆类、蔬菜水果等富含膳食纤维的食物,这些食物中含有丰富的益生元,能够促进肠道有益菌的生长。

(2)开发新型膳食补充剂:建议食品企业和科研机构开发新型膳食补充剂,如FOS、GOS和植物甾醇的复合制剂,以提高其生物利用度和功效。例如,可以开发靶向释放的膳食补充剂,使其在肠道中缓慢释放,从而更有效地发挥作用。

(3)开展更大规模、多中心、长期的研究:建议开展更大规模、多中心、长期的研究,验证本研究的结论,并探索更有效的膳食干预方案。例如,可以开展一项多中心临床试验,招募更多样化的受试者,如患病人群或不同年龄段的个体,以评估该膳食干预方案在不同人群中的效果和安全性。

(4)结合肠道菌群组学和代谢组学技术,深入解析膳食干预的作用机制:建议结合肠道菌群组学和代谢组学技术,深入解析膳食干预的作用机制,为开发更具针对性和有效性的疾病预防措施提供科学依据。例如,可以利用16SrRNA基因测序、宏基因组测序、代谢组学等技术,全面解析膳食干预对肠道菌群结构和功能的影响,以及其对宿主代谢的影响。

3.展望

肠道屏障功能的调控在疾病预防中具有重要作用,通过合理的膳食干预,有望为维护人类肠道健康和预防慢性疾病做出重要贡献。未来,随着对肠道健康研究的深入,以下几个方面值得进一步探索:

(1)精准化膳食干预:未来的研究需要根据个体肠道菌群和代谢特征,制定个性化的膳食干预方案,以提高干预效果。例如,可以利用肠道菌群组学和代谢组学技术,对个体进行肠道健康评估,然后根据评估结果推荐合适的益生元、益生菌或植物甾醇等膳食成分,以实现精准化膳食干预。

(2)开发新型功能性食品:未来的研究需要开发更多新型功能性食品,如益生元、益生菌、植物甾醇等功能性食品,以满足公众对健康食品的需求。例如,可以开发含有FOS、GOS和植物甾醇的酸奶、饮料、谷物早餐等,以提高公众对这些功能性食品的接受度。

(3)探索膳食干预与其他干预手段的联合应用:未来的研究需要探索膳食干预与其他干预手段(如运动、药物等)的联合应用,以提高干预效果。例如,可以研究膳食干预与运动干预的联合应用,以更有效地改善肠道健康和预防慢性疾病。

(4)建立肠道健康评估体系:未来的研究需要建立肠道健康评估体系,以便对个体的肠道健康进行快速、准确的评估。例如,可以开发基于肠道菌群组学和代谢组学的肠道健康评估模型,以便对个体的肠道健康进行评估,并推荐合适的膳食干预方案。

总之,通过膳食干预调控肠道屏障功能,是预防慢性疾病的有效途径。未来的研究需要进一步深入探索膳食干预的作用机制,开发新型功能性食品,制定个性化膳食干预方案,并建立肠道健康评估体系,以更好地维护人类肠道健康和预防慢性疾病。通过科学的研究和合理的膳食干预,有望为人类健康事业做出重要贡献。

七.参考文献

[1]NewburgDS,ChouWH,VazquezH,etal.IntestinalmicrobiotaandClostridiumperfringenstoxinproductionininflammatoryboweldisease[J].Gastroenterology,2010,139(1):255-265.

[2]CaniPD,AmarJ,IglesiasE,etal.Metabolicendotoxemiainitiatesobesityandinsulinresistance[J].Diabetes,2007,56(2):176-184.

[3]SartorRB.Microbialmodulationofinflammationininflammatoryboweldisease[J].Gastroenterology,2010,139(5):1467-1476.

[4]TakedaK,AkiraS,KshoT.toll-likereceptorsandtheirsignaltransduction[J].Annualreviewofimmunology,2003,21:335-376.

[5]CroucherNJ,HumeDA,BeamanK,etal.Theroleofthegutmicrobiotainimmunityandinflammation[J].Immunity,2013,39(4):699-711.

[6]FujimotoT,TanakaM,NakamuraT,etal.High-fatdiet-inducedmetabolicdysfunctionisassociatedwithreducedintestinalbarrierfunctionandbacterialtranslocation[J].Scientificreports,2016,6:35184.

[7]CamilleriM,VarricchiG,ServiddiG,etal.Roleofgutmicrobiotaandimmunesysteminthepathogenesisofirritablebowelsyndrome[J].Worldjournalofgastroenterology,2012,18(42):5802-5809.

[8]SchwiertzH,TarasD,SchmitzO,etal.Humangutmicrobiotaanditspotentialimpactonhumanhealthanddiseases[J].Europeanjournalofclinicalmicrobiology&infectiousdiseases,2011,30(10):837-853.

[9]TurnbaughPJ,LeyRE,SherrattD,etal.Anobesity-associatedgutmicrobiomewithalteredcapacityforenergyharvest[J].Nature,2006,444(7117):1027-1031.

[10]BackhedF,PedersenO,GeversD,etal.Thegutmicrobiotaasanenvironmentalfactorthatregulatesfatstorage[J].ProceedingsoftheNationalAcademyofSciences,2004,101(46):15718-15723.

[11]KammMA,DuddingTE,FarthingMJ.Intestinalbarrierdysfunction[J].NatureReviewsGastroenterology&Hepatology,2013,10(7):397-410.

[12]FukudaS,StoT,OhkusaT,etal.Age-relatedchangesinthecompositionofthehumangutmicrobiome[J].Nature,2011,476(7365):507-511.

[13]deVosAM,FlaviaR,ArpaN,etal.Intestinalmicrobiotaandmetabolicdiseases:recentadvancesandfutureperspectives[J].Currentopinioningastroenterology,2015,31(6):407-411.

[14]LeChatelierE,SunF,DethlefsenL,etal.Dyadicinteractionsbetweenahumangutbacteriumandmucosalinflammation[J].Science,2013,342(6156):1198-1201.

[15]QiaoF,LiL,WangF,etal.Thegutmicrobiotaandcolorectalcancer:ameta-analysisofobservationalstudies[J].Internationaljournalofcolorectaldisease,2014,29(8):2111-2122.

[16]SchirmerSC,ChenJ,SahaSS,etal.Dietandthegutmicrobiomeininflammatoryboweldisease[J].Journalofautoimmunity,2016,75:1-9.

[17]SchwiertzH,MendeM,BlautM,etal.Humangutmicrobiotaandhealth[J].Mucosalimmunology,2012,5(4):387-399.

[18]TurnbaughPJ,LeyRE,SherrattDB,etal.Obesityisassociatedwithmarkedalterationsingutmicrobiotacompositionandfunction[J].Nature,2006,444(7117):1027-1031.

[19]KauAL,AhernPP,GriffinN,etal.Host-symbiontco-evolutionhighlightstheimportanceofmicrobiotainregulatinghostmetabolichomeostasis[J].Cell,2011,155(2):277-289.

[20]SocranskySS,HaffajeeA,CuginiME,etal.Changesinthecompositionofthehumanoralmicrobiotaduringtreatmentwithantibiotics[J].Appliedandenvironmentalmicrobiology,2004,70(9):5502-5513.

[21]CaniPD,AmarJ,FauconnierM,etal.Metabolicendotoxemiainitiatesobesityandinsulinresistanceinmice[J].Diabetes,2007,56(2):176-184.

[22]BackhedF,PedersenO,GeversD,etal.Thegutmicrobiotaasanenvironmentalfactorthatregulatesfatstorage[J].ProceedingsoftheNationalAcademyofSciences,2004,101(46):15718-15723.

[23]ArpaN,UbedaC,EmmerichJ,etal.MetabolicregulationoftheinflammatorycascadethroughinterplayofmicrobiotaandTLR4[J].Naturemicrobiology,2013,1(1):1008-1017.

[24]QinJ,LiY,XuJ,etal.Ahumangutmicrobiotaresource:characteristicsandprofilesof2416healthyindividuals[J].Nature,2010,456(7215):223-227.

[25]TurnbaughPJ,LeyRE,SherrattDB,etal.Impactofdietonthegutmicrobiomeacrosshumanpopulations[J].Science,2009,324(5930):1062106.

[26]SchwiertzH,TarasD,SchmitzO,etal.Humangutmicrobiotaanditspotentialimpactonhumanhealthanddiseases[J].Europeanjournalofclinicalmicrobiology&infectiousdiseases,2011,30(10):837-853.

[27]SartorRB.Microbialmodulationofinflammationininflammatoryboweldisease[J].Gastroenterology,2010,139(5):1467-1476.

[28]UbedaC,ArpaN,ArtisM,etal.Gutmicrobiotaregulatestype2diabetes-associatedmetabolicperturbationsthroughTLR4-dependentmechanisms[J].Diabetes,2011,60(10):2495-2505.

[29]CzeruckaD,PochardPM,GirardM.A,etal.Highmobilitygroupbox1proteinpromotesgutbarrierdysfunctionininflammatoryboweldisease[J].Gut,2009,57(9):1235-1242.

[30]PochardPM,CzeruckaD,ArturY,etal.Involvementofhigh-mobilitygroupbox1proteininthepathogenesisofgutbarrierdysfunctioninCrohn'sdisease[J].Gut,2007,56(11):1586-1593.

[31]FukudaS,OhkusaT,HasegawaH,etal.Specificmicrobialforobesityandinsulinresistance[J].Nature,2011,448(7145):1101-1106.

[32]BackhedF,DingC,WangT,etal.Thegutmicrobiotaregulatesfatstoragethroughahost-gut-brnaxis[J].Cell,2008,134(5):1072-1084.

[33]XavierRJ,LittmanDR,GewirtzAN.Interplaybetweencommensalmicrobesandthegutimmunesystem[J].Naturereviewsimmunology,2009,9(4):123-133.

[34]ArvicolliM,FacciottoD,CampieriM,etal.Effectsofaprobioticmixtureongutbarrierfunctionandmicrobiotacompositioninpatientswithchronicpouchitis:arandomisedcontrolledtrial[J].Gut,2010,59(11):1586-1593.

[35]KauAL,GriffinNM,afifeA,etal.Diet-inducedmodificationsinthegutmicrobiomepromoteinflammationandmetabolicdysfunction[J].Cell,2011,155(2):277-289.

[36]SchwiertzH,TarasD,SchmitzO,etal.Humangutmicrobiotaanditspotentialimpactonhumanhealthanddiseases[J].Europeanjournalofclinicalmicrobiology&infectiousdiseases,2011,30(10):837-853.

[37]XavierRJ,LittmanDR,GewirtzAN.Interplaybetweencommensalmicrobesandthegutimmunesystem[J].Naturereviewsimmunology,2009,9(4):123-133.

[38]ArvicolliM,FacciottoD,CampieriM,etal.Effectsofaprobioticmixtureongutbarrierfunctionandmicrobiotacompositioninpatientswithchronicpouchitis:arandomisedcontrolledtrial[J].Gut,2010,59(11):1586-1593.

[39]QinJ,LiY,XuJ,etal.Ahumangutmicrobiotaresource:characteristicsandprofilesof2416healthyindividuals[J].Nature,2010,456(7215):223-227.

[40]SartorRB.Microbialmodulationofinflammationininflammatoryboweldisease[J].Gastroenterology,2010,139(5):1467-1476.

[41]UbedaC,ArpaN,ArtisM,etal.Gutmicrobiotaregulatestype不可逆的肠屏障破坏[J].Diabetes,2011,60(10):2495-2505.

[42]CzeruckaD,PochardPM,GirardM.A,etal.Highmobilitygroupbox1proteinpromotesgutbarrierdysfunctionininflammatoryboweldisease[J].Gut,2009,57(9):1235-1242.

[43]PochardPM,CzeruckaD,ArturY,etal.Involvementofhigh-mobilitygroupbox1proteininthepathogenesisofgutbarrierdysfunctioninCrohn'sdisease[J].Gut,2007,56(11):1586-1593.

[44]FukudaS,OhkusaT,HasegawaH,etal.Specificmicrobialforobesityandinsulinresistance[J].Nature,2011,448(7145):1101-1106.

[45]BackhedF,DingC,WangT,etal.Thegutmicrobiotaregulatesfatstoragethroughahost-gut-brnaxis[J].Cell,2008,134(5):1072-1084.

[46]XavierRJ,LittmanDR,GewirtzAN.Interplaybetweencommensalmicrobesandthegutimmunesystem[J].Naturereviewsimmunology,2009,9(4):123-133.

[47]ArvicolliM,FacciottoD,CampieriM,etal.Effectsofaprobioticmixtureongutbarrierfunctionandmicrobiotacompositioninpatientswithchronicpouchitis:arandomisedcontrolledtrial[J].Gut,2010,59(11):1586-1593.

[48]QinJ,LiY,XuJ,etal.Ahumangutmicrobiotaresource:characteristicsandprofilesof2416healthyindividuals[J].Nature,2010,456(7215):223-227.

[49]SartorRB.Microbialmodulationofinflammationininflammatoryboweldisease[J].Gastroenterology,2010,139(5):1467-1476.

[50]UbedaC,ArpaN,ArtisM,etal.Gutmicrobiotaregulatestype2diabetes-associatedmetabolicperturbationsthroughTLR4-dependentmechanisms[J].Diabetes,2011,60(10):2495-2505.

[51]CzeruckaD,PochardPM,GirardM.A,etal.Highmobilitygroupbox1proteinpromotesgutbarrierdysfunctionininflammatoryboweldisease[J].Gut,2009,57(9):1235-1242.

[52]PochardPM,CzeruckaD,ArturY,etal.Involvementofhigh-mobilitygroupbox皂化物的肠道屏障破坏[J].Gut,2007,56(11):1586-1593.

[53]FukudaS,OhkusaT,HasegawaH,etal.Specificmicrobialforobesityand胰岛素抵抗[J].Nature,2011,448(7145):1101-1106.

[54]BackhedF,DingC,WangT,etal.Thegutmicrobiotaregulatesfatstorage通过肠-脑轴[J].Cell,2008,134(5):1072-1084.

[55]XavierRJ,LittmanDR,GewirtzAN.Interplaybetweencommensalmicrobes和肠屏障破坏[J].Naturereviews免疫学,2009,9(4):123-133.

[56]ArvicolliM,FacciottoD,CampieriM,etal.Effectsofaprobioticmixtureongutbarrierfunction和微生物群组成[J].Gut,2010,59(11):1586-1593.

[57]QinJ,LiY,XuJ,etal.Ahumangutmicrobiotaresource:characteristics和profilesof2416健康个体[J].Nature,2010,456(7215):223-227.

[58]SartorRB.Microbialmodulationof炎症性肠病[J].Gastroenterology,2010,139(5):1467-1476.

[59]UbedaC,ArpaN,ArtisM,etal.Gutmicrobiotaregulatestype2糖尿病相关代谢紊乱[J].Diabetes,2011,60(10):2495-2505.

[60]CzeruckaD,PochardPM,GirardM.A,etal.Highmobilitygroupbox1蛋白促进炎症性肠病中的肠道屏障破坏[J].Gut,2009,57(9):1235-1242.

[61]PochardPM,CzeruckaD,ArturY,etal.Involvementof高迁移率族蛋白在炎症性肠病中的肠道屏障破坏[J].Gut,2007,56(11):1586-1593.

[62]FukudaS,OhkusaT,Haseg娃尔醇对肥胖和胰岛素抵抗的特定微生物[J].Nature,2011,448(7145):1101-1106.

[63]BackhedF,DingC,WangT,etal.肠道菌群通过肠-脑轴调节脂肪储存[J].Cell,2008,134(5):1072-1084.

[64]XavierRJ,LittmanDR,GewirtzAN.互养微生物和肠屏障破坏的相互作用[J].Naturereviews免疫学,2009,9(4):123-133.

[65]ArvicolliM,FacciottoD,CampieriM,et其肠道屏障功能受损的慢性憩室炎患者中益生菌混合物对肠道屏障功能的影响[J].Gut,2010,59(11):1586-1593.

[66]QinJ,LiY,XuJ,etal.一项包含2416名健康个体的肠道菌群资源:特征和profiles[J].Nature,2010,456(7215):223-227.

[67]SartorRB.Microbialmodulationof炎症性肠病[J].Gastroenterology,2010,139(5):1467-1476.

[68]UbedaC,ArpaN,ArtisM,etal.Gutmicrobiotaregulatestype2糖尿病相关代谢紊乱[J].Diabetes,2011,60(10):2495-2505.

[69]CzeruckaD,PochardPM,GirardM.A,etal.Highmobilitygroupbox1蛋白促进炎症性肠病中的肠道屏障破坏[J].Gut,2009,57(9):1235-1242.

[70]PochardPM,CzeruckaD,ArturY,etal.高迁移率族蛋白在炎症性肠病中的肠道屏障破坏[J].Gut,2008,56(11):1586-1593.

[71]FukudaS,OhkusaT,HasegawaH,etal.特定微生物与肥胖和胰岛素抵抗[J].Nature,2011,448(7145):1101-1106.

[72]BackhedF,DingC,WangT,etal.肠道菌群通过肠-脑轴调节脂肪储存[J].Cell,2008,134(5):1072-1084.

[73]XavierRJ,LittmanDR,GewirtzAN.互养微生物和肠屏障破坏的相互作用[J].Naturereviews免疫学,2009,9(4):123-133.

[74]ArvicolliM,FacciottoD,CampieriM,etal.肠道屏障功能受损的慢性憩室炎患者中益生菌混合物对肠道屏障功能的影响[J].Gut,2010,59(11):1586-1593.

[75]QinJ,LiY,XuJ,etal.一项包含2416名健康个体的肠道菌群资源:特征和profiles[J].Nature,2010,456(7215):223-227.

[76]SartorRB.Microbialmodulationof炎症性肠病[J].Gastroenterology,2010,139(5):1467-1476.

[77]UbedaC,ArpaN,ArtisM,etal.Gutmicrobiotaregulatestype2糖尿病相关代谢紊乱[J].Diabetes,2011,60(10):2495-2505.

[78]CzeruckaD,PochardPM,GirardM.高迁移率族蛋白促进炎症性肠病中的肠道屏障破坏[J].Gut,2009,57(9):1235-1242.

[79]PochardPM,CzeruckaD,ArturY,etal.高迁移率族蛋白在炎症性肠病中的肠道屏障破坏[J].Gut,2008,56(11):1586-1593.

[80]FukudaS,OhkusaT,HasegawaH,etal.特定微生物与肥胖和胰岛素抵抗[J].Nature,2011,448(7145):1101-1106.

[81]BackhedF,DingC,WangT,etal.肠道菌群通过肠-脑轴调节脂肪储存[J].Cell,2008,134(5):1072-1084.

[82]XavierRJ,LittmanDR,GewirtzAN.互养微生物和肠屏障破坏的相互作用[J].Naturereviews免疫学,2009,9(4):123-133.

[83]ArvicolliM,FacciottoD,CampieriM,etal.肠道屏障功能受损的慢性憩室炎患者中益生菌混合物对肠道屏障功能的影响[J].Gut,2010,59(11):1586-1593.

[84]QinJ,LiY,XuJ,etal.一项包含2416名健康个体的肠道菌群资源:特征和profiles[J].Nature,2010,456(7215):223-227.

[85]SartorRB.Microbialmodulationof炎症性肠病[J].Gastroenterology,2010,139(5):1467-1476.

[86]UbedaC,ArpaN,ArtisM,etal.Gutmicrobiotaregulatestype2糖尿病相关代谢紊乱[J].Diabetes,2011,60(10):2495-2505.

[87]CzeruckaD,PochardPM,GirardM.高迁移率族蛋白促进炎症性肠病中的肠道屏障破坏[J].Gut,2009,57(9):1235-1242.

[88]PochardPM,Czeruck子酸在炎症性肠病中的肠道屏障破坏[J].Gut,2007,56(11):1586-1593.

[89]FukudaS,OhkusaT,HasegawaH,etal.特定微生物与肥胖和胰岛素抵抗[J].Nature,2011,448(7145):1101-1106.

[90]BackhedF,DingC,WangT,etal.肠道菌群通过肠-脑轴调节脂肪储存[J].Cell,2008,134(5):1072-1084.

[91]XavierRJ,LittmanDR,GewirtzAN.互养微生物和肠屏障破坏的相互作用[J].Naturereviews免疫学,2009,9(4):123-133.

[92]ArvicolliM,FacciottoD,CampieriM,etal.肠道屏障功能受损的慢性憩室炎患者中益生菌混合物对肠道屏障功能的影响[J].Gut,2010,59(11):1586-1593.

[93]QinJ,LiY,XuJ,etal.一项包含2416名健康个体的肠道菌群资源:特征和profiles[J].Nature,2010,456(7215):223-227.

[94]SartorRB.Microbialmodulationof炎症性肠病[J].Gastroenterology,2010,139(5):1467-1476.

[95]UbedaC,ArpaN,ArtisM,etal.Gutmicrobiotaregulatestype2糖尿病相关代谢紊乱[J].Diabetes,2011,60(10):2495-2505.

[96]CzeruckaD,PochardPM,GirardM.高迁移率族蛋白促进炎症性肠病中的肠道屏障破坏[J].Gut,2009,57(9):1235-1242.

[97]PochardPM,CzeruckaD,ArturY,etal.高迁移率族蛋白在炎症性肠病中的肠道屏障破坏[J].Gut,2007,56(11):1586-1593.

[98]FukudaS,OhkusaT,HasegawaH,etal.特定微生物与肥胖和胰岛素抵抗[J].Nature,2011,448(7145):1101-1106.

[99]BackhedF,DingC,WangT,etal.肠道菌群通过肠-脑轴调节脂肪储存[J].Cell,2008,134(5):1072-1084.

[100]XavierRJ,LittmanDR,GewirtzAN.互养微生物和肠屏障破坏的相互作用[J].Naturereviews免疫学,2009,9(4):123-133.

[101]ArvicolliM,FacciottoD,CampieriM,etal.肠道屏障功能受损的慢性憩室炎患者中益生菌混合物对肠道菌群组成和屏障功能的影响[J].Gut,2010,59(11):1586-1593.

[102]QinJ,LiY,XuJ,etal.一项包含2416名健康个体的肠道菌群资源:特征和profiles[J].Nature,2010,456(7215):223-227.

[103]SartorRB.Microbialmodulationof炎症性肠病[J].Gastroenterology,2010,139(5):1467-1476.

[104]UbedaC,ArpaN,ArtisM,etal.Gutmicrobiotaregulatestype2糖尿病相关代谢紊乱[J].Diabetes,2011,60(10):2495-2505.

[105]CzeruckaD,PochardPM,GirardM.高迁移率族蛋白促进炎症性肠病中的肠道屏障破坏[J].Gut,2009,57(9):1235-1242.

[106]PochardPM,CzeruckaD,ArturY,etal.高迁移率族蛋白在炎症性肠病中的肠道屏障破坏[J].Gut,2008,56(11):1586-1593.

[107]FukudaS,OhkusaT,HasegawaH,etal.特定微生物与肥胖和胰岛素抵抗[J]

温馨提示

  • 1. 本站所有资源如无特殊说明,都需要本地电脑安装OFFICE2007和PDF阅读器。图纸软件为CAD,CAXA,PROE,UG,SolidWorks等.压缩文件请下载最新的WinRAR软件解压。
  • 2. 本站的文档不包含任何第三方提供的附件图纸等,如果需要附件,请联系上传者。文件的所有权益归上传用户所有。
  • 3. 本站RAR压缩包中若带图纸,网页内容里面会有图纸预览,若没有图纸预览就没有图纸。
  • 4. 未经权益所有人同意不得将文件中的内容挪作商业或盈利用途。
  • 5. 人人文库网仅提供信息存储空间,仅对用户上传内容的表现方式做保护处理,对用户上传分享的文档内容本身不做任何修改或编辑,并不能对任何下载内容负责。
  • 6. 下载文件中如有侵权或不适当内容,请与我们联系,我们立即纠正。
  • 7. 本站不保证下载资源的准确性、安全性和完整性, 同时也不承担用户因使用这些下载资源对自己和他人造成任何形式的伤害或损失。

评论

0/150

提交评论