2026年院感标本采集与处理

2026年院感标本采集与处理一、核心遵循与基本原则2026年院感标本采集与处理工作严格依据《医疗机构感染预防与控制基本制度（2024版）》《临床微生物检验标本采集、转运及处理规范（WS/T640-2025修订版）》《医疗机构消毒技术规范（2024版）》等文件要求开展，核心目标是提升病原体检出准确率、降低标本污染率、缩短检测报告周期，为院感风险识别、暴发处置、抗菌药物精准应用提供循证依据。所有操作需符合四项基本原则：第一是时效性原则，各类标本需严格按照规定时限送检，无特殊原因不得延迟，二级以上医疗机构院感相关标本及时送检率需≥95%，基层医疗机构需≥90%；第二是溯源性原则，所有标本绑定唯一识别码（UDI），实现采集、转运、接收、检测、报告、销毁全流程可追溯，溯源记录需至少保存3年；第三是生物安全原则，严格按病原体传播途径落实分级防护，感染性标本全程密闭转运，高风险标本采用三层包装，避免职业暴露与交叉污染；第四是规范性原则，所有操作严格遵循统一流程，标本采集前需确认患者抗菌药物使用情况，优先在抗菌药物给药前采集标本，确需在用药期间采集的需在检验申请单上标注用药名称、给药时间。二、常见院感标本采集操作规范（一）血流感染相关标本（血培养）1.采集指征：符合以下任意一项即可采集：①患者腋温≥38.3℃或≤36℃，伴寒战、低血压、低氧血症等疑似血流感染表现；②留置血管导管超过72小时，出现原因不明的发热；③疑似感染性心内膜炎、化脓性血栓性静脉炎；④血流感染患者治疗后疗效评估。2.采集时机：优先在抗菌药物首次给药前30分钟采集；已接受抗菌药物治疗的患者，需在下一次抗菌药物给药前30分钟采集；疑似感染性心内膜炎患者需在1小时内完成3套标本采集，每套采集间隔不超过30分钟，24小时内仍有发热症状的需加采2套。3.采集方法与采集量：成人患者需同时采集2套及以上血培养标本，每套包含需氧瓶、厌氧瓶各1个，每套标本从不同穿刺部位采集，避免同一部位重复穿刺导致污染；儿童患者无厌氧菌感染高危因素（如腹腔感染、口腔感染、免疫力低下）的可仅采集需氧瓶。采血量要求成人每套每瓶采集8~10ml，总采血量控制在16~20ml/套，2套总采血量不超过40ml，避免医源性贫血；儿童采血量按体重计算，体重<1kg者每瓶采集1ml，1~10kg者每瓶采集2~5ml，10~30kg者每瓶采集5~8ml，总采血量不得超过患者总血容量的1%。怀疑导管相关血流感染（CRBSI）时，需同时采集外周静脉血标本1套、导管腔内血标本1套，采集导管血时需弃去前2ml导管内残留液体后再抽取标本。4.注意事项：严格落实皮肤消毒三步法：75%乙醇擦拭穿刺部位30秒待干，碘伏以穿刺点为中心螺旋式消毒60秒，消毒范围直径≥8cm，再用75%乙醇脱碘待干后穿刺，禁止反复触碰消毒后区域；不得从输液侧肢体穿刺采集血培养，确需评估CRBSI的除外；血培养标本采集后禁止冷藏，室温放置不得超过4小时，二级以上医疗机构血培养污染率需控制在2%以内，基层医疗机构不得超过3%。（二）下呼吸道感染标本1.采集指征：符合以下任意一项即可采集：①疑似医院获得性肺炎（HAP）、呼吸机相关性肺炎（VAP），临床肺部感染评分（CPIS）≥6分；②下呼吸道感染患者治疗后疗效评估；③呼吸道病原体院感暴发时的病例筛查。2.采集时机：抗菌药物给药前采集，自然咳痰标本优先采集清晨起床后第一口深部痰。3.采集方法与采集量：①自然咳痰标本：指导患者用生理盐水漱口3次，用力深咳，留取深部痰液至无菌痰杯，不得混有唾液、鼻咽部分泌物；②支气管肺泡灌洗液（BALF）：经纤维支气管镜注入无菌生理盐水30~50ml后回收，留取10~20ml送检，避免混入血液，红细胞占比需<1%；③经气管插管/气管切开吸引标本：将无菌吸痰管插入气道远端，负压不超过150mmHg，弃去前1~2ml分泌物，留取1~5ml送检。合格痰标本判定标准为涂片镜检鳞状上皮细胞<10个/低倍视野、中性粒细胞>25个/低倍视野，二级以上医疗机构合格痰送检率需≥70%。4.注意事项：痰标本采集后需2小时内送检，无法及时送检的可置于4℃冷藏，存放时间不得超过24小时；BALF标本需1小时内送检，不得冷藏。（三）尿路感染标本1.采集指征：符合以下任意一项即可采集：①患者出现尿频、尿急、尿痛等尿路刺激征，尿常规白细胞>5个/高倍视野；②留置导尿管超过3天出现原因不明发热；③尿路感染患者治疗后疗效评估。2.采集时机：抗菌药物给药前采集，优先采集在膀胱内停留4~6小时以上的晨尿。3.采集方法与采集量：①中段尿标本：女性患者用肥皂水清洁外阴，分开阴唇，排尿过程中弃去前段尿液，留取中段尿液5~10ml至无菌尿杯；男性患者翻转包皮清洁尿道口，同样弃去前段留取中段；②导尿管尿标本：不得从集尿袋底端排放尿液采集，需先用75%乙醇消毒导尿管侧壁采样口，用无菌注射器抽吸5~10ml尿液送检。4.注意事项：标本采集后1小时内送检，室温放置不得超过2小时，4℃冷藏不得超过6小时，避免细菌繁殖导致菌落计数偏差；尿培养阳性判定标准：中段尿革兰阴性杆菌菌落计数≥10^5CFU/ml、革兰阳性球菌≥10^4CFU/ml，导尿管尿菌落计数≥10^3CFU/ml即具有临床意义。（四）手术部位感染标本1.采集指征：符合以下任意一项即可采集：①手术切口出现红、肿、热、痛，有脓性分泌物渗出；②术后3天患者腋温≥38℃，原因不明，怀疑深部手术部位感染；③手术部位感染患者治疗后疗效评估。2.采集时机：抗菌药物给药前采集，出现脓性分泌物后24小时内完成采样。3.采集方法与采集量：①浅表切口感染：先用生理盐水清洁切口表面渗出液，消毒切口周围皮肤，用无菌拭子深入切口深部采集脓性分泌物，避免采集表面坏死组织；②深部切口或器官/腔隙感染：优先采用注射器抽吸脓性分泌物，或采集病变部位组织标本，组织标本重量≥0.5g，阳性检出率较拭子标本高30%以上。脓液采集量≥1ml，拭子标本需完全浸润分泌物。4.注意事项：采集前避免用碘伏、酒精等消毒剂直接接触采样部位，确需消毒的需待消毒剂完全干燥或用生理盐水擦拭去除残留消毒剂后采样；怀疑厌氧菌感染的标本需采用厌氧转运管转运，30分钟内送检，不得冷藏。（五）消化道感染标本1.采集指征：符合以下任意一项即可采集：①患者出现腹泻（每日≥3次稀便/水样便），伴腹痛、发热，怀疑肠道感染；②疑似艰难梭菌感染、诺如病毒感染等消化道院感暴发；③院感高风险科室（如ICU、儿科、消化科）的肠道病原体定植筛查。2.采集时机：发病初期、抗菌药物给药前采集，腹泻出现后24小时内完成采样。3.采集方法与采集量：优先留取新鲜粪便标本，选取脓血、黏液部分2~5g（约花生米大小）至无菌便杯；无法自行排便的患者采用肛拭子采样，将拭子插入肛门2~3cm，旋转一周后取出，拭子表面需带有明显粪便痕迹。4.注意事项：标本不得混有尿液、消毒剂；艰难梭菌毒素检测标本需1小时内送检，无法及时送检的4℃冷藏不超过48小时；诺如病毒、轮状病毒等病毒检测标本需置于-20℃保存，避免反复冻融。（六）环境表面与消毒效果监测标本1.采集指征：①重点科室（手术室、ICU、新生儿科、消毒供应中心）常规监测每月不少于1次，其他科室每季度不少于1次；②发生院感暴发时随时采样；③新消毒设备、新诊疗环境投入使用前验收监测；④手卫生效果、消毒器械效果的定期评估。2.采集时机：消毒后30分钟内完成采样，常规监测需在诊疗活动结束后、下一次诊疗开始前采样。3.采集方法与采集量：①物体表面监测：采用5cm×5cm标准规格板，将浸有对应中和剂的采样拭子在规格板范围内横竖各涂抹5次，连续采集4个规格板（总面积100cm²），门把手、仪器按钮等小表面按全部面积采样；②内镜消毒效果监测：用无菌生理盐水100ml冲洗内镜全腔道，收集全部冲洗液送检；③手卫生效果监测：被监测人员五指并拢，用浸有中和剂的拭子在双手掌曲面从指根到指尖往返涂抹2次，采样面积按每只手30cm²计算。4.注意事项：采样液需根据消毒类型添加对应中和剂，含氯消毒剂、过氧乙酸的中和剂为硫代硫酸钠，季铵盐类、洗必泰的中和剂为卵磷脂，75%乙醇的中和剂为吐温80；监测合格标准：一类环境（洁净手术室、层流ICU）物体表面菌落数≤5CFU/cm²，二类环境（普通手术室、非层流ICU、新生儿科）≤10CFU/cm²，三类环境（普通病房、门诊）≤10CFU/cm²，四类环境（感染科病房、肛肠科）≤20CFU/cm²；卫生手消毒后菌落数≤10CFU/cm²，外科手消毒后≤5CFU/cm²。三、标本转运与接收管理规范（一）转运基本要求所有标本需置于带盖、防渗漏的标本盒内转运，标本容器外标注清晰的患者信息（姓名、住院号、床号）、标本类型、采集时间、采集部位、送检目的；感染性标本需粘贴生物危险标识，疑似高致病性病原体、特殊耐药菌标本采用三层包装：第一层为带密封盖的标本容器，第二层为带有吸水材料的密封标本袋，第三层为硬质防渗漏转运箱。院感暴发期间的标本需走专用转运通道，不得与普通患者标本同批次转运，避免交叉污染。（二）转运时限要求严格执行各类标本的转运时限：血培养标本2小时内送至微生物室，室温放置不得超过4小时；痰、尿标本2小时内送检；BALF、厌氧菌标本30分钟内送检；环境监测标本1小时内送检。转运过程中避免剧烈震荡，防止标本泄漏。（三）转运人员防护要求转运普通院感标本需佩戴外科口罩、一次性乳胶手套；转运疑似高致病性呼吸道传染病标本需佩戴N95及以上级别的防护口罩、护目镜/面屏、一次性隔离衣。（四）接收与不合格标本处置微生物室接收标本时需逐一核查信息完整性、标本外观、采集时限，对存在以下情况的标本判定为不合格，予以退回并登记原因：①标本标识模糊、信息不匹配；②标本容器破损、泄漏；③痰标本为唾液、鼻咽部分泌物，涂片不合格；④尿标本从集尿袋底端采集；⑤标本采集后超时存放未冷藏；⑥采样时混入消毒剂影响检测结果。不合格标本退回时需同步告知开单医生，明确重新采集的注意事项，接收记录需至少保存3年。四、实验室处理与报告规范（一）标本前处理所有标本接收后1小时内完成前处理：血培养标本立即置于全自动血培养仪，35±1℃连续监测5天，特殊病原体如布鲁氏菌需延长监测至14天；痰标本接种前先做涂片镜检，不合格标本直接退回；尿标本采用1μL定量接种环接种，便于后续菌落计数。（二）培养鉴定与报告血培养仪器报阳后1小时内完成革兰染色涂片，2小时内向临床发送初步报告，24~48小时完成菌种鉴定与药敏试验；普通细菌培养18~24小时观察菌落形态，48小时内出具正式鉴定与药敏报告；快速POCT检测（如链球菌抗原、艰难梭菌毒素、呼吸道病毒抗原）需在接收后1小时内反馈结果，阳性结果需进一步做培养或核酸检测确认。（三）耐药菌监测要求所有分离的金黄色葡萄球菌需常规开展甲氧西林耐药（MRSA）检测，肠杆菌科细菌常规开展碳青霉烯酶检测，非发酵菌常规开展多粘菌素耐药检测。碳青霉烯类耐药肠杆菌科细菌（CRE）、耐万古霉素金黄色葡萄球菌（VRSA）、耐碳青霉烯类鲍曼不动杆菌（CRAB）等重点耐药菌检出后1小时内上报院感科，二级以上医疗机构CRE检出率需控制在8%以内。（四）标本保存与销毁普通阴性标本检测完成后4℃保存7天，阳性标本-20℃保存3个月，院感暴发相关菌株、新发现耐药菌株置于-80℃长期保存。所有废弃标本需经121℃高压灭菌30分钟后按感染性医疗废物处置，每批次高压灭菌需做生物监测，合格率100%，处置记录至少保存3年。五、全流程质量控制与持续改进（一）室内质控管理每月开展核心质控指标统计分析，包括标本及时送检率、合格痰标本率、血培养污染率、耐药菌报告及时率等，指标未达标的需分析根本原因，制定整改措施。每季度开展一次采样操作模拟考核，覆盖所有临床护士、检验人员，考核通过率需100%。（二）室间质评管理每年至少参加2次国家级或省级临床检验中心组织的微生物检测室间质评，合格率需100%；质评不合格的需在1个月内完成整改，重新参加考核合格后方可继续开展检测工作。（三）信息化管控依托智慧院感系统实现标本全流程溯源，系统自动对采集后超时未送检、不合格标本进行预警，推送提醒信息至对应医护人员；自动统计各科室、各人员的质控指标，将指标完成情况与绩效考核挂钩。（四）暴发预警处置同一科室1周内检出3株及以上相同基因型的耐药菌，或出现3例及以上相同病原体感染病例，系统自动触发院感暴发预警，院感科需在2小时内启动流行病学调查，回溯所有相关标本的采集、检测数据，48小时内完成溯源分析，落实防控措施。六、特殊场景的差异化操作要求（一）院感暴发应急采样发生疑似院感暴发时，需在2小时内启动应急采样，采样范围覆盖所有疑似病例、密切接触医护人员、可疑暴露环境、相关诊疗器械，采样量较常规监测增加1倍，优先采用mNGS、多重核酸检测等快速检测技术，24小时内出具初步检测结果，48小时内完成病原体溯源。（二）新发传染病标本采集输入性新发呼吸道、消化道传染病标本采集需在三级防护下开展，采用国家统一配发的采样工具，标本采集后置于三层转运箱，2小时内送指定疾控机构检测，医疗机构不得私自开展高致病性病原体的分离培养工作。（三）多重耐药菌定植筛查ICU、新生儿科等重点科室每季度开展一次重点耐药菌定植筛查，MRSA筛查采集鼻拭子，CRE筛查采集肛周拭子，筛查阳性的患者立即落实接触隔离措施，环境采样覆盖所有高频接触表面，包括床栏、呼叫器、监护仪按钮、听诊器、治疗车等。（四）职业暴露处置采集、转运、处理标本过程中发生针刺伤、黏膜暴露等职业暴露时，需立即执行应急处置流程：皮肤暴露者立即在流动水下挤压伤口旁端，尽可能挤出损伤处血液，用肥皂水和流动水