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文档简介
冰冻切片技术试题及答案一、单项选择题(每题1分,共20分)1.临床术中快速冰冻病理诊断从接收到标本至出具诊断报告的最长时限要求为()A.15分钟B.30分钟C.45分钟D.60分钟2.冰冻切片制备过程中最常用的水溶性冷冻包埋剂是()A.OCT化合物B.石蜡C.环氧树脂D.碳蜡3.常规术中冰冻HE切片的适宜厚度为()A.1~2μmB.5~6μmC.10~12μmD.15~20μm4.冷冻切片机进行常规软组织切片时,样品头的适宜设置温度为()A.-10℃~-15℃B.-20℃~-25℃C.-35℃~-40℃D.-50℃以下5.冰冻切片过程中造成组织内大量冰晶形成的最核心原因是()A.固定液浓度过高B.组织冻结速度过慢C.切片刀不够锋利D.染色时间过长6.术中冰冻切片捞片后最常用的快速固定液是()A.3%戊二醛B.AAF液(醋酸-乙醇-福尔马林混合液)C.纯丙酮D.4%多聚甲醛7.冰冻切片防卷板的适宜安装位置为()A.与刀刃处于同一水平面B.高于刀刃0.1~0.2mmC.低于刀刃0.1~0.2mmD.高于刀刃1~2mm8.以下哪种临床场景不属于冰冻切片的常规适用范围()A.手术中判断病变良恶性以确定手术范围B.明确手术切缘是否存在肿瘤残留C.对恶性肿瘤进行精确病理分型及核分级D.确认送检组织中是否存在目标病变(如甲状旁腺、淋巴结)9.新鲜组织取材用于冰冻切片时,以下操作错误的是()A.取材时避免组织沾水、沾生理盐水B.取材厚度控制在0.3~0.5cm,大小不超过样品托直径C.组织块取好后室温放置2小时再冷冻D.尽量去除组织表面的血迹、坏死组织10.冰冻切片HE染色时,关于核染色过浅的常见原因,以下说法错误的是()A.固定不及时导致核蛋白降解B.苏木精染液氧化过度、染色力下降C.切片过厚D.分化时间过长11.进行含大量脂肪组织的冰冻切片时,以下调整方式错误的是()A.将样品头温度下调至-30℃~-35℃B.适当加厚切片厚度至8~10μmC.保持匀速切片节奏D.将样品头温度上调至-15℃12.冰冻切片出现切片皱褶、无法展平的常见原因不包括()A.切片刀变钝B.防卷板位置不当C.组织温度过低、硬度太高D.展片时水温过高13.冷冻切片机日常维护中,以下做法错误的是()A.每日使用后清理切片机内的组织碎屑、废弃包埋剂B.定期使用75%乙醇对切片机舱内、样品托、刀架进行擦拭消毒C.长期不用时将机箱温度升至室温,彻底干燥后关闭电源D.切片过程中为了操作方便可以将舱盖长时间打开14.冰冻切片用于免疫荧光染色时,切片后最常用的固定液是()A.10%中性福尔马林B.预冷丙酮C.苦味酸固定液D.重铬酸钾固定液15.以下哪种标本不适宜开展术中冰冻切片诊断()A.乳腺肿物切除标本B.肺楔形切除标本C.未经脱钙的骨皮质标本D.甲状腺切除标本16.冰冻切片捞片时,适宜的载玻片温度为()A.0℃以下B.室温C.40℃D.60℃17.冰冻切片制作过程中,为了最大程度减少冰晶形成,对于直径小于0.5cm的小活检或科研用标本,推荐的冷冻方式是()A.直接放在样品托上放入机箱缓慢冷冻B.置于预冷异戊烷-液氮浴中快速冷冻C.放入4%多聚甲醛固定24小时后再冷冻D.放入生理盐水浸泡后冷冻18.冰冻切片脱片的常见原因不包括()A.组织片太厚B.载玻片未做防脱处理C.捞片时组织片与玻片之间存在气泡D.固定不充分19.冰冻切片HE染色过程中,返蓝步骤常用的试剂是()A.1%盐酸酒精B.稀碳酸锂溶液或者37℃温水C.伊红染液D.梯度乙醇20.关于冰冻切片的技术特点,以下说法错误的是()A.制片速度快,适合术中快速诊断B.能较好保存组织内酶、抗原的活性,适合免疫组化、免疫荧光、酶组织化学检测C.组织结构清晰度与细胞细节显示优于常规石蜡切片D.组织收缩率低于石蜡切片,更接近组织活体状态的形态二、多项选择题(每题2分,共20分,多选、少选、错选均不得分)1.冰冻切片相较于常规石蜡切片的优势包括()A.制片流程耗时短B.无高温、有机溶剂处理环节,对抗原破坏小C.能保存热敏感性抗原、膜抗原的活性D.细胞形态细节显示更清晰E.设备与耗材成本更低2.术中冰冻切片诊断的局限性包括()A.切片质量较石蜡切片差,细胞形态细节不足B.制片时间短,无法常规开展免疫组化、特殊染色等辅助检测C.部分病变(如滤泡性甲状腺癌、淋巴瘤)的诊断依赖包膜侵犯观察、免疫标记,冰冻难以准确判断D.容易受到冰晶、皱褶等人工假象干扰,存在误诊风险E.无法判断手术切缘是否存在肿瘤残留3.冰冻切片过程中减少冰晶形成的操作要点包括()A.取材时用吸水纸吸干组织表面血液、体液,避免接触自来水、生理盐水等多余水分B.尽量缩短组织离体到冷冻的间隔时间C.小标本采用异戊烷-液氮快速冷冻法D.科研用高含水标本经固定后用20%~30%蔗糖溶液沉糖脱水,再行包埋冷冻E.组织块取材厚度越大,冰晶形成越少4.冰冻切片出现卷片的常见原因有()A.防卷板安装位置过高,与刀刃间隙过大B.切片刀刃存在缺口或锋利度不足C.防卷板表面粘附组织碎屑、残留OCT胶,光滑度下降D.组织块冷冻温度不足,质地偏软E.切片厚度设置超过20μm5.冰冻切片常用固定液及适用场景匹配正确的有()A.AAF固定液:术中冰冻HE切片快速固定B.预冷丙酮:免疫荧光、酶组织化学染色切片固定C.4%多聚甲醛:科研用冰冻标本沉糖处理前的基础固定D.10%中性福尔马林:电镜超薄切片固定E.3%戊二醛:术中快速HE染色固定6.冷冻切片机的消毒管理要求,以下说法正确的有()A.每日操作结束后需彻底清理舱内的组织碎屑、废弃包埋剂,避免交叉污染B.处理完传染性标本(如结核、特殊感染标本)后,需将舱温升至4℃以上,使用1000mg/L含氯消毒剂擦拭舱内表面,作用30分钟后清理干净C.定期对冷冻切片机进行紫外线照射消毒,消毒时注意遮挡光学传感器等精密部件D.低温状态下可直接将常温消毒液大量喷洒在冷冻舱内提升消毒效率E.更换不同患者的标本切片时,使用75%乙醇擦拭样品托、防卷板、刀刃附近区域,避免交叉污染7.冰冻切片HE染色时,出现核质共染、核浆对比不清的常见原因包括()A.固定不及时,组织自溶导致核蛋白流失B.苏木精染液过度氧化,染色特异性下降C.分化时间不足,苏木精残留于细胞质中D.伊红染色过深E.返蓝不充分8.以下标本类型中,病理医师接收冰冻申请时需提前告知诊断局限性、慎重评估后接收的有()A.直径小于0.2cm的极小活检标本B.怀疑为淋巴瘤的淋巴结标本C.需要判断包膜及血管侵犯才能确诊的甲状腺滤泡性肿瘤标本D.乳腺保乳手术的切缘标本E.甲类/按甲类管理的乙类传染病传染性极强的标本9.冰冻切片操作中,关于切片刀的使用和维护,以下说法正确的有()A.一次性刀片使用时需确认安装牢固,刀刃与样品块平面平行B.切片过程中如果发现刀刃有缺口,需及时调整刀刃位置或更换刀片C.使用后的一次性刀片需统一放入锐器盒,不得随意丢弃D.为节约成本,同一个刀片可连续切10个以上不同患者的标本无需更换或消毒E.可重复使用的钢刀每次使用后需打磨、消毒,干燥后保存10.科研用冰冻切片制备中,关于蔗糖沉糖处理的说法正确的有()A.沉糖的目的是置换组织内的游离水分,减少冷冻过程中冰晶的形成B.常用蔗糖溶液浓度为20%~30%,用PBS缓冲液配制C.沉糖完成的标志是组织块完全沉降至溶液底部D.沉糖处理需在组织充分固定后进行,避免组织自溶E.沉糖后的组织可直接放入-80℃冰箱长期保存,无需包埋三、判断题(每题1分,共10分,正确打√,错误打×)1.冰冻切片制片速度快、诊断效率高,因此所有手术标本都应优先选择冰冻诊断,缩短患者等待时间。()2.冷冻组织时,组织块表面残留的血迹无需清理,直接包埋冷冻不会影响切片质量。()3.冰冻切片的厚度越大,组织与玻片的粘附力越强,越不容易出现脱片。()4.为加快冷冻速度,可将新鲜组织直接投入液氮中冷冻,不会影响切片质量。()5.冰冻切片完成后如果不能立刻染色,可将切片放入-20℃或-80℃冰箱密封保存,避免组织干燥。()6.脂肪组织含有大量脂滴,冷冻后硬度高,因此切片时需要设置更高的温度(-10℃以上)才能切出完整切片。()7.术中冰冻切片固定时间无需过长,一般10~30秒即可进入水洗、染色步骤,避免固定过度导致核固缩。()8.冰冻切片染色后无需脱水透明,直接湿片封片即可满足镜下观察需求。()9.冷冻切片机长期处于低温运行状态,微生物无法存活,因此不需要定期消毒。()10.冰冻切片过程中如果发现组织块冷冻过度、质地太脆,切片呈碎屑状,可用洁净戴手套的手指轻轻按压组织块表面,略微提升组织温度后再切片。()四、简答题(每题8分,共32分)1.简述术中冰冻切片从标本接收到封片完成的基本操作流程。2.简述冰冻切片中冰晶假象的形成原因及预防措施。3.简述术中冰冻切片诊断的适用范围及不适用场景。4.简述冰冻切片HE染色过程中切片脱片的常见原因及应对方法。五、案例分析题(每题9分,共18分)1.某病理科技师在进行乳腺浸润性癌保乳手术的切缘冰冻切片时,发现切出的组织片呈碎屑状,无法形成连续完整的切片,勉强捞出的组织存在大量皱褶、空洞,无法满足诊断需求。请分析可能的操作原因,并简述对应的解决方法。2.某院病理科开展脑部胶质瘤术中冰冻诊断时,镜下观察发现组织内存在大量大小不等的圆形空泡,细胞核被挤压至空泡边缘,初步考虑为脑组织重度水肿,但术后常规石蜡切片显示肿瘤实质无明显水肿,上述空泡为冰冻制片产生的人工假象。请分析该假象的形成机制,并提出后续操作中的改进措施。参考答案一、单项选择题1.B解析:根据《病理科建设与管理指南(试行)》要求,术中快速冰冻病理诊断需在标本接收后30分钟内出具报告,为临床手术方案调整提供依据。2.A解析:OCT化合物是由聚乙二醇、聚乙烯醇组成的水溶性包埋剂,低温下无结晶形成、组织支持力适中,是冰冻切片最常用的包埋介质;石蜡、碳蜡为常温包埋介质,环氧树脂为电镜包埋介质。3.B解析:常规术中冰冻HE切片厚度以5~6μm为宜,过薄易导致组织碎裂,过厚易出现细胞重叠影响诊断;脂肪、脑组织可根据硬度适当调整厚度至7~10μm。4.B解析:常规软组织切片时样品头温度设置为-20℃~-25℃可保持合适硬度;脂肪组织需下调至-30℃~-35℃,温度过高组织发软无法成型,温度过低组织脆硬易碎裂。5.B解析:组织冻结速度过慢时,细胞内外水分会逐渐析出并融合形成大体积冰晶,破坏原有组织结构,形成空泡样假象;快速冷冻可使水分形成直径<1μm的微晶,不破坏细胞结构。6.B解析:AAF液渗透速度快,能同时固定核蛋白与胞质成分,固定后核浆对比清晰,是术中冰冻HE染色的首选快速固定液;戊二醛用于电镜固定,丙酮多用于免疫荧光固定,4%多聚甲醛固定速度慢,不适合快速制片。7.B解析:防卷板高于刀刃0.1~0.2mm时,切出的组织片可沿防卷板平整导出;位置过高易导致卷片,位置过低易挤压刮碎组织。8.C解析:冰冻切片细胞形态清晰度不及石蜡切片,对于需要精细核形态观察、核分裂计数、免疫标记辅助的肿瘤分型分级(如淋巴瘤分型、软组织肉瘤分级)无法准确完成,需待石蜡切片及辅助检测确诊。9.C解析:新鲜组织离体后需尽快冷冻,室温放置2小时会导致组织自溶、核质模糊,严重影响诊断准确性;取材时沾水会增加冰晶形成风险。10.C解析:切片过厚会导致核染色过深、细胞重叠,其余选项均会导致核染色过浅。11.D解析:脂肪组织硬度低,-15℃条件下组织呈软质状态,无法切出完整切片,需降低温度提升硬度。12.D解析:展片水温过高可使组织快速舒展,减少皱褶;刀钝、防卷板位置不当、组织硬度过高均会导致切片皱褶。13.D解析:长时间打开舱盖会导致机箱内温度升高、结霜,影响切片精度,增加设备损耗。14.B解析:预冷丙酮固定速度快,不会造成抗原交联,能较好保存细胞膜表面及胞内抗原活性,是免疫荧光冰冻切片的常用固定液。15.C解析:未经脱钙的骨皮质硬度极高,冷冻状态下也无法用常规切片刀切出完整薄片,不属于冰冻适用范围。16.B解析:室温载玻片接触冷冻组织片时,可使组织表面轻微融化从而牢固粘附于玻片;温度过低易导致脱片,温度过高易造成细胞水肿假象。17.B解析:预冷至-160℃左右的异戊烷-液氮浴无氮气隔热层,可使组织在2~3秒内完全冻结,最大程度减少冰晶形成;直接浸泡生理盐水、缓慢冷冻会增加冰晶,固定后冷冻不适用于需保留酶活性的检测。18.A解析:切片过厚易导致染色过深、细胞重叠,不是脱片的核心原因;载玻片未防脱、气泡残留、固定不充分均会增加脱片风险。19.B解析:稀碳酸锂或弱碱性温水可使苏木精染色的细胞核从分化后的红色恢复为蓝色;盐酸酒精为分化液,伊红为胞质染色液,梯度乙醇为脱水试剂。20.C解析:冰冻切片受冰晶、切片厚度等因素影响,细胞结构清晰度低于常规石蜡切片,对诊断医师经验要求更高。二、多项选择题1.ABC解析:石蜡切片的细胞细节显示优于冰冻切片,冰冻切片的设备与耗材成本高于石蜡制片。2.ABCD解析:评估手术切缘是否存在肿瘤残留是冰冻切片的核心适用场景之一。3.ABCD解析:组织块厚度越大,中心区域冷冻速度越慢,越容易形成大冰晶,因此冰冻取材厚度不宜超过0.5cm。4.ABCD解析:切片厚度过大时组织片刚性增加,不易卷曲,其余选项均为卷片的常见原因。5.ABC解析:3%戊二醛用于电镜固定,10%中性福尔马林为常规石蜡制片固定液,不适用于电镜固定和快速HE染色。6.ABCE解析:低温状态下喷洒大量常温消毒液会立刻在舱内结霜,损坏制冷部件,消毒需在舱温升至4℃以上时进行。7.ABCDE解析:以上因素均会导致核浆边界不清、对比下降,影响诊断。8.ABCE解析:乳腺保乳手术切缘评估是冰冻切片的常规适用场景;极小标本、需免疫标记确诊的病变、高传染性标本需提前告知局限性,慎重接收。9.ABCE解析:不同患者标本切片之间需消毒或更换刀片位置,防止交叉污染导致的诊断假象。10.ABCD解析:沉糖后的组织需用OCT包埋后再冷冻保存,否则会出现组织干裂、抗原降解等问题。三、判断题1.×解析:冰冻切片存在明确的适用范围与诊断局限性,并非所有标本都适合冰冻检查。2.×解析:残留血迹会形成无结构区域,增加切片皱褶、脱落风险,取材时需充分去除。3.×解析:切片过厚时组织重量增加,反而更容易脱片,且会导致细胞重叠影响观察。4.×解析:组织直接投入液氮时,周围会形成氮气隔热层导致冷冻不均,易产生大冰晶,还可能造成组织开裂,需以异戊烷为介质进行快速冷冻。5.√6.×解析:脂肪组织需在-30℃~-35℃的低温条件下才能达到适宜切片的硬度,温度过高会导致组织发软无法成型。7.√8.×解析:冰冻切片染色后需经梯度乙醇脱水、二甲苯透明再封片,否则会出现组织结构模糊、切片褪色等问题,无法长期保存。9.×解析:低温环境下部分微生物仍可存活,组织碎屑残留易造成交叉污染,需定期消毒。10.√四、简答题1.操作流程:①标本核对与取材:接收标本时双人核对患者信息、标本部位、申请项目,快速选取病变典型、无坏死钙化的区域,取材厚度0.3~0.5cm,用吸水纸吸干表面血迹与体液,避免沾水。②包埋冷冻:在样品托上滴加适量OCT包埋剂,将组织按诊断需要的切面摆放平整,根据组织类型设置冷冻温度(软组织-22℃、脂肪-32℃、脑组织-28℃),待包埋剂完全凝固变白、组织硬度适中时准备切片。③切片制备:将样品托固定在样品头,调整组织平面与刀刃平行,安装防卷板使其高于刀刃0.1~0.2mm,粗修暴露组织最大切面后,设置切片厚度5~6μm,匀速转动手轮切出平整无皱褶的组织片,用室温防脱载玻片捞取组织,使其牢固粘附。④固定染色:将切片放入AAF固定液固定15~30秒,自来水冲洗后行HE染色:苏木精染液染色1~2分钟,自来水冲洗,1%盐酸酒精分化1~3秒,稀碳酸锂返蓝30秒,伊红染液染色30秒~1分钟。⑤脱水封片:经梯度乙醇脱水、二甲苯透明后,用中性树胶加盖玻片封片,交由病理医师诊断。2.冰晶形成原因:①组织冷冻速度过慢,细胞内水分逐渐析出形成大冰晶,最常见于厚组织块中心、室温放置过久的标本;②取材时组织表面沾有自来水、生理盐水等多余水分,冷冻后在组织内形成冰晶;③高含水组织(如脑、胚胎组织)未经过沉糖脱水,游离水分含量高,易形成冰晶;④冷冻方式不当,如直接投入液氮导致冷冻不均;⑤冷冻后组织反复冻融,水分重新分布形成大冰晶。预防措施:①组织离体后尽快取材、尽快冷冻,吸干表面多余水分,避免接触外源性水分;②小标本、高含水标本采用异戊烷-液氮浴快速冷冻,使组织在数秒内完全冻结,形成微晶;③科研用高含水标本固定后用20%~30%蔗糖沉糖脱水,置换游离水分;④冷冻后的组织避免反复冻融,长期保存需密封置于-80℃冰箱;⑤取材厚度控制在0.5cm以内,保证冷冻速度均匀。3.适用范围:①术中判断病变良恶性,为手术方案制定提供依据;②评估恶性肿瘤手术切缘是否有肿瘤残留,确定切除范围;③确认送检标本中是否存在目标组织(如甲状旁腺、淋巴结、输精管等);④判断送检淋巴结是否存在转移癌,指导手术分期;⑤评估清创手术中创面是否存在存活组织。不适用场景:①直径<0.2cm的极小标本,制片后无剩余组织用于石蜡对照;②未脱钙的骨、钙化组织,无法切出完整切片;③需依赖包膜/血管侵犯观察、核分裂计数、免疫标记才能确诊的病变(如甲状腺滤泡性肿瘤良恶性判断、淋巴瘤分型、软组织肿瘤分型);④无有效生物安全防护条件时的高传染性标本(如气性坏疽、烈性呼吸道传染病标本);⑤术前已明确诊断、无需术中调整方案的常规切除标本。4.脱片原因:①载玻片未做防脱处理,表面有油污、灰尘,粘附力不足;②捞片时组织与玻片之间残留气泡,局部贴合不紧密;③固定不充分,组织收缩导致粘附力下降;④染色时冲洗水流过大,直接冲击组织区域;⑤切片过厚,组织重量超过粘附力;⑥组织自溶导致结构松散。应对方法:①使用经多聚赖氨酸或APES处理的防脱载玻片,使用前确认表面洁净;②捞片时动作轻柔,赶除组织与玻片间的气泡,使组织平整贴合;③捞片后立即固定,保证固定充分,避免组织自溶;④染色时将玻片倾斜,水流从玻片无组织的一端缓慢流下,避免直接冲击组织;⑤常规切片厚度控制在5~6μm,需厚切的组织适当延长固定时间增强粘附力;⑥需长时间孵育抗体的免疫荧光切片,捞片后用冷丙酮固定10分钟,提升粘附稳定性。五、案例分析题1.可能原因及解决方法:①组织温度过低:乳腺组织含纤维与脂肪成分,温度低于-35℃时硬度过高,切片易碎裂;解决方法为将样品头温度适当上调至-22℃~-25℃,或用戴洁净
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