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文档简介
一谷胱甘肽还原酶(GR)活性
一、材料、仪器设备及试剂
(-)材料
棉花
(二)仪器设备
研钵,高速冷冻离心机,紫外分光光度计,试管数支。
(三)试剂
(1)0.1M(pH7.5)磷酸缓冲液(PBS,含1%PVP);0.2mMEDTA;1.5mMMgC12;0.025mMNADPH;
0.25mM氧化型谷胱甘肽(GSSG)
二、实验步骤
1、酶液提取
取1g棉花叶片于预冷的研钵中,加1ml预冷的磷酸缓冲液在冰浴上研磨成奖,加缓冲液
使终体积为5mlo取5ml于1r/min下离心20min,上清液即为GR粗提液。
2、显色反应
取透明度好、质地相同的15nmiX150mm试管4支,2支为测定管,另2支为对照管。
按下表加入各种溶液:(测定时按表格中各溶液的量加倍,以便于重复测定两次。)
显色反应试剂配制表
试剂名称用量(ml)
0.lmol/L磷酸缓冲液(PBS)0.2
1.5mmol/LMgC120.1对照2支管不加酶液
0.2mmol/LEDTA0.1
0.025nimol/LNADPH0.2
0.25rnM氧化型谷胱甘肽(GSSG)0.2
酶液0.2
蒸馀水2
总体积3
混匀后比色,3min内每30s记录一次数据
三、结果计算
GR总活性=(A(1-AJG%/(A。X0.5XF//XV.)
式中:GR总活性以酶单位每克鲜重表示;
Ao——为照光对照管的吸光度;
A.——为样品管的吸光度;
VT一一为样品液总体积ml;(5ml)
V.——为测定时样品用量ml;(0.2ml)
FW-为样品鲜重g;(:g)
二H202含量测定
二、仪器与用具
分光光度计、离心机、研钵、5mli支,容量瓶10n】17个、移液管0.2ml,离心管5ml
8支
三、试剂及其配制
(1)100uMH202丙酮试剂:取30%分析纯H20257ul,溶于100ml丙酮中,此液稀释100倍。
(2)2M硫酸
(3)丙酮
(4)浓氨水
(5)5%(W/V)硫酸钛
(6)0.3%H。:吸取0.5ml30%用50mmol/L(PH7.0)的磷酸缓冲液(PBS)定容至50ml。
四、方法
1标准曲线制作取10ml离心管7支,顺序编号,按表加入试剂
试剂离心管号
1234567
H20200.10.20.40.60.81.0
4°C预冷丙酮1.00.90.80.60.40.20
5%硫酸钛0.10.10.10.10.10.10.1
浓氨水0.20.20.20.20.20.20.2
3000r/min离心lOmin,弃去上清液,留沉淀
2mol硫酸5.05.05.05.05.05.05.0
待沉淀完全溶解后,将其小心转入10nd容量瓶,蒸储水冲洗离心管,将洗涤液合并后定容至
10ml,415nm下比色。
2样品提取和测定
(1)称3g,按材料和提取剂1:1的比例加入4°C下预冷的丙酮和少许石英砂研磨成匀浆,转
入离心管3000r/min下离心lOmin,弃去残渣,上清液即为样品提取液。
(2)用移液管吸取1ml上清液,按表加入5%硫酸钛和浓氨水,待沉淀形成后3000r/min下离
心lOmin,弃去上清液。沉淀用丙酮重复洗涤5次,直到去除植物色素。
(3)向洗涤后的沉淀中加入2moi硫酸5ml,待完全溶解后,转入10ml容量瓶中,用蒸储水
冲洗离心管,定容至10ml,415nm下比色。
3结果计算每克鲜重植物组织中H202含量(umol/g)=C*Vt/FW*Vl
式中C——标准曲线上查得样品中H202浓度(umol)
Vt一一样品提取液总体积(ml)
VI—测定时用样品提取液体积(ml)
FW——植物组织鲜重(g)
三乙醇脱氢酶(ADH)活性测定
二、仪器与用具
分光光度计、离心机、研钵,容量瓶,离心管
三、试剂
(1)lOOmMHEPES
(2)50mM三羟甲基氨基甲烷(Tris-Hcl)缓冲液(PH8.0)
(3)15mM二硫苏糖醇(DTT)
(4)20%乙醇
(5)0.867mM氧化型辅酶1(NAD)
1、酶液提取
称棉花叶片0.1g,加2mlHEPES溶液,ImlDTT研磨成匀浆,转移到离心管中,10000
r/min下离心15min。上清液即为ADH粗提液。
2、ADH活性测定
在3ml反应体系中包括:(1)在MmTris-Hcl缓冲液:1ml
(2)20%乙醇:0.5ml
(3)15mMDTT0.45ml
(4)0.867mMNAD1ml
(5)酶液:50ul(对照加入50ul缓冲液代替,调零)
在340nni波长下测定吸光度,每隔30s读数一次,共测4min。
3、结果计算
ADH活性二△0D340*Vt/Vs*0.01*t*FW(酶活性单位为:U/(g•min))
U:酷活单位(将每分钟0D减少0.01定义为1个活力单位)
△Az」。:反应时间内吸光度变化;
t:为反应时间(min);(3min)
匕:提取酶液的总体积(ml);(3ml)
Vs:测定时取用酶液体积(ml);(0.05ml)
FW:0.lg
四抗坏血酸过氧化物酶(AsA-POD)活性测定
一、仪器
高速冷冻离心机、紫外分光光度计、研钵、试管。
二、试剂及配置
(1)50mmol/L(PH7.0)的磷酸缓冲液(PBS):取61mlA母液+39mlB母液+蒸播水定容到
400mlo(母液之前配好)
(2)提取液——50mmol/L(PH7.0)的磷酸缓冲液,含2mmol/LAsA和0.Immol/LEDTA—Na2。
配置方法:①取61mlA母液+39mlB母液+蒸储水定容到400ml;
②称取0.1409g的AsA溶到PBS中;
③称取0.0148896g的EDTA—Na?溶到PBS中。
(3)0.3mmol/L的AsA溶液:(配100ml)
配置方法:A法:直接称取0.052839g的AsA,用50mmol/L(PH7.0)的磷酸缓冲液定容到
100ml©
B法:①先配置0.3mo"L的AsA母液:称取5.2839g的AsA配置1L的母液。
②取1ml0.3mol/L的AsA母液用50nmol/L(PH7.0)的PBS定容到100ml。
(4)0.2%H202:用移液抢吸取667同的30%HM用50mmol/L(PH7.0)的PBS定容到100ml。
(AsA的相对分子质量为:176.13;EDTA—N&的相对分子质量为:372,24)
三、方法步骤
1、酶液的提取
称取0.5g叶片,按1:5加入预冷的提取液,在冰浴中研磨后,在4500r/min下离心
15min,上清液为粗酶提取液。(研磨时加2.5ml,洗钵再加2.5ml,提取液共5ml.)
2、酶活性测定
反应体系如下:①50mnol/L(PH7.0)的PBS:1.8ml;
②0.3nmol/L的AsA溶液:100^1;
③粗酶提取液:100R;(对照加提取液代替,调零)
©0.2%H202:1ml;
加入后立即在290nm波长下测定4min内0。2例)值的变化,计算酶活性。
3、结果计算
AAx\7
AsA・
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