血培养规范化采集中国专家共识（2025版）

血培养规范化采集中国专家共识（2025版）前言与背景血流感染是导致全球发病率和死亡率升高的重要原因，尤其是脓毒症和脓毒性休克，已成为临床重症患者面临的主要挑战。准确、及时的病原学诊断是实施精准抗感染治疗、改善患者预后、降低医疗费用的基石。血培养目前仍被公认为诊断血流感染的“金标准”。然而，在临床实践中，血培养标本的采集过程极易受到各种因素的干扰，导致污染率居高不下或假阴性结果频发，这不仅误导了临床用药，还造成了抗生素的滥用和耐药菌株的滋生。随着微生物学检测技术的进步、临床流行病学特征的变化以及对脓毒症病理生理机制认识的加深，既往的血培养采集规范已不能完全满足现代精准医疗的需求。为了进一步规范我国医疗机构血培养标本的采集操作，提高检出率，降低污染率，保障医疗质量与患者安全，特组织国内感染病学、临床微生物学、重症医学、护理学及医院感染控制等多学科领域的专家，在循证医学证据的基础上，结合中国临床实际情况，经过深入研讨，共同制定《血培养规范化采集中国专家共识（2025版）》。本共识旨在为各级各类医疗机构提供科学、实用、可操作的血培养采集指导原则。一、血培养采集的临床指征与时机判断1.1采集指征的精准把握血培养不应被视为一项常规检查，而应在临床怀疑血流感染时及时进行。建议当患者出现以下一种或多种情况时，应立即进行血培养采集：发热与体温异常：患者出现体温升高（>38℃）或体温过低（<36℃），但这并非绝对标准。对于免疫功能低下者（如老年患者、粒细胞缺乏症患者），即使没有明显的发热，仅伴有全身炎症反应综合征（SIRS）的表现，也应高度警惕。血流感染特征性表现：出现寒战、低血压、心动过速、呼吸急促、皮肤花斑或神志改变等脓毒症或感染性休克征象。侵入性操作后：留置中心静脉导管、透析导管或心脏植入物后，患者出现不明原因的发热或局部感染迹象。实验室指标异常：白细胞计数异常升高或降低、中性粒细胞核左移、C反应蛋白（CRP）或降钙素原（PCT）显著升高，且提示可能存在细菌感染。影像学提示：影像学检查发现肝脓肿、肾脓肿、感染性心内膜炎赘生物或其他深部组织感染，且病原体可能入血时。1.2采集时机的优化选择关于采血时机的选择，传统观念强调“寒战时”采血，但在实际临床工作中，寒战往往难以预测且持续时间短暂。2025版共识对此进行了更新与强调：尽早采集原则：一旦怀疑血流感染，应在抗生素使用前立即采集血培养标本，且不必等待体温升高。多项研究表明，在抗生素使用前每延迟一小时采血，患者的生存率都会显著下降。寒战与发热的应对：若患者出现寒战，应立即在寒战发作时或发热高峰前采集，此时血液中细菌浓度最高，检出率最高。若仅观察到发热，建议在发热起始阶段尽快采集。已使用抗生素后的补救：对于已经应用抗生素治疗且疗效不佳的患者，仍建议积极采集血培养。在下一次给药前采集标本最佳，以提高检出阳性率。必要时，可考虑使用含有吸附抗生素树脂的血培养瓶，以中和残存抗生素的抑菌作用。二、采血套数、血量及采血部位的规范2.1采血套数的科学界定采血套数（即采集次数）是区分病原菌与皮肤污染菌的关键指标。单套血培养（仅一次穿刺）难以判断阳性结果是真阳性还是污染，且检出率低。推荐套数：对于疑似菌血症或真菌血症的成人患者，建议同时采集2-3套血培养。定义明确：一套血培养是指从一个穿刺部位采血，通常注入一个需氧瓶和一个厌氧瓶。不同穿刺部位采血应视为不同套数。双侧穿刺：双侧静脉穿刺（如左右手臂）采集2套血培养，能够有效鉴别皮肤定植菌引起的污染。如果是同一部位采集两瓶，则不能算作两套。特殊情况：在怀疑感染性心内膜炎时，建议在24小时内采集3套不同部位的血培养；对于间断性发热的患者，需在24小时至48小时内间隔采集多套。2.2采血量的核心地位采血量是影响血培养阳性率的最关键变量。血液中细菌浓度通常较低（CFU/mL），足够的血量能捕捉到更多的细菌，提高敏感性。成人标准：每套血培养的推荐采血量为20-30mL。即每瓶注入10-15mL血液。严禁采血量不足（如仅2-3mL），这会显著降低阳性率。过量的血液（超过瓶装容量的10%）也可能导致培养基稀释或抑制因子过多，影响生长。儿童与婴儿标准：儿童患者血培养阳性率与血量成正比，但由于体重限制，不能照搬成人标准。推荐采血量为总血量的1%-4%，通常不超过患儿总血量的1%，且每瓶最低不少于1mL。对于婴幼儿，通常只需采集需氧瓶，因厌氧菌引起的菌血症在此人群中极为罕见。2.3采血部位的选择首选外周静脉：外周静脉穿刺是血培养采集的首选部位。避免静脉留置导管：除怀疑导管相关血流感染（CRBSI）外，严禁从静脉留置导管或输液港中抽取血培养。因为导管尖端常伴有生物膜形成，极易导致污染或仅反映导管定植而非全身感染。避开部位：尽量避免从输液肢体的同侧静脉采血，以防液体稀释血液或药物抑菌。若必须从输液侧采血，应在输液部位远端采血，并穿戴止血带。表：成人与儿童血培养采集关键参数对比参数指标成人患者儿童及婴幼儿患者备注推荐采血套数2-3套1-2套视病情严重程度及感染源而定每套采血量20-30mL(10-15mL/瓶)1-4mL儿童总量不超过总血量1%培养瓶类型需氧瓶+厌氧瓶需氧瓶(必要时加厌氧)儿童厌氧菌感染少见穿刺部位外周静脉，双侧更佳外周静脉，头皮静脉(婴儿)避开静脉留置针三、皮肤消毒与无菌操作技术皮肤表面的常居菌群（如凝固酶阴性葡萄球菌）是血培养污染的主要来源。严格的皮肤消毒和无菌操作是降低污染率的核心环节。3.1皮肤消毒流程采血部位的皮肤准备必须严格执行以下步骤，消毒范围直径应大于5cm（大于预定的穿刺范围），并待其自然干燥。推荐方案（二步法或三步法）：1.第一步：使用70%异丙醇酒精棉签或纱布擦拭穿刺点，由中心向外螺旋式消毒，作用时间不少于30秒。2.第二步（推荐）：使用含量大于0.5%的葡萄糖酸氯己定乙醇溶液进行二次消毒，由中心向外螺旋涂抹，作用时间不少于30秒，待自然干燥。3.替代方案：若对氯己定有禁忌，可使用碘伏（有效碘1%-2%）消毒两次，每次作用时间不少于1.5-2分钟，确保完全干燥。碘伏与酒精的比较：虽然碘伏应用广泛，但循证医学证据表明，葡萄糖酸氯己定乙醇溶液在降低血培养污染率方面优于碘伏，且干燥速度快，推荐作为一线选择。3.2培养瓶塞消毒血液注入培养瓶前，必须对瓶塞进行严格消毒，防止瓶塞表面的微生物带入培养系统。消毒剂选择：使用70%异丙醇酒精或碘伏。操作要点：去除瓶塞上的塑料保护盖（若有），用70%酒精棉签擦拭瓶塞表面及橡胶边缘，并保持自然干燥时间不少于15秒。严禁在瓶塞未干时刺入针头，亦不得用手指触摸瓶塞。3.3采集技术与防护无针技术：推荐使用真空采血系统连接血培养瓶，减少空气进入和spills的风险。避免换针头：传统的“换针头”操作反而增加了针刺伤风险和污染机会，且现代采血器设计已考虑到这一点，因此采血后不应更换针头直接注入培养瓶。顺序问题：若同时采集其他管（如血常规、生化管），血培养瓶应优先采集。这是为了避免后续采血针可能被携带污染的试管塞污染，进而将污染物带入血培养瓶。个人防护：采血人员必须佩戴口罩、无菌手套，并严格执行手卫生。四、导管相关性血流感染（CLABSI）的采集策略当怀疑中心静脉导管相关血流感染时，需要通过特殊的采集策略来鉴别感染源是来自于导管还是其他部位。4.1保留导管时的诊断方法若患者病情危重或导管置入困难，暂不拔除导管，可采用配对血培养法：操作方法：至少同时采集两套血培养。一套：从外周静脉穿刺采集。一套：从导管中心静脉接口采集（需先消毒导管接口，并丢弃前5-10mL血液以冲走导管内残留的抗凝剂或可能存在的污染物，或抽取后注入血培养瓶）。结果解读：若导管血培养阳性时间比外周血培养阳性时间早2小时以上，且菌种相同；或导管血培养的菌落数是外周血的5-10倍以上（需定量培养系统），则高度提示导管相关血流感染。4.2拔除导管时的诊断方法若决定拔除导管，应对导管尖端进行培养（如Maki半定量培养），同时采集至少一套外周血培养。操作：无菌剪取导管尖端5cm，送检微生物室进行滚动培养。判断：若导管尖端培养出的微生物与外周血培养结果一致，且排除其他感染源，可确诊为CLABSI。五、培养瓶的选择、标记与运输5.1培养瓶的科学选择临床科室应根据患者感染的病原学特点合理选择培养瓶，不应盲目使用单一类型。需氧瓶：必备瓶。绝大多数细菌（包括葡萄球菌、肠杆菌科细菌、铜绿假单胞菌等）及真菌在需氧或微需氧环境下生长良好。厌氧瓶：对于成人患者，强烈建议常规配套使用厌氧瓶。厌氧菌在腹腔感染、盆腔感染、组织坏死等情况下常见，且单用需氧瓶会漏检这类细菌。厌氧瓶中通常含有树脂，也有助于吸附部分抗生素，提高已用药患者的阳性率。特殊瓶：对于怀疑分枝杆菌感染（如结核）或真菌感染的特殊患者，应选择专用的分枝杆菌培养瓶或真菌培养瓶（如需延长孵育时间）。5.2标本标记与信息录入标签规范：每个培养瓶上必须贴上清晰的条形码标签，包含患者姓名、住院号/门诊号、采集日期、具体时间（精确到分）、采集部位及采集者姓名。信息一致性：标签信息必须与医嘱及申请单完全一致，错误的标记会导致严重的医疗差错。双侧标记：若采集双侧静脉血，必须在标签上明确标注“左”、“右”或具体部位，以便临床医生快速判断污染可能。5.3标本运输与接收血培养标本采集后应立即送检，室温运输，切勿冷藏或冷冻。运输时效：采集后应在2小时内送达实验室。若因故无法及时送达，应置于室温下保存，严禁放入冰箱或孵育箱，因为低温会抑制某些病原菌（如脑膜炎奈瑟菌、淋病奈瑟菌）的生长。运送安全：运送过程中应防止剧烈震荡，避免瓶塞渗漏。拒收标准：实验室应建立严格的拒收标准，包括但不限于：标签错误或缺失、瓶塞破裂、渗漏、培养瓶过期、已冷藏送检等。对于采血量严重不足（成人<5mL/瓶）的标本，实验室应在报告中注明“采血量不足可能影响检出率”。六、特殊人群与特殊情况的采集注意事项6.1儿童患者儿童血培养面临独特的挑战。由于儿童血容量小，难以多次多部位大量采血，且细菌血症往往伴随高菌血症浓度。策略调整：儿童血培养应更加注重采血量与总血量的比例。虽不强调厌氧瓶常规使用，但对于怀疑腹内感染或咬伤感染的患者，仍应考虑加做厌氧培养。标本处理：无论采血量多少，都应注入血培养瓶，而不是注入血常规管中送检培养，因为后者缺乏促生长物质且可能含有抗凝剂抑制细菌生长。6.2怀疑感染性心内膜炎（IE）IE患者可出现间歇性菌血症，采血策略需更加激进。采集方案：在初次就诊后的1-2小时内，从不同穿刺部位采集3套血培养。若已用抗生素：若患者已接受抗生素治疗且病情稳定，可停药2-3天后再采集，以清除血中残留抗生素的影响，提高培养阳性率。6.3怀疑布鲁氏菌病布鲁氏菌生长缓慢，且具有传染性。特殊要求：采血量应适当增加（每瓶10mL），并延长孵育时间（通常需培养至28天以上）。实验室必须在申请单上注明疑似布鲁氏菌，以便实验室采取相应的生物安全防护措施。七、血培养质量指标监测与持续改进为了确保血培养采集规范的落地执行，医疗机构必须建立完善的质量监测体系，定期评估并反馈。7.1关键质量指标（KPI）医院感染管理科和检验科应联合监测以下指标：血培养污染率：这是衡量采集质量的核心指标。理想的污染率应控制在<3%以内。常见的污染菌包括凝固酶阴性葡萄球菌（如表皮葡萄球菌）、棒状杆菌、芽孢杆菌等（需结合临床判断）。若污染率持续高于3%，需启动对护理和采血人员的再培训。采血量达标率：监测成人单瓶采血量是否达到8-10mL的标准。双套/双侧采集率：监测住院患者血培养送检中，双套及以上采集的比例。采血时间分布：分析抗生素使用前采集的比例。7.2污染的判定与处理当血培养报阳（尤其是革兰阳性球菌），且初步判定为可能污染菌时，微生物室应主动与临床医生沟通。判定标准：仅需氧瓶或厌氧瓶中1瓶阳性，且为皮肤常见菌群；患者无明显感染症状，体温平稳，白细胞正常；多次培养仅一次阳性且菌种相同。处理流程：不要立即启动针对该污染菌的广谱抗生素治疗，应结合临床体征及其他炎症指标综合判断。若确定为污染，无需抗感染治疗，但需评估是否因采血操作不当所致。八、多学科协作与教育培训血培养的规范化不仅仅是操作者的责任，而是涉及医生、护士、检验人员及感控人员的系统工程。8.1临床医生的职责合理开具血培养医嘱，明确填写临床诊断和疑似病原菌，避免“大撒网”式无效送检。重视检验结果，根据血培养回报及时调整抗生素，实现“降阶梯治疗”。8.2护理与采血人员的职责严格执行本共识规定的采集流程，特别是皮肤消毒、采血量和双侧穿刺原则。做好患者解释工作，消除患者对多套采血的误解，提高依从性。8.3检验科人员的职责建立快速报阳机制，危急值立即报告。定期发布血培养统计分析报告，向临床反馈污染率和病原菌分布趋势。参与临床疑难病例讨论，协助解读血培养结果。8.4教育培训机制医院应定期（至少每年一次）组织全院性的血培养规范化培训与考核。新入职医护人员必须经过血培养采集操作培训并考核合格后方可独立上岗。培训内容应涵盖理论原理、标准操作流程（SOP）、职业暴露防护及废弃物处理。表：血培养采集常见错误与纠正措施常见错误潜在后果纠正措施单套采集或单瓶采集无法区分污染与真感染，阳性率低强制执行至少2套（双瓶双部位）采集采血量不足（<5mL）假阴性率显著增加，延误治疗使用刻度采血器，确保每瓶足量消毒后未待干即穿刺消毒剂进入培养瓶抑制细菌生长，或刺破皮肤将未灭菌菌群带入严格执行自然干燥时间，氯己定>30秒，碘伏>90秒从静脉留置针采血极高