标准解读
《GB 5009.157-2016 食品安全国家标准 食品中有机酸的测定》与《GB/T 5009.157-2003 食品中有机酸的测定》相比,主要在以下几个方面进行了调整和更新:
-
标准性质变化:从推荐性标准(GB/T)升级为强制性标准(GB),表明该标准由推荐执行转变为必须遵守,体现了国家对食品安全检测中有机酸测定的重视程度提高。
-
适用范围扩展:2016版标准可能对适用的食品种类或有机酸类型进行了更全面的覆盖,以适应不断发展的食品行业和消费者健康需求,确保更广泛的食品安全监测要求得到满足。
-
检测方法更新:新版标准可能引入了新的检测技术和方法,比如高效液相色谱法(HPLC)、气相色谱法(GC)或质谱联用技术等现代分析手段,提高了检测的灵敏度、准确性和效率,同时可能淘汰了一些过时的技术。
-
限量要求调整:根据最新的科学研究成果和食品安全风险评估,2016版标准可能对某些有机酸的允许含量限值进行了修订,确保食品安全控制指标更加科学合理。
-
精密度和准确度提升:新标准可能对检测过程中的精密度和回收率要求进行了严格规定,以提高检测结果的可靠性和可比性,保障检测数据的一致性和准确性。
-
采样和前处理方法优化:为了更好地反映样品的真实状况,新版标准可能改进了样品的采集、保存、制备及净化步骤,减少检测过程中的干扰因素,提高检测效率。
-
术语和定义明确:2016版标准可能对相关专业术语给出了更清晰的定义,便于标准使用者准确理解和操作,减少了因理解差异导致的执行误差。
-
质量控制加强:新增或强化了实验室内部质量控制要求,如空白试验、平行试验、加标回收率测试等,确保检测结果的准确性和实验室间的可比性。
这些变动旨在适应科学技术进步、食品安全监管需求的提升以及保护公众健康的要求,体现了食品安全标准的持续改进和完善。
如需获取更多详尽信息,请直接参考下方经官方授权发布的权威标准文档。
....
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- 现行
- 正在执行有效
- 2016-08-31 颁布
- 2017-03-01 实施
文档简介
中华人民共和国国家标准
GB5009.157—2016
食品安全国家标准
食品中有机酸的测定
2016-08-31发布2016-09-20实施
中华人民共和国
国家卫生和计划生育委员会
发布
GB5009.157—2016
Ⅰ
前言
本标准代替GB/T5009.157—2003《食品中有机酸的测定》。
本标准与GB/T5009.
157—2003《食品中有机酸的测定》相比,主要变化如下:
———标准名称修改为“食品安全国家标准食品中有机酸的测定”;
———将适用范围扩充至果冻、固体饮料以及水果罐头等食品;
———增加了乳酸、富马酸和己二酸等被测物。
GB5009.157—2016
1
食品安全国家标准
食品中有机酸的测定
1范围
本标准规定了食品中酒石酸、乳酸、苹果酸、柠檬酸、丁二酸、富马酸和己二酸的测定方法。
本标准适用于果汁及果汁饮料、碳酸饮料、固体饮料、胶基糖果、饼干、糕点、果冻、水果罐头、生湿面
制品和烘焙食品馅料中7种有机酸的测定。
2原理
试样直接用水稀释或用水提取后,经强阴离子交换固相萃取柱净化,经反相色谱柱分离,以保留时
间定性,外标法定量。
3试剂和材料
除非另有说明,本方法所用试剂均为分析纯,水为GB/T6682规定的一级水。
3.1试剂
3.1.1甲醇(CH3OH):色谱纯。
3.1.2无水乙醇(CH3CH2OH):色谱纯。
3.1.3磷酸(H3PO4)。
3.2试剂配制
3.2.1磷酸溶液(0.1%):量取磷酸0.1mL,加水至100mL,混匀。
3.2.2磷酸-甲醇溶液(2%):量取磷酸2mL,加甲醇至100mL,混匀。
3.3标准品
3.3.1乳酸标准品(C3H6O3),纯度≥99%。
3.3.2酒石酸标准品(C4H6O6),纯度≥99%。
3.3.3苹果酸标准品(C4H6O5),纯度≥99%。
3.3.4柠檬酸标准品(C6H8N7),纯度≥98%。
3.3.5丁二酸标准品(C4H6N4),纯度≥99%。
3.3.6富马酸标准品(C4H4O4),纯度≥99%。
3.3.7己二酸标准品(C6H10N4),纯度≥99%。
3.4标准溶液配制
3.4.1酒石酸、苹果酸、乳酸、柠檬酸、丁二酸和富马酸混合标准储备溶液:分别称取酒石酸1.25g、苹果
酸2.
5g、乳酸2.
5g、柠檬酸2.
5g、丁二酸6.
25g(精确至0.
01g)和富马酸2.
5mg(精确至0.
01mg)于
GB5009.157—2016
2
50mL小烧杯中,加水溶解,用水转移到50mL容量瓶中,定容,混匀,于4℃保存,其中酒石酸质量浓度
为2500μg/mL、苹果酸5000μg/mL、乳酸5000μg/mL、柠檬酸5000μg/mL、丁二酸12500μg/mL
和富马酸12.
5μg/mL。
3.4.2酒石酸、苹果酸、乳酸、柠檬酸、丁二酸、富马酸混合标准曲线工作液:分别吸取混合标准储备溶
液(
3.4.1)0.50mL、1.00mL、2.00mL、5.00mL、10.00mL于25mL容量瓶中,用磷酸溶液(3.2.1)定容
至刻度,混匀,于4℃保存。
3.4.3己二酸标准储备溶液(500μg/mL):准确称取按其纯度折算为100%质量的己二酸12.5mg,置
25mL容量瓶中,加水到刻度,混匀,于4℃保存。
3.4.4己二酸标准曲线工作液:分别吸取标准储备溶液(3.4.3)0.50mL、1.00mL、2.00mL、5.00mL、
10.00mL于25mL容量瓶中,用磷酸溶液(3.2.1)定容至刻度,混匀,于4℃保存。
3.5材料
强阴离子固相萃取柱(
SAX):1000mg,6mL。使用前依次用5mL甲醇、5mL水活化。
4仪器和设备
4.1高效液相色谱仪,带二极管阵列检测器或紫外检测器。
4.2天平:感量为0.01mg和0.01g。
4.3高速均质器。
4.4高速粉碎机。
4.5固相萃取装置。
4.6水相型微孔滤膜:孔径0.45μm。
5分析步骤
警告:实验人员在使用液氮时,应佩戴手套等防护工具,防止意外洒溅,造成冻伤。
5.1试样制备及保存
5.1.1液体样品
将果汁及果汁饮料、果味碳酸饮料等样品摇匀分装,密闭常温或冷藏保存。
5.1.2半固态样品
对果冻、水果罐头等样品取可食部分匀浆后,搅拌均匀,分装,密闭冷藏或冷冻保存。
5.1.3固体样品
饼干、糕点和生湿面制品等低含水量样品,经高速粉碎机粉碎、分装,于室温下避光密闭保存;对于
固体饮料等呈均匀状的粉状样品,可直接分装,于室温下避光密闭保存。
5.1.4特殊样品
对于胶基糖果类黏度较大的特殊样品,现将样品用剪刀铰成约2mm×2mm大小的碎块放入陶瓷
研钵中,再缓慢倒入液氮,样品迅速冷冻后采用研磨的方式获取均匀的样品,分装后密闭冷冻保存。
GB5009.157—2016
3
5.2试样处理
5.2.1果汁饮料及果汁、果味碳酸饮料
称取5g(精确至0.
01g)均匀试样(若试样中含二氧化碳应先加热除去),放入25mL
容量瓶中,加
水至刻度,经0.
45μm水相滤膜过滤,注入高效液相色谱仪分析。
5.2.2果冻、水果罐头
称取10g(精确至0.
01g)均匀试样,放入50mL
塑料离心管中,向其中加入20mL水后在
15000r/min的转速下均质提取2min,4000r/min离心5min,取上层提取液至50mL容量瓶中,残
留物再用20mL水重复提取一次,合并提取液于同一容量瓶中,并用水定容至刻度,经0.
45μm水相滤
膜过滤,注入高效液相色谱仪分析。
5.2.3胶基糖果
称取1g(精确至0.
01g)均匀试样,放入50mL具塞塑料离心管中,加入20mL
水后在旋混仪上振
荡提取5min,在4000r/min下离心3min后,将上清液转移至100mL容量瓶中,向残渣加入20mL
水重复提取1次,合并提取液于同一容量瓶中,用无水乙醇(3.
1.2)定容,摇匀。
准确移取上清液10mL于100mL鸡心瓶中,向鸡心瓶中加入10mL无水乙醇(3.
1.2),在80℃±
2℃下旋转浓缩至近干时,再加入5mL无水乙醇(3.1.2)继续浓缩至彻底干燥后,用1mL×1mL水洗
涤鸡心瓶2次。将待净化液全部转移至经过预活化的SAX固相萃取柱中,控制流速在1mL/min~
2mL/min,弃去流出液。用5mL水淋洗净化柱,再用5mL磷酸-甲醇溶液(3.2.2)洗脱,控制流速在
1mL/min~2mL/min,收集洗脱液于50mL鸡心瓶中,洗脱液在45℃下旋转蒸发近干后,再加入
5mL无水乙醇(3.1.2)继续浓缩至彻底干燥后,用1.0mL磷酸溶液(3.2.1)振荡溶解残渣后过0.45μm
滤膜后,注入高效液相色谱仪分析。
5.2.4固体饮料
称取5g(精确至0.
01g)均匀试样,放入50mL烧杯中,加入40mL水溶解并转移至100mL
容量
瓶中,用无水乙醇(
3.1.2)定容至刻度,摇匀,静置10min。
准确移取上清液20mL于100mL鸡心瓶中,向鸡心瓶中加入10mL无水乙醇(3.
1.2),在80℃±
2℃下旋转浓缩至近干时,再加入5mL无水乙醇(3.1.2)继续浓缩至彻底干燥后,用1mL×1mL水洗
涤鸡心瓶2次。将待净化液全部转移至经过预活化的SAX固相萃取柱中,控制流速在1mL/min~
2mL/min,弃去流出液。用5mL水淋洗净化柱,再用5mL磷酸-甲醇溶液(3.2.2)洗脱,控制流速在
1mL/min~2mL/min,收集洗脱液于50mL鸡心瓶中,洗脱液在45℃下旋转蒸发近干后,再加入
5mL无水乙醇(3.1.2)继续浓缩至彻底干燥后,用1.0mL磷酸溶液(3.2.1)振荡溶解残渣后过0.45μm
滤膜后,注入高效液相色谱仪分析。
5.2.5面包、饼干、糕点、烘焙食品馅料和生湿面制品
称取5g(精确至0.01g)均匀试样,放入50mL塑料离心管中,向其中加入20mL水后在
15000r/min均质提取2min,在4000r/min下离心3min后,将上清液转移至100mL容量瓶中,向
残渣加入20mL水重复提取1次,合并提取液于同一容量瓶中,用无水乙醇(3.
1.2)定容,摇匀。
准确移取上清液10mL于100mL鸡心瓶中,向鸡心瓶中加入10mL无水乙醇(3.
1.2),在80℃±
2℃下旋转浓缩至近干时,再加入5mL无水乙醇(3.1.2)继续浓缩至彻底干燥后,用1mL×1mL水洗
涤鸡心瓶2次。将待净化液全部转移至经过预活化的SAX固相萃取柱中,控制流速在1mL/min~
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2mL/min,弃去流出液。用5mL水淋洗净化柱,再用5mL磷酸-甲醇溶液(3.2.2)洗脱,控制流速在
1mL/min~2mL/min,收集洗脱液于50mL鸡心瓶中,洗脱液在45℃下旋转蒸发近干后,用5.0mL
磷酸溶液(
3.2.1)振荡溶解残渣后过0.45μm滤膜后,注入高效液相色谱仪分析。
5.3仪器参考条件
5.3.1酒石酸、苹果酸、乳酸、柠檬酸、丁二酸和富马酸的测定
5.3.1.1色谱柱:CAPECELLPAKMGS5C18柱,4.6mm×250mm,5μm,或同等性能的色谱柱。
5.3.1.2流动相:用0.1%磷酸溶液-甲醇=97.5+2.5(体积比)比例的流动相等度洗脱10min,然后用较
短的时间梯度让甲醇相达到100%并平衡5min,再将流动相调整为0.
1%磷酸溶液-甲醇=97.5+2.5
(体积比)的比例,平衡5min。
5.3.1.3柱温:40℃。
5.3.1.4进样量:20μL。
5.3.1.5检测波长:210nm。
5.3.2己二酸的测定
5.3.2.1色谱柱:CAPECELLPAKMGS5C18柱,4.6mm×250mm,5μm,或同等性能的色谱柱。
5.3.2.2流动相:0.1%磷酸溶液-甲醇=75+25(体积比)等度洗脱10min。
5.3.2.3柱温:40℃。
5.3.2.4进样量:20μL。
5.3.2.5检测波长:210nm。
5.4标准曲线的制作
将标准系列工作液分别注入高效液相色谱仪中,测定相应的峰高或峰面积。以标准工作液的浓度
为横坐标,以色谱峰高或峰面积为纵坐标,绘制标准曲线。(标准图谱见附录A)
5.5试样溶液的测定
将试样溶液注入高效液相色谱仪中,得到峰高或峰面积,根据标准曲线得到待测液中有机酸的
浓度。
6分析结果的表述
试样中有机酸的含量按式(
1)计算:
X=
C×V×1000
m×1000×1000
…………(1)
式中:
X
———试样中有机酸的含量,单位为克每千克(
g
/
kg
);
C
———由标准曲线求得试样溶液中某有机酸的浓度,单位为微克每毫升(
μg
/mL);
V
———样品溶液定容体积,单位为(mL);
m
———最终样液代表的试样质量,单位为克(
g);
1000———换算系数。
计算结果以重复性条件下获得的两次独立测定结果的算术平均值表示,结果保留两位有效数字。
GB5009.157—2016
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7精密度
在重复性条件下获得的两次独立测定结果的绝对差值不得超过算术平均值的10%。
8其他
检出限与定量限均为:
a)果汁、果汁饮料、果冻和水果罐头:酒石酸250mg/
kg、苹果酸500mg
/
kg、乳酸250mg
/
kg、柠
檬酸250mg/
kg、丁二酸12
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