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文档简介
实验八 PCR产品纯化及定向克隆,一、实验目的 学习并掌握基因工程操作技术中最常用的DNA纯化和连接方法;巩固DNA酶切的操作。,二、实验原理 PCR产物一般都含有过量的引物、Taq酶及dNTP等成分,直接影响后续的基因操作,利用苯酚/氯仿、氯仿依次抽提反应体系中的酶,然后在酸性条件下用乙醇沉淀DNA。 根据实验六所用的PCR引物,其产品的5和3末端分别具有EcoR I和Not I酶切位点,而载体pET32的多克隆位点中也有此两个酶切位点。因此,若将PCR产物与载体分别用EcoR I和Not I进行双酶切,所得的产物相应末端正好互补,可用T4 DNA连接酶在体外进行连接。,正向引物(P1) EcoRI 5-CGCGAATTCATGGCAGATCAGCTCACCGATGATC-3 反向引物(P2): Not I 5-AGAGCGGCCGCCTTTGCCATCATAACTTTGACAAA-3,三、实验材料与主要试剂 1、实验材料 实验二提取的质粒载体pET32 实验七的PCR产品以及实验八的RT-PCR产品 2、主要试剂 限制性核酸内切酶:EcoR I和Not I T4 DNA连接酶 苯酚/氯仿/异戊醇、氯仿、醋酸钠(pH5.2)、 无水乙醇、70%乙醇等,四、实验步骤 1、PCR产品的纯化 每组同学的PCR和RT-PCR产品合并,约130l,转入1.5ml离心管中,向PCR产品中加入150l苯酚/氯仿/异戊醇,旋涡混合,14000 rpm离心5 min; 将上层水相转移至新离心管,加入150l氯仿,旋涡混合,14000 rpm离心5 min; 再将上层水相转移至新离心管,加10l醋酸钠和250l无水乙醇,混匀后,离心管插入冰中放置 30 min; 在4下14000 rpm离心10 min,去除上清,观察DNA沉淀。 加20l灭菌水溶解DNA,备用。,四、实验步骤 2、PCR产品与载体pET32的双酶切 分别在两个1.5mL离心管中准备双酶切反应混合液。 A. 10 H buffer 5l B. 10 H buffer 5l 0.1% BSA 5l 0.1% BSA 5l EcoR 2l EcoR 2l Not 2l Not 2l PCR产品 20l pET32载体 约2g 灭菌蒸馏水 16l 加灭菌蒸馏水至总体积50l,将上述两个离心管内的混合物轻轻混匀,37水浴酶切3小时。,四、实验步骤 3、酶切产品的纯化 酶切后的PCR产品和载体合并 (约100l ),加入100l苯酚/氯仿/异戊醇,旋涡混合,14000 rpm离心5 min; 将上层水相转移至新离心管,加入100l氯仿,旋涡混合,14000 rpm离心5 min; 再将上层水相转移至新离心管,加10l醋酸钠和250l无水乙醇,混匀后,离心管插入冰中放置 30 min; 在4下14000 rpm离心10 min,去除上清; 加入500l 70%乙醇洗涤DNA沉淀,在4下14000 rpm离心5min,去除上清,空气干燥; 加8l灭菌水溶解DNA,备用。,四、实验步骤 4、目的基因(CaM5)与载体(pET32)的连接 在灭菌的PCR管中依次加入: 10 T4 DNA Ligase buffer 1l T4 DNA Ligase 1l PCR产品和pET32 8l,将混合物轻轻混匀,16连接过夜
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