生理实验报告

1 / 28 生理实验报告 生医 2016 秋 生 理 学实 指导教师： 实 验 员： 学 号： 联系方式： 验报告 实验一 骨骼肌的观察及骨骼肌的单收缩与强直收缩 【目标要求】 1.掌握蛙类动物单毁髓的实验方法。 2.掌握坐骨神经 -腓肠肌标本和坐骨神经干标本的制备方法。 3.学习肌肉收缩的记录方法。 4.观察与分析肌肉单收缩的三个时相，分析骨骼肌收缩形式与刺激频率之间的关系。 【基本原理】 蛙类动物的某些基本生命活动，如神经的生物电活动、肌肉收缩等与哺乳动物相似。其离体组织所需的生活条件比较简单，易于控制和掌握，而且动物来源丰富，因此在生理学实验中常用蟾蜍的坐骨神经 腓肠肌标本永和坐骨神经标本来观察组织的兴奋性、刺激与反应的规律以及骨骼肌收缩的特点等。 2 / 28 肌肉受到一次阈上刺激而产生的一次收缩为单收缩，其过程可分为三个时相，即潜伏期、缩短期与舒张期。肌肉收到连续的阈上刺激时，如果刺激间隔小于单收缩的时程，相邻两单收缩的时相会出现融合，表现为强直收缩现象。如果表现为每次收缩的 开始发生在上次收缩的舒张期，称不完全强直收缩，如果表现为每次收缩的开始发生在上次收缩的缩短期，称完全强直收缩。躯体运动是以骨为杠杆，以关节为枢纽，由肌肉收缩产生动力完成的。 【材料与器械】 蟾蜍或蛙，蛙类手术器械，蛙板，玻璃板，锌铜弓，小烧杯，滴管，纱布，细棉线，任氏液。 BL-420 生物机能实验系统，张力换能器。 【实验步骤】 1.双毁髓的方法 一手握蟾蜍，食指按压头部前端，拇指压住躯干背部，令其背部向上，头向前俯；另一手持毁髓针在左右耳后腺之间 ，背部的凹陷处将毁髓针垂直刺入，然后将针尖向前刺入颅腔，搅动以捣毁脑组织，此时的动物为单毁髓动物。彻底捣毁脊髓时，可见蟾蜍后肢突然蹬直，然后瘫软。如动物仍表现四肢肌肉紧张或活动自如，表明未毁坏脊髓，必须重新毁髓。 2.剥制后肢标本 3 / 28 将双毁髓的蟾蜍背面向上放在蛙板上，一手持手术镊轻轻提起两前肢之间背部的皮肤，另一手持手术剪横向剪开皮肤，暴露脊柱。用金冠剪横向剪断脊柱。一首持手术镊提起断开的脊柱后端，另一手用金冠剪沿脊柱两侧剪开体壁，再剪断下腹壁肌肉，使头部、前肢及内脏自然下垂，将其自腹 后壁剪除。然后用蘸有任氏液的左手捏住断开的脊柱后端，右手向后方撕剥皮肤，将剥干净的后肢放入盛有任氏液的培养皿中。弃其头部、内脏及剥下的皮肤，清洗手及手术器械上的污物。 3.分离两后肢 左手托起去皮的标本，右手持金冠剪直接剪开耻骨联合，随后剪开两后肢相连的肌肉组 织，并纵向剪开脊柱，将标本一分为二，一只继续剥制标本，另一只放入任氏液中备用。 4.分离坐骨神经 取一侧后肢的脊柱端腹面向上，趾端向外侧翻转，使其足底朝上，用固定针将标本固定在玻璃板下面的蛙板上。用玻璃针沿脊神经向后剥离坐骨神经。沿腓肠肌正上方的股二头肌和半膜肌之间的肌缝找出股部的坐骨神经，坐骨神经基部有一梨状肌盖住神经，用玻璃针轻轻挑起此肌肉，便可看清其深层穿行的坐骨神经。剪断梨状肌，完全暴露坐骨神经，再用玻璃针轻轻挑起神经，自上而下剪去支配腓肠4 / 28 肌之外的其他分支，将坐骨神经游离至腘窝处。用金冠剪剪去多余的脊柱骨及肌肉，只保留坐骨神经发出部位的一小块脊柱骨。取下脊柱端的固定针，用手术镊轻轻提起脊柱骨的骨片，将神经搭在腓肠肌上。 5.游离腓肠肌 用玻璃针将腓肠肌与胫腓骨分离 开，用手术刀片将腓肠肌跟腱与胫腓骨分离开一段，用手术镊在腓肠肌跟腱下穿线并结扎，提起结扎线，剪断跟腱与胫腓骨的联系，游离腓肠肌。 6.分离股骨 一手捏住股骨，沿膝关节剪去股骨周围的肌肉，用金冠剪刮干净股骨上的肌肉，保留股骨的远端二分之三，剪断股骨。剪去膝关节下部的后肢，保留腓肠肌与股骨的联系。 7.检验标本 用手术镊轻轻提起标本的脊柱骨片，使神经离开玻璃板，持经任氏液蘸湿的锌铜弓，使其两极轻触神经，如腓肠肌反生收缩，则表示标本机能正常。提起腓肠肌上的结扎线，勿 使神经收到牵拉，轻轻将标本放入任氏液中，稳定5-10min，即可用于实验。 8.将坐骨神经 -腓肠肌标本的股骨部分插入肌槽的固定孔内，拧紧固定螺丝，将坐骨神经放在电极上，将跟腱上的结扎线与张力换能器相连。 5 / 28 9.用 BL-420生物机能实验系统记录单收缩和强直收缩，步骤如下： 将张力换能器在肌槽上方与肌槽平行地固定于铁支架上，将标本上的结扎线缚于张力换能器悬梁壁上，将换能器输出的插头连于 BL-420 生物机能实验系统。 将 BL-420 生物机能实验系统的输出电极连于肌槽 电极上。选择采样频率、显示方式、显示通道、时间常数、高频滤波，必要时还要选择 50Hz 陷波；记录时选择刺激标记。 选择单刺激方式，合适的刺激强度、刺激时间、扫描速度、纵向放缩和刺激标记，记录单收缩曲线。记录曲线参考图。 选择连续刺激方式，参考单刺激的刺激强度、刺激时间、纵向放缩、刺激标记、调节刺激时间间隔和扫描速度，分别记录不完全强直收缩曲线和完全强直收缩曲线。记录曲线参考图。 将记录曲线存盘，根据需要进行剪辑和编辑，最后导出另存或输出打印。 【实验记录】 分析：刺激电压低于阈上刺激，神经不兴奋，肌肉也不会收缩。当电压达到阈强度，神经开始兴奋，肌纤维才开始收缩。当刺激频率增大时，如果刺激频率小于骨骼肌收缩舒张频率就可以看到数个比较完整的收缩舒张波，而当刺6 / 28 激频率大于骨骼肌收缩舒张频率时，骨骼肌一次收缩后还没来得及舒张完全就又受到电刺激重新达到收缩峰值，刺激频率增大到一定强度时就几乎看不到骨骼肌舒张的波形，持续收缩直至僵直。 【注意事项】 1.双毁髓时应注意使蟾蜍头部前俯，用纱布盖在耳后大腺上，防止耳后腺分泌物射入眼内。如分泌物射 入眼内，应立即用生理盐水冲洗眼睛。 标本制备过程中应经常滴加任氏液，防止标本干燥。 【思考题】 1、剥去皮肤的后肢，能用自来水冲洗吗？为什么？ 答：不能。自来水是低渗溶液，会使肌细胞失水萎缩，影响活性和实验结果。 2、金属器械碰压、触及或损伤神经及腓肠肌，可能引起哪些不良后果？ 答：金属器械碰压神经与腓肠肌，会引起肌肉收缩，如果碰的较重，损伤部位及近端的神经就死亡了，以后刺激只能从损伤处向肌肉处之间的部分。另外容易使标本疲劳，失去活性。 3、如何保持标本的机能正常？ 答：金属器械不要碰及、损伤神经或腓肠肌，保持湿润，常加任氏液，最好先泡一会。 7 / 28 实验二 蟾蜍离体蛙心灌流 【目的要求】 1.学习两栖类动物离体心脏的灌流方法，掌握斯式插管法； 2.证明心肌具有自动节律性收缩的生理特征； 3.观察钠离子、钙离子、钾离子、肾上腺素、乙酰胆碱对心脏活动的影响； 4.理解内环境各种理化因素的相对恒定对于细胞进行正常生命活动的重要意义。 【基本原 理】 心脏离体后，仍能有节律地自动收缩、舒张，此为心肌的自动节律性。两栖类动物的心脏没有冠状动脉，心肌细胞直接从心腔中的血液中获得营养物质和氧气，因而可用斯式插管法进行离体心脏灌流。灌流液的成分应同动物内环境的成分基本一致，用于两栖类动物心脏的灌流液为任氏液。始终有任氏液灌流于心腔，离体心脏可长时间地活动，改变灌流液的成分则可引起心脏活动的改变。 【材料与器械】 蟾蜍或蛙，蛙心套管，套管夹，支架，双凹夹，滑轮，烧杯，常用手术器械，蛙板，蛙心夹，微机记录系统或二道记录仪，张 力传感器，滴管，小烧杯，纱布，棉线，任氏液， %NaCl， 5%NaCl， 2%CaCl2， 1%KCl， 1/5000 肾上腺素，8 / 28 1/10 000 乙酰胆碱。 【实验步骤】 1.暴露心脏 取一只蟾蜍，用探针破坏脑和脊髓。双毁髓后，将其仰卧于蛙板上。一手持手术镊提起胸骨后方的皮肤，另一手持解剖剪剪开一个小口，然后将剪刀由开口处伸入皮下，向左、右两侧下颌角方向剪开皮肤。将皮肤掀向头端，再用手术镊提起胸骨后方的腹肌，在腹肌上剪开一口，将解剖剪紧贴体壁向前伸入，并沿皮肤切口方向剪开体壁，剪断 乌喙骨和锁骨，使创口呈一倒三角形。一手持眼科镊，提起心包膜，另一手用眼科剪剪开心包膜，暴露心脏。在腹面可以看到一个心室，其上方有两个心房。心室右上角连着一个动脉干，其根部膨大为动脉圆锥。动脉干向上分成左、右两支主动脉。用玻璃针从动脉干背部穿过，将心脏翻向头侧。在心脏背面两心房下面，有一个呈紫红色的膨大部分，为静脉窦，是两栖类动物心脏的起搏点。静脉窦连左、右前腔静脉，后连一个后腔静脉；后腔静脉近窦处，有左、右肝静脉汇入。 2.离体心脏制备 斯式插管法分四步： 1）动脉切口： 在动脉干分支处下方穿过一线，并打一活结留作固定套管用。在左主动 人体解剖及动物生理学实验报告 9 / 28 蟾蜍骨骼肌生理 姓名： 学号： 系别： 组别： 同组姓名： 实验室温度： 20 实验日期： 2016 年 5 月 8 日 【实验题目】 蟾蜍骨骼肌生理 A 蟾蜍腓肠肌刺激强度与骨骼肌收缩反应的关系 B蟾蜍骨骼肌单个肌肉收缩分析 C 蟾蜍腓肠肌刺激频度与骨骼肌收缩的关系 【实验目的】 确定蟾蜍骨骼肌收缩的 阈水平和最大收缩以及刺激强度与肌肉收缩之间的关系曲线 收缩的三个时期：潜伏期、缩短期、舒张期 刺激频度与肌肉收缩的关系 【实验方法】 1、 蟾蜍坐骨神经 -骨骼肌标本的制作及电路连接 双毁髓处死蟾蜍后，剥去皮肤，暴露腰骶丛神经，游离大腿肌肉之间的做个神经 及小腿的腓肠肌，注意不要将胫神经与腓神经分离。神经端结扎后，剪去无关分支后游离至膝关节处；肌肉端结10 / 28 扎在肌腱上，将腓神经也一起结扎，结扎线留长。保留膝关节，剪去腿骨 ，将标本离体。注意保持神经肌肉湿润。 用大头钉将标本的膝关节固定于标本盒 R2 和 R3 两记录电极之间的石蜡凹槽内， 保证神经、肌肉与电极充分接触。神经中枢端接触刺激电极 S1 和 S2，肌肉接触记录电极 R3 和 R4，之间接触接地电极。 肌肉的结扎线从标本盒中穿出，连接张力换能器。注意连线尽量短，以减小阻 力。在实验过程中，注意标本的休息：将神经搭在肌肉上，用浸湿了任氏液的棉花覆盖神经肌肉，保持湿润。但标本盒内避免有过多的液体，防止短路。 换能器插头接 RM6240 通道 1。刺激输出线两夹子分别连接标本盒的刺激电极 S1 和 S2，插头接刺激输出插口。如果需要记录肌肉的动作电位，则在肌肉所搭置的记录电极上连接输入导线，注意接地，插头接通道 2。 2、蟾蜍骨骼肌生理各项数据测定 A 蟾蜍腓肠肌刺激强度和骨骼肌收缩反应的关系 打开信号采集软件，从“实验”菜单中选取“刺激强度对骨骼肌收缩的影响”， 出现软件自动设置界面，各项参数已设置好，但需11 / 28 要将“采集频率”修改成“ 20kHz”，扫描速度仍然是“ /div”。界面的采集通道默认 为 RM6240B面板上的通道 1.刺激模式自动设置为强度递增刺激，起始强度为 检查装置连接正确后，点击“开始记录”，屏幕下出现扫描线，软件处于记录 状态。扫描线如偏离零点较远，需要调零：将换能器与标本盒的棉线放松，旋转换能器的调零钮，使基线恢复零点。 将换能器连接的棉线拉直，如果基线偏移零位，不必去管。点击“开始刺激”，刺激器按一定时间间隔自动输出单个刺激方波，后一次比前一次强度递增。将“刺激标注”激活，显示出每次发放的刺激的强度。屏幕上应出现一系列由刺激触发的肌肉收缩曲线，同时可以 观察到标本盒中肌肉的收缩。注意文件的保存 当收缩幅度不再变化时，停止刺激，停止记录。 应用测量工具，确定收缩的阈水平和最大收缩。并确定最大收缩所对应的最小 刺激强度。记录下收缩幅度，刺激和放大器的参数设置。 绘制刺激强度与肌肉收缩幅度之间的关系曲线。 B 单个肌肉收缩分析 将 A 实验得到的最大刺激强度对应的收缩曲线展开，应用测量工具确定收缩 的三个时期：潜伏期、缩短期、舒张期。 12 / 28 至少测量三次。计算几次重复测量得到的三个时期的平均值和标 准差。 C 蟾蜍腓肠肌刺激频度与骨骼肌收缩的关系 打开信号采集软件，关闭通道 3 和 4，保留通道 1 和2，分别对应肌肉收缩信 号和肌肉动作电位信号。示波状态下修改参数设置：采集频率 20kHz；通道 1：通道模式为张力，扫描速度400ms/div，灵敏度，放大器时间常数设为直流，滤波频率100Hz；通道 2：通道模式为生物电，扫描速度 400ms/div，灵活度 2mv，放大器时间常数，滤波频率 1kHz。刺激模式为串单单刺激，波宽 1ms，延时 20ms，选择一定的刺激脉冲个数和刺激强度。 点 击“开始记录”，软件进入记录状态。 记录过程中逐渐提高刺激频率，在一定的刺激频率下，点击“开始刺激”，刺 激器按此频率连续发放设定的刺激脉冲个数，肌肉出现相应的收缩。 观察肌肉收缩的总和现象，确定肌肉收缩的最小融合频率，观察肌肉动作电位 与收缩的关系。 观察不同频率引起肌肉收缩的幅度变化。 【实验结果】 A、 蟾蜍腓肠肌刺激强度和骨骼肌收缩反应的关系 13 / 28 表 1 蟾蜍腓肠肌刺激强度与骨骼肌收缩强度的关系表 刺激强度 收缩强度 刺激强度 收缩强度 图 1. 蟾蜍腓肠肌刺激强度和骨骼肌收缩反应的关系图 图 2.蟾蜍腓肠肌刺激强度与骨骼肌收缩强度的曲线图 结果分析： 由上述图表可以看出，刚开始以较低强度刺激时，骨骼肌并没有收缩，直到达到阈刺激强度时，骨骼肌开始收缩；随着刺激强度的增大，骨骼肌收缩强度逐渐增大；刺激强度约为时， 骨骼肌收缩强度达到最大值，最大值在左右；在这之后，随着刺激强度的增大，骨骼肌收缩强度虽然有所增加，但不再明显变化，而是在最大收缩强度附近波动。 14 / 28 产生此现象的原因分析： 由于一块肌肉由许许多多肌纤维组成，骨骼肌的收缩受运动神经元的支配。单个运动神经元可支配多根肌纤维，一个运动神经元与它所支配的肌纤维组成一个运动单位。 实验 一 细胞兴奋的传导 【计划学时】 2 节 目的和原理 要使刺激引起组织兴奋必须具备三个条件，即刺激强度、刺激持续 时间、时间变化率。本次实验固定后两个条件，观察改变刺激强度对骨骼 肌收缩的影响，从而掌握阈刺激、阈上刺激和最大刺激等基本概念，对于 一根神经纤维，只要刺激强度达到阈值，就可引起动作电位的产生及兴奋 的传递。低于阈值的刺激不引起动作电位的产生，刺激强度超过阈值，也 不能增加动作电位的产生幅度，神经纤维对刺激产生的动作电位表现为 “全”或“无”式。因此在时间 强度变化率固定的前提下，刺激强度与 兴奋性成反比，与阈值成正比。 15 / 28 实验 器材 生理多功能实验模拟系统 模拟电子刺激器 观察项目 1、调试模拟电子刺激器 选择刺激输出方式，实验中可选单刺激，手 控启动，其强度由弱到强。刺激波宽可固定在。 2、观察动作电位产生过程 刺激从最低开始，然后逐渐增加 刺激强度，可得到一系列逐步升高的垂直线。最后即使再增加刺激强度， 垂线高度也不再增加。实验中观察动作电位曲线变化过程，标明每次刺 激的强度及阈下、阈、阈上、最大及超最大刺激。 注意事项： 1、神经纤维对刺激产生的动作电位表现为 “全”或“无”式。模拟刺激 应该给予实验对象充分刺激时间。 2、模拟实验中每次刺激之后须待肌肉有相同的间歇时间，待肌肉松驰后给 予刺激。 3、观察实验动作电位过程，视线需与显示器基线水平。 16 / 28 实验二 出、凝血时间检测【计划学时】 2 节 一、出血时的测定 目的和原理 出血时是指从针刺使皮肤毛细血管破损后，血液自选流出到自行停 止的一段时间。当毛细血管和小血管 受伤时，受伤的血管可立即收缩， 局部血流减慢，促使血小板粘着于血管的损伤处，同时血小板释出血管 活性物质，使毛细血管发生较广泛和较持久的收缩，使出血停止。故测 定出血时可了解毛细血管及血小板功能是否正常。正常人的出血时间为 1 4 分钟。出血时处长常见于血小板数量减少的情况，偶见于毛细血管 有缺陷的情况。 实验对象： 人 实验器材： 弹簧针或注射针头、吸水纸、钟或秒表、75%酒精、棉球。 实验步骤和观察项目 一、以 75%酒精棉球消毒耳垂或指端后，用消毒弹簧采血针或注射针头刺激 17 / 28 2 3 毫米深，让血液自然流出，勿施加压力。自血液流出时计算时间。 二、每隔半分钟用吸水纸吸干流出的血液一次。注意吸水纸勿接触伤口，以 免影响结果的准确性。 三、记录开始出血至上出血时时间，或计算吸水纸上的血点数以 2 除之即为 出血时。 注意事项 1、每次用吸水纸吸血时，勿使吸水纸接触伤口，以免影响结果的准确性。 2、如出血超过 15 分钟还在出血 ，则终止实验，给予止血。 二、凝血时间的测定 目的和原理 凝血时间是指血液出体外至发生凝固所需的时间。凝血时间只反映血液本身 凝固过程是否正常，而与血小板的数量及毛细血管的脆性关系较小。凝血因子缺 乏时可使凝血时间延长。在严重的血小板减少时，也可使凝血时间延长。 实验对象： 人 18 / 28 实验器材：弹簧采血针或注射针头、钟或秒表、玻片、 75%酒精、棉球、毛 细玻璃管。 实验步骤和观察项目 一、玻片法 以 75%酒精棉球消毒耳垂或指端后，用消毒弹簧采血针或注射针头刺入 2 3 毫米深，让血自然流出。将第一滴血置于玻片上，每隔半分钟用针尖挑 血一次，直至挑起细纤维状的血丝，即表示开始凝血。自开始流血至挑起细 纤维血丝的时间为凝血时。此法正常为 2 8 分钟。 二、毛细玻璃管法 采血如前，用消毒棉球吸去第一滴血，用毛细玻璃管吸第二滴血，使充 满，立即计时，并每隔半分钟折断一小段至断端出现血纤维为止，为凝血时， 此法正常为 2 7 分钟。 注意事项： 挑动血时应沿一定方向，勿多方向挑动以致破坏血液凝固的纤维蛋白网 状结构，易造成不凝的假象。 19 / 28 实验三血型检测 【计划学时】 2 学时 目的和原理 本实验学习血型鉴定与交叉配血的方法，了解本人的血型。血型是根 据红细胞膜上特异抗原的类型而定的， ABO 血型系统，是根据红细胞膜上 有无 A、 B 抗原分为 A、 B、 AB、 O 型。血型鉴定是将受试者红细胞分别加 标准 A 型血清与标准 B 型血清 中，观察有无凝集现象，从而测知受试者红细胞上有无 A 或 B 抗原。交叉 配血是将受试者的红细胞与血清分别同供血者的血清和红细胞混合，观察有 无凝集现象。为确保输血的安全，在鉴定血型后必须再进行交叉配血，如无 凝集现象，方可进行输血。 实验对象 人 实验器材和药品 显微镜、离心机、采血针、玻片、滴管、 1ml 吸管、小 试管、试管架、牙签、消毒注射器及针头、标准 A和 B 型血清、生理盐水、 75%酒精、碘酒、棉球、消毒棉签。 20 / 28 实验步骤与观察项目 一、 ABO 血型鉴定 玻片法 1、将标准 A 型与 B 型血清各一滴，滴在玻片的同侧，分别标准 A 与 B。 2、用 75%酒精棉球消毒左手无名指，用消毒采血针刺破皮肤。滴 1 滴血盛 有 1ml 生理盐水的小试管中，混匀制成红细胞悬液 3、用滴管吸取红细胞悬液，分别滴一滴于玻片两侧的血清上，用两支牙签 分别混匀。 4、 15min 后肉眼观察有无凝集现象。 试管法 取小试管两支，分别标明 A、 B 字样。按标记分别加入 A 或 B 型标准 血清与受试者的红细胞悬液各 1 滴，混匀后离心1min，取出 试管后用手指轻弹试管底，使沉淀物被弹起，在良好的光源下观察结果。轻 弹管底时，若沉淀物成团漂起，表示发生凝集现象；若沉淀物之边缘呈烟雾 状逐渐上升，最后使试管内液恢复红细胞悬液状态，表示无凝集现象。 注意事项 21 / 28 1、试管法较玻片法结果准确，目前许多单位只采用试管法。 2、吸 A、 B 型标准血清及红细胞悬液时，应使用不同的专用滴管。 3、肉眼看不清凝集现象 时，应在低倍显微镜下观察。 4、红细胞悬液及标准血清须新鲜，因污染后可产生假凝集。 5、红细胞悬液不能太浓或太淡，否则只可出现假阴性反应。 二、交叉配血试验 玻片法 1、以碘酒、酒精消毒皮肤后，用消毒的干燥注射器抽取受血者静血 2ml。 取 1 加入装有 1ml 生理盐水的小试管中，制成红细胞悬液。其余血液装 入另一试管中，待其凝固后离心析出血清备用。 2、以同样方法制成供血者的红细胞悬液与血清。 3、在玻片 的两侧分别注明“主”“次”字样。于主侧分别滴加受血者的血清 及供血者的红细胞悬液各一滴；于次侧分别滴加受血者红细胞悬液及供 血者的血清各一滴。分别用于牙签混匀。 15min 后观22 / 28 察结果。 4、如两则均无凝集现象，表示血型配合，可以输血。 试管法 取小试管 2 支，分别标明“主”“次”字样，各管按玻片法加入相应内 容物各 1 滴，混匀后离心 1min，取出试管观察有无凝集现象。 此法比玻片法迅速。 实验四 心动周期变化观察 【计划学时】 2 节 目的和原理 哺乳动物心脏的特殊传导系统具有自动节律性，但各部分的自律性高 低不同，以窦房结的自律性为最高。正常心脏每次抹去都从窦房结发出，依 次传到心房、心室，引起收缩，所以窦房结被称为哺乳动物心脏的起搏点。 两栖类动物心脏的起搏点是静脉窦。正常情况下，心房和心室在静脉窦起搏 细胞发出的冲动作用下顺序搏动，只有当正常起搏点传来的冲动受阻时，心 脏下部节律性较低的部位才能发出自动节律。本实验的目的是通过 生理机能 23 / 28 实验系统模拟电刺激方法来观察蛙心起搏点和影响蛙心率的体液调节。 实验器材 生理多功能实验模拟系统 观察项目 1、观察模拟心脏模型 从模拟心脏模型的腹面可看到一个心室，左右两 个心房，动脉圆锥和左、右主动脉干。房室之间有一房室沟。两心房 的下端有与两心房相连的静脉窦。静脉窦与前后腔脉相连。观察静脉 窦、心房和心室的收缩顺序并计数正常情况下单位时间内的跳动次数。 2、择模拟刺激模式 观察和记录心脏跳动次数有何变化。 3、选用任氏液模拟冲洗，待心房、心室恢复节律跳动后，再分别使用不 同模拟试剂刺激心脏。观察比较心房、心室搏动反应及心电图活动。 注意事项 1、模拟给药前必须等待心脏模型恢复至正常搏动状态。 2、再次模拟给药前必须进行任氏液模拟反复冲洗。 24 / 28 实验五 间接法测血压 【计划学时】 2 学时 目的和原理 通过本实验了解正确血压测量基本步骤，掌握血压正常数值和影响血压 测量的因素。血压计袖带 充气后压迫肱动脉血管人为阻断血流。肱动脉因无 血流通过故动脉搏动暂时消失。袖带缓慢放气后血液流经狭窄的管径，血流 与管径摩擦增强形成涡流。通过听诊器即可闻及动脉恢复搏动，同时结合血 压计汞柱读数既可间接判断肱动脉血压。 实验对象人 实验器材 台式血压计、听诊器、自动血压计。 实验步骤和观察项目 1、 测血压前准备工作：测血压前半小时禁烟酒，剧烈活动后应休息 15 分钟测量； 2、 测血压体位：最佳体位为平躺仰卧位， 坐位时肘关节须与心脏位置水平； 3、 寻找肱动脉搏动点：于肘窝中线内侧寻找肱动脉搏动点后放置听诊器胸件； 4、 袖带包扎：将袖带包扎于肱动脉搏动点上 2-3cm25 / 28 处，袖带松紧以容纳一指为宜； 5、 充气听诊：关闭打气球充气阀打开血压计汞池阀后缓慢充气，使汞柱缓慢上升至动 脉搏动音消失处后继续充气使汞柱上升 20-30cm； 6、 观察读数：视线与血压计汞住水平读数，听诊到第一个动脉搏动音即为收缩压 ,搏动音逐渐减小其消失处为舒张压 ; 。 7、 整理血压计：打开充气阀门挤压袖带放尽残气后将血压计右倾关闭汞池阀门 折叠袖带后关闭血压计。 注意事项：、使用血压计前必须检查各部件是否完好； 、切忌将听诊器胸件置于袖带中包裹听诊； 、如肱动脉搏动音持续存在需听诊血管变调音读数舒张压。 实验六 肺通气量的测定 【计划学时】 2 学时 目的和原理 了解肺通气的测定方法和正常通气量。肺的主要功能是