磷脂原料药工艺研究

1、原料药生产工艺的研究资料及文献资料1、制备路线及详细依据大豆磷脂是一种具有较高营养价值的天然乳化剂，含有丰富的卵磷脂、脑磷脂、肌醇磷脂、丝氨酸磷脂等成份，其脂肪酸中含有60%的不饱和脂肪酸，并含有丰富的维生素及微量元素，大豆磷脂除了补充人体必需的营养素，还具备其独特的生理活性，对生物膜的生物活性和机体的正常代谢有重要的调节能力。卵磷脂具有较好的保健作用及营养作用1，是一种重要的医药原料。主要有口服级及注射级。 磷脂提取方法主要有以下几种2： 有机溶剂萃取法，有机溶剂无机盐复合沉淀法，色层分离，超临界萃取技术，膜分离法。目前用工业上用于磷脂分离纯化的方法主要是溶剂法和色层分离。其它方法都适用于实

2、验室研究，而难达到工业生的规模。溶剂法文献3报道磷脂的制备主要有2条工艺路线。a路线：先用乙醇提取，后用丙酮脱脂；b路线：先用丙酮脱脂，再用乙醇萃取。乙醇萃取主要是利用蛋白和卵磷脂在乙醇中的溶解度不同，进而将蛋白除掉，提高磷的含量。丙酮脱脂主要是利用油脂类成分易溶于丙酮而磷脂不溶于丙酮，这样达到油脂与磷脂的分离，进而提高磷的含量。本次申报采用的方法为溶剂法及硅胶柱层析法，通过溶剂法可以得到口服级磷脂。进一步通过硅胶柱层析可以得到注射级磷脂。2、工艺流程图浓缩磷脂20，加2倍量的丙酮脱脂3次，每次30min，静置5min，倾出上清液，最后一次抽滤滤饼上清液+滤液60，2倍量90%乙醇反复提取3次

3、，每次1h，合并提取液提取液药渣60，-0.08Mpa减压回收溶剂，浓缩至相对密度为0.961.25（60）液状磷脂稠膏大豆卵磷脂60减压干燥24h，-0.08MPa用甲醇溶解完全，加入硅胶搅拌均匀，晾干，过筛200-300目硅胶甲 醇拌料硅胶硅胶干法装柱，洗脱剂为甲醇，层析分。 流速：2535Lhr。每10L接一个流。 TLC检测，分段合并。200-300目硅胶甲 醇磷脂主段回收溶剂（60，真空度-0.08Mpa），浓缩物减压干燥（60，真空度-0.08Mpa）24h注射用大豆磷脂3.制备工艺研究3.1大豆卵磷脂的制备工艺3.1.1 a路线工艺研究 参考文献a路线的流程图如下：浓缩磷脂乙醇萃

4、取液状磷脂丙酮脱脂大豆卵磷脂根据流程图及文献数据，采用正交试验对a路线进行最佳工艺筛选。3.1.1.1 a路线乙醇萃取正交试验研究3.1.1.1.1 a路线乙醇萃取正交试验的因素及水平见表8-1表8-1 乙醇萃取工艺考察因数水平表因素A（温度）B（时间）C（乙醇量）D（次数）水平15030min1：11水平26060min1：22水平37090min1：33采用以上因素及水平，按L9（34）进行乙醇萃取试验。3.1.1.1.2样品的制备取9份浓缩磷脂，每份50g，以90%乙醇为溶媒，按照正交表所设计的条件进行提取，分别将提取液滤过，合并，浓缩，减压干燥（60，真空度为-0. 08Mpa），得到

5、液状磷脂。3.1.1.1.3考察指标的测定 以水分、磷含量、丙酮不溶物为考察指标。3.1.1.1.4 试验结果 结果见表8-2，直差分析及方差分析见表8-3和表8-4。表8-2 a路线乙醇萃取正交试验结果试验编号浓缩磷脂质量(g)液状磷脂质量（g）水分（%）丙酮不溶物（%）磷含量（%）150.066.971.8760.122.24250.1213.991.4257.232.44350.0918.111.6956.552.13450.0219.421.1657.462.35550.0416.251.5062.782.27650.116.281.3457.242.55750.0111.941.73

6、58.012.30850.058.291.0856.172.13950.0813.201.9463.522.24表8-3 a路线乙醇萃取正交试验直差分析列号1234含磷量（g）试验号111110.1533 212220.3372 313330.3785 421230.4505 522310.3640 623120.1583 731320.2698 832130.1749 933210.2904 K10.28967 0.29124 0.1622 0.2692 K20.32427 0.29203 0.3594 0.2551 K30.24505 0.27572 0.3374 0.3347 R0.07

7、921 0.01631 0.1972 0.0796 表8-4 a路线乙醇萃取正交试验方差分析离差来源平方和自由度均方F值P值显著性因素A0.009462 20.004731 18.6422 P <0.1因素C0.070088 20.035044 138.0893 P <0.01*因素D0.010810 20.005405 21.2973 P<0.05*因素B（空白）0.000508 20.000254 F0.10（2，2）=9.0；F0.05（2，2）=19.0；F0.01（2，2）=99.0；3.1.1.1.5小结经方差分析，相对于因素B，因素C对提取有非常显著性影响，因素

8、D对提取有显著性影响，因素A对提取的影响不显著。通过直观分析得到优化的工艺路线为A2B2C3D2即，602倍量乙醇提取3次，每次60min。9批样品的丙酮不溶物含量差距不大。所以a线路乙醇萃取的最佳工艺为： 60用2倍量90%乙醇提取浓缩磷脂3次，每次1小时，合并提取液，减压浓缩，即得液状磷脂。3.1.1.1.6提取工艺验证根据a路线乙醇萃取工艺优选结果,连续投料三批,结果见表8-5表8-5 a路线乙醇萃取工艺验证结果编号浓缩磷脂量（g）液状磷脂（g）水分（%）丙酮不溶物（%）磷含量（%）第一批50.0419.88 1.7862.98第二批50.1220.121.9161.46第三批50.06

9、20.031.8661.54由表8-15可见，三批结果平行，说明提取工艺条件基本稳定。3.1.1.2 a路线丙酮脱脂正交试验研究3.1.1.2.1 a路线丙酮脱脂正交试验的因素及水平见表8-6表8-6 丙酮脱脂工艺考察因数水平表因素A（脱脂温度）B（提取时间）C（丙酮量）D（提取次数）水平12020min1：12水平23030min1：23水平34040min1：34采用以上因素及水平，按L9（34）进行试验脱脂试验3.1.1.2.2 样品的制备取浓缩磷脂2000g，以4000ml乙醇60提取3次，每次60min，合并提取液，减压浓缩，至珐琅盘中减压干燥（60，真空度-0.08Mpa）24h，

10、称重。保存供丙酮脱脂正交工艺用。取50g液状磷脂，按照按正交试验表所设计的条件，搅拌脱脂，最后一次脱脂完毕进行抽滤，取滤饼，减压干燥（60，真空度-0.08Mpa）24小时，得到粉末磷脂；前几次脱脂完毕后，均静置5分钟，将上清液倾出，沉淀继续脱脂。3.1.1.2.3 考察指标的测定 以水分、含磷量、丙酮不溶物为考察指标。3.1.1.2.4 试验结果 结果见表8-7，直差分析及方差分析见表8-8和表8-9表8-7 a路线丙酮脱脂正交试验结果试验编号液状磷脂卵磷脂质量（g）水分（%）丙酮不溶物（%）磷值（%）150.0630.60 1.2281.982.41250.1234.06 1.0783.7

11、23.09350.0930.04 1.4392.153.08450.0226.43 1.2989.642.76550.0426.16 1.3690.283.13650.1134.59 1.5175.162.63750.0118.18 1.1490.073.13850.0532.78 1.2881.222.62950.0832.33 1.6270.332.71表8-8 a路线丙酮脱脂正交试验直差分析列号1234含磷量（g）试验号111110.72828212221.042236313330.913216421230.718896522310.808344623120.895881731320.5

12、61762832130.849002933210.863211K10.894580.669650.824390.79995K20.807710.899860.874780.83329K30.757990.890770.761110.82704R0.136590.009090.050390.02709表8-9 a路线丙酮脱脂正交试验方差分析离差来源平方和自由度均方F值P值显著性因素A0.028674 20.014337 15.2095 P >0.1因素B0.101977 20.050988 54.0922 P <0.05*因素C0.019466 20.009733 10.3252 P

13、 >0.1因素D0.001885 20.000943 F0.10（2，2）=9.0；F0.05（2，2）=19.0；F0.01（2，2）=99.0；3.1.1.2.5 小结上述方差分析结果表明：以含磷量为考察指标，相对于因素D，因素A、C无显著性差异（P>0.1），因素B有显著性差异（P<0.05），根据直观分析结果，最佳水提取工艺应为A1B2C2D2。从丙酮不溶物含量来看，2号样品的丙酮不溶物含量大于90%，符合规定。结合直差、方差、磷含量来看，最佳工艺定为A1B2C2D2，即，液状磷脂在 20进行丙酮脱脂试验3次，每次用2倍量的丙酮，抽滤，干燥，得到卵磷脂。3.1.1.2

14、.6 a路线脱脂工艺验证根据a路线脱脂工艺优选结果，连续投料三批，结果见表8-10表8-10 a路线脱脂工艺验证结果编号液状磷脂量（g）卵磷脂量（g）水分（%）丙酮不溶物（%）磷含量（%）第一批50.0231.161.5994.31第二批50.2130.941.4792.95第三批50.0530.231.5193.68由表8-19可见，三批结果平行，说明提取工艺条件基本稳定。结论：a路线丙酮脱脂最佳工艺为：液状磷脂在20时，用丙酮脱脂3次，每次用2倍量的丙酮，抽滤，干燥，得到卵磷脂。3.1.1.3 a路线最佳工艺确定以上2组正交试验结果表明a路线的工艺为：浓缩磷脂60时用2倍量90%乙醇3次，

15、每次1小时，合并提取液，减压浓缩，即得液状磷脂。液状磷脂在液状磷脂在20时，用丙酮脱脂3次，每次用2倍量的丙酮，抽滤，干燥，得到卵磷脂。3.1.2 b路线工艺研究参考文献b路线的流程图如下：浓缩磷脂丙酮脱脂粉末粗磷脂乙醇萃取大豆卵磷脂根据流程图及文献数据，采用正交试验对a路线进行最佳工艺筛选。3.1.2.1 b路线丙酮脱脂正交试验研究3.1.2.1.1b路线丙酮脱脂正交试验的因素及水平见表8-6采用以上因素及水平，按L9（34）进行试验脱脂试验3.1.2.1.2 样品的制备 取9份浓缩磷脂，每份50g，按3.1.1.2.2 的方法进行样品制备3.1.2.1.3考察指标的测定 样品的考察指标同3

16、.1.2.1.4 试验结果 结果见表8-12，直差分析及方差分析见表8-13和表8-14表8-12 b路线丙酮脱脂正交试验结果试验编号投料量粉末磷脂质量（g）含水量干重（g）丙酮不溶物含量丙酮不溶物提取率磷含量150.2339.77 1.48%39.18 83.93%65.47%2.65%250.1237.60 1.57%37.01 90.60%66.90%3.16%350.0933.65 1.34%33.20 97.72%64.77%3.05%450.1133.75 1.61%33.21 95.10%63.02%3.23%550.0334.53 1.29%34.08 91.31%62.21%

17、3.37%650.0235.06 1.55%34.52 92.50%63.83%2.96%750.1734.79 1.06%34.42 93.90%64.42%2.75%850.2134.45 1.05%34.09 94.35%64.06%3.20%950.3533.78 1.15%33.39 95.90%63.60%2.86%表8-13 b路线丙酮脱脂正交试验直差分析列号1234丙酮不溶物提取率（%）试验号1111165.77 2122267.06 3133364.88 4212363.16 5223162.25 6231263.86 7313264.64 8321364.32 933216

18、4.07 K165.9052 64.5240 64.6470 64.0291 K263.0866 64.5407 64.7642 65.1868 K364.3435 64.2707 63.9242 64.1195 R2.8186 0.2700 0.8400 1.1577 表8-14 b路线丙酮脱脂正交试验方差分析离差来源平方和自由度均方F值P值显著性因素A11.946425.973286.6938P < 0.05*因素C1.259320.629659.1386P > 0.1因素D2.515421.257718.2540P > 0.1因素B（空白）0.137820.0689F0

19、.10（2，2）=9.0；F0.05（2，2）=19.0；F0.01（2，2）=99.0；3.1.2.1.5小结上述方差分析结果表明：以丙酮不溶物提取率为考察指标，相对于因素B因素（以因素B为空白），因素A有显著性差异（P<0.05），因素C无显著性差异（P>0.10），因素D无显著性差异（P>0.10），根据直观分析结果，最佳提取工艺应为A1B2C2D2。从粉末磷脂的含磷量来看，9批样品的磷含量均较高，除1号样品外均达到口服级标准。结合直差、方差、磷含量来看，最佳工艺定为A1B2C2D2，即，先在20下，进行丙酮脱脂3次，每次用2倍量的丙酮，抽滤，干燥，得到粉末磷脂。3.1

20、.2.1.6提取工艺验证根据a路线脱脂工艺优选结果,连续投料三批,结果见表8-15表8-15 b路线脱脂工艺验证结果编号取样量（g）粉末磷脂量（g）水分（%）丙酮不溶物（%）磷含量（%）第一批100.0871.251.6790.35第二批100.1573.811.790.16第三批100.0271.191.5990.28由表8-5可见，三批结果平行，说明提取工艺条件基本稳定。结论：制备粉末磷脂的最优工艺为20进行丙酮脱脂试验3次，每次用2倍量丙酮，抽滤，干燥，得到粉末磷脂。3.1.2.2 b路线乙醇萃取正交试验研究3.1.2.2.1 b路线乙醇萃取正交试验的因素及水平见表8-1采用以上因素及水

21、平，按L9（34）进乙醇萃取试验。3.1.2.2.2 样品的制备取浓缩磷脂1500g，20用2倍量的丙酮脱脂3次，滤过，取滤饼，减压干燥（60，真空度为-0.08Mpa）24小时，得到粉末磷脂900g。取9份粉末磷脂，每份50g，按 3.1.1.1.2方法制备样品。3.1.2.2.3 考察指标的测定3.1.2.2.4 试验结果 试验结果见表8-16，直差分析及方差分析见表8-17和表8-18表8-16 b路线乙醇萃取正交试验结果试验编号投料量（g）卵磷脂质量（g）水分干重（g）丙酮不溶物（g）磷含量150.013.43 1.91%3.36 90.98%3.24%250.2313.06 1.98

22、%12.80 91.12%3.18%350.1113.03 1.84%12.79 90.26%2.90%450.0215.70 1.98%15.39 91.05%3.29%550.1311.38 1.95%11.16 92.36%2.87%650.254.21 1.92%4.13 90.56%3.13%750.3114.28 1.80%14.02 91.11%2.91%850.0911.38 1.85%11.17 91.32%3.17%950.065.90 1.76%5.80 92.26%3.25%表8-17b路线乙醇正交试验直差分析列号1234含磷量（g）试验号111110.1091 212

23、220.4076 313330.3714 421230.5055 522310.3198 623120.1292 731320.4084 832130.3539 933210.1882 K10.29597 0.34101 0.1974 0.2057 K20.31819 0.36039 0.3671 0.3150 K30.31685 0.22960 0.3665 0.4103 R0.02222 0.13079 0.1697 0.0952 表8-18 b路线乙醇萃取正交试验方差分析离差来源平方和自由度均方F值P值显著性因素B0.0299 20.0149 32.0894 P<0.05*因素C0

24、.0574 20.0287 61.6000 P<0.05*因素D0.0629 20.0314 67.5059 P<0.05*因素A（空白）0.0009 20.0005 F0.10（2，2）=9.0；F0.05（2，2）=19.0；F0.01（2，2）=99.0；3.1.2.2.5小结上述方差分析结果表明：以含磷量为考察指标，相对于因素A，因素B、C、D均有有显著性差异（P<0.05），根据直观分析结果，最佳提取工艺应为A2B2C3D2。从粉末磷脂含磷量来看，9批样品的磷含量均较高，均达到口服级标准。结合直差、方差、磷含量来看分析佳工艺定为A2B2C2D3，即，在60下用2倍量

25、90%乙醇提取粉末磷脂，每次1小时，合并提取液，减压浓缩，即得卵磷脂。9批样品丙酮不溶物含量均大于90%，符合规定。3.1.2.2.6提取工艺验证根据a路线乙醇萃取工艺优选结果,连续投料三批，结果见表8-19表8-19 b路线乙醇萃取工艺验证结果编号粉末磷脂量（g）卵磷脂质量（g）水分（%）丙酮不溶物（%）磷含量（%）第一批100.1423.54 1.8891.05第二批100.3124.031.9192.12第三批100.0523.391.7691.19由表8-10可见，三批结果平行，说明提取工艺条件基本稳定。3.1.2.2 b路线工艺验证以上三组正交试验结果可以得到b路线的最佳工艺。并对该

26、工艺进行验证。平行取浓缩磷脂3份，每份100g，20丙酮脱脂3次，每次用2倍量的丙酮，抽滤，干燥，得到粉末磷脂，该粉末磷脂在60时用2倍量90%乙醇提取粉末磷脂，每次1小时，合并提取液，减压浓缩，即得卵磷脂。a路线工艺验证结果见表8-20。表8-20 b路线工艺验证结果编号浓缩磷脂质量（g）卵磷脂质量（g）水分（%）丙酮不溶物（%）磷含量（%）第一批100.2117.891.85%90.57%第二批100.1917.191.93%91.08%第三批100.0617.091.7690.69%由表8-20可见，三批结果平行，说明提取工艺条件基本稳定。3.1.3 a、b路线对比由a路线及b路线来看，

27、分别以100g液态磷脂为原料a路线得到的磷总量高，另外从试验的操作难易上来看，a路线比较简单易行，因此卵磷脂的制备采取a路线，即602倍量乙醇提取3次，每次60min，再室温经2倍丙酮脱油3次，每次30min。3.2 大豆磷脂柱层析研究按照上述工艺制出的大豆磷脂。磷含量在2.73.3之间，没有达到注射磷脂要求，需要对该大豆磷脂进一步分离。通过柱层析条件摸索，最终确定层析条件为：固定相为硅胶（200-300目），拌样用硅胶为样品质量的2.5倍，空白硅胶为样品的10倍，流动相为甲醇。取浓缩磷脂20kg，按照上述工艺制备卵磷脂样品3.72kg，以其为原料，对磷脂柱层析进行工艺研究。3.2.1 柱层析

28、薄层检测方法3.2.1.1 对照品溶液配制 取德克塞大豆磷脂对照品0.1g，用10ml甲醇溶解作为对照品溶液。3.2.1.2 卵磷脂样品溶液配制 取自制卵磷脂0.1g，用10ml甲醇溶解，作为磷脂样品溶液。3.2.1.3 监测条件每个流份作为一个供试品溶液。吸取上述供试品溶液、对卵磷脂样品溶液、对照品溶液各10ml，分别点于同一以羧甲基纤维素纳为粘合剂的硅胶GF254薄层板上，以二氯甲烷-甲醇（1：1）为展开剂，展开，取出，晾干，碘熏至斑点显色清晰（大概3min）。分别将五个供试品溶液与对照样品溶液及对照品溶液点于同一薄层板上。3.2.1.4 供试品溶液薄层板检测判定 PCB1合并段，层析开始

29、至TLC板图上大豆磷脂标样PC平行位置出现斑点之间的流份；此合并段TLC板图上主要显示的是PC平行位置上方的杂质斑点，没有PC斑点出现。PCB2合并段，TLC板图上PC标样平行位置有斑点、且上方有明显杂质斑点至杂质斑点消失、TLC板图上仅只在PC标样平行位置有斑点之间的流份；此合并段TLC板图上主要显示的是PC标样平行位置和上方有斑点。 PCB3合并段，TLC板图上仅只在PC标样平行位置有斑点至斑点模糊之间的流份；此合并段为目标物PC的主段层析液，TLC板图表现为仅只在PC标样平行位置有斑点，上下没有任何杂质斑点。 PCB4合并段，TLC板图PC标样平行位置斑点模糊至斑点消失之间的流份；此合并

30、段TLC板图上主要显示的是PC标样平行位置有模糊斑点或者没有斑点，下方有模糊的杂质斑点。3.2.2柱层析固定相选择文献报道磷脂的分离可以用三氧化二铝及硅胶。流动相可以用甲醇和乙醇。现对所用固定相进行考察。主要考察硅胶（200-300目）及中性三氧化二铝（200-300目）对卵磷脂样品的分离及吸附状况。取编号为1# 、2#的自制卵磷脂（批号为 ）两份，质量分别为2.01g及2.04g。分别将两批样品用20ml甲醇溶解，拌于固定相中，挥干溶剂。分别将1# 、2#空白固定相装于玻璃柱（Ø2.5×50）中，抽实，上样，用甲醇作为流动相进行洗脱，每25ml为一个流分。固定相、拌样用量

31、及空白固定相的量见表8-21. 按照3.2.1中所述方法对1# 、2# 柱各个流分进行薄层监测，根据薄层行为进行合并。合并情况见表8-21。1#柱薄层板见附图16；2# 柱板见附图714。表8-21 固定相考察数据对照综合表柱子编号1#2#固定相三氧化二铝硅胶拌样固定相用量5.035.01空白固定相量40.1740.06PCB1段流份编号-1-16PCB2段流份编号-PCB3段（磷脂主段）流份编号1-3017-29PCB4段流份编号-30-41将磷脂主段层析液于60减压浓缩（真空度-0.08Mpa），得到主段样品。送检，测其磷含量。1#柱得到主段样品0.60g，磷含量为2.9%，1#柱主段样品

32、收率为30%。2# 柱得到主段样品0.95g，磷含量为2.9%，2#柱主段样品收率为47.5%。由1# 柱、2# 柱主段样品磷值测定结果可知，三氧化二铝柱及硅胶柱都可以分离出注射用磷脂，但2# 柱收率明显大于1# 柱，所以选择硅胶为固定相。3.2.3空白硅用量的考察 由2# 柱结果可知，空白硅胶为20倍上样量时分离效果比较好，但从成本来看，需对空白硅胶用量进行考察。取编号为3# 、4#的自制卵磷脂两份，质量分别为2.06g及2.15g。分别将两批样品用20ml甲醇溶解，拌于硅胶中中，挥干溶剂。分别将3# 、4#空白固定相装于玻璃柱（Ø2.5×50）中，抽实，上样，用甲醇作为

33、流动相进行洗脱. 3#柱每每7ml为一个流份；4# 柱每20ml为一个流份。拌样及空白硅胶质量量见表8-22. 按照3.2.1中所述方法对3# 、4# 柱各个流分进行薄层监测，根据薄层行为进行合并。合并情况见表8-22。3# 柱薄层板见附图1520；4# 柱薄层板见附图2128。表8-22 固定相用量考察数据对照综合表柱子编号3#4#拌样硅胶量（g）5.135.21空白硅胶量（g）10.0120.11PCB1段流份编号1-71-9PCB2段流份编号8-910PCB3段（磷脂主段）流份编号10-1711-30PCB4段流份编号18-3031-40 将3#主段层析液分别于60减压（真空度-0.08

34、Mpa）浓缩，得到主段样品0.95g（磷含量为2.9%），收率为37%。将4# 柱主段层析液分别于60减压（真空度-0.08Mpa）浓缩，得到主段样品0.89g（磷含量为2.9%），收率为44.5%。由3# ，4# 柱层析结果可知，虽然3# 柱对分离磷脂有一定效果，但是交叉部分比较多，主段收率也没有4# 柱高，4# 柱与2# 柱主段收率相差较少，所以将空白硅胶定为样品10倍量。3.2.3流动相考察 有文献报道，乙醇也可以用于磷脂分离。现对乙醇作为流动相进行考察。 取自制卵磷脂2.01g，用20ml甲醇溶解，拌于5.14g硅胶中，5#样。 取20.12g硅胶装于玻璃柱（Ø2.5

35、5;50）中，抽实，将5#样上样，记为5#柱。用95%乙醇为洗脱液进行洗脱，对其进行薄层监测，每20ml为一流分。按照3.2.1中所述方法对5#柱行薄层监测。5# 柱薄层板见附图2934。 5# 柱接到第28流份时已经洗脱7个保留体积，此时磷脂斑点还未出现，表明乙醇对磷脂分离效果不好所以流动相选择为甲醇。3.2.4 工艺验证 取自制卵磷脂3份，质量分别为125.21g，125.36g，125.03g，分别用1250ml甲醇溶解。分别用313.01g，313.52g，312.53g硅胶拌样，编号依次为1#，2#，3#样品。 取三根玻璃柱（Ø8.0×120），分别装入约1.25kg硅胶