乌鸡白凤丸的微生物限度检查 （药品生物检定技术课件）

教学培训课件

项目12乌鸡白凤丸的微生物限度检查

一、药品微生物限度检查1、几个名词解释（1）微生物的概念所谓微生物是一群个体微小、结构简单肉眼不能直接看到，必须借助显微镜以及其它手段才能辨别的微小生物。（2）菌落一般是指在固体培养基上，由细菌单细胞经过适宜温度培养在一个局部位置上，繁殖而成的可见菌体细胞群。（3）无菌技术无菌技术主要指在微生物实验工作中，控制或防止各类微生物的污染及其干扰的一系列操作方法和有关措施，其中包括无菌环境设施，无菌实验器材以及无菌操作等统称为无菌技术。（4）消毒

消毒是指杀灭病因微生物的繁殖体，但杀不死芽孢等全部微生物。

常用的清毒剂的种类

75%乙醇、甲醛、碘酊、0.1%新洁尔灭、乳酸、过氧乙酸、3%来苏尔、过氧化氢等。

（5）灭菌

凡能杀灭物体中所有微生物繁殖体及芽孢或孢子的作用称为灭菌。

常用的灭菌方法

(5．1)干热灭菌法

(5．2)湿热灭菌法

（6）微生物限度检查法定义微生物限度检查法系检查非规定灭菌制剂及其原料、辅料受微生物污染程度的方法。检查项目包括细菌数、霉菌数、酵菌数及控制菌检查。（6．1）操作环境微生物限度检查应在环境洁净度10000级下的局部洁净度100级的单向流空气区域内进行。检查全过程必须严格遵守无菌操作，防止再污染。单向流空气区域、工作台面及环境应定期按《医药工业洁净室（区）悬浮粒子、浮游菌和沉降菌的测试方法》的现行国家标准进行洁净验证。（6．2）培养温度和时间本检查法中细菌培养温度为30~35ºC；时间为48小时。霉菌、酵母菌培养温度为23~28ºC；时间为72小时。控制菌培养温度为35~37ºC；时间为48小时。眼用制剂微生物限度检查用薄膜过滤法，培养时间为7天。2、微生物限度检查方法学验证

（1）验证采用的方法：

①常规法

②稀释法

③离心沉淀集菌法

④薄膜过滤法

⑤中和法

⑥离心和培养基稀释法

⑦离心和薄膜过滤法

（2）细菌、霉菌及酵母菌计数方法的验证（2．1）菌种验证试验所用的菌株传代次数不得超过5代（从菌种保存中心获得的冷冻干燥菌种为第0代），并采用适宜的菌种保藏技术，以保证试验菌株的生物学特性。（1）大肠埃希菌(CMCC(B)44102)（2）金黄色葡萄球菌(CMCC(B)26003)（3）枯草芽孢杆菌(CMCC(B)63501)（4）白色念珠菌(CMCC(F)98001)（5）黑曲霉(CMCC(F)98003)(2．2)菌液制备

接种大肠埃希菌、金黄色葡萄球菌、枯草芽孢杆菌的新鲜培养物至营养肉汤培养基或营养琼脂养基中，培养18-24小时，接种白色念珠菌的新鲜培养物至改良马丁培养基或改良马丁琼脂培养基中，培养24-28小时。上述培养物用0.9%无菌氯化钠溶液制成每1m1含菌数为50-100cfu的菌悬液。接种黑曲霉的新鲜养物至改良马丁琼脂斜面培养基中，培养5-7天，加入3-5m10.9%无菌氯化钠溶液，将孢子洗脱。然后，吸出孢子悬液（用管口塞有适度疏松的无菌棉花或管口外包扎无菌纱布能过滤菌丝的无菌毛细吸管）至无菌试管内，用0.9%无菌氯化钠溶液制成每1m1含孢子数50~100cfu的孢子悬液

（2．3）验证方法验证试验至少应进行3次独立的平行试验，并分别计算各试验菌每次试验的回收率。首先应进行预试验，做金黄色葡萄球菌和白色念珠菌的回收率，然后再确定验证方法。（1）试验组平皿法计数时，取试验可能用的最低稀释级供试液1m1和50-100cfu试验菌，分别注入平皿中，立即倾注琼脂培养基，每株试验菌平行制备2个平皿，按平皿法测定其菌数。薄膜过滤法计数时，取规定量试验可能用的最低稀释级供试液，过滤，冲洗，在最后一次的冲洗液中加入50-100cfu试验菌，过滤，按薄膜过滤法测定其菌数。（2）菌液组测定所加的试验菌数（3）供试品对照组取规定量供试液，按菌落计数法测定供试品本底菌数。（4）稀释剂对照组若供试液制备需要分散、乳化，中和、离心或薄膜过滤等特殊处理时，应增加稀释剂对照组，以考察供试液制备过程中微生物受影响的程度。试验时，可用相应的稀释液代替供试品，加入试验菌，使最终菌浓度为每1m1供试液含50-100cfu，按试验组的供试液制备方法和菌落计数方法测定其菌数。（2．4）结果判断在3次独立的平行试验中，稀释剂对照组的菌回收率（稀释剂对照组的平均菌落数占菌液组的平均菌落数的百分率）应均不低于70%。若试验组的菌回收率（试验组的平均菌落数减去供试品对照组的平均菌落数的值占菌液组的平均菌数的百分率）均不低于70%，照该供试液制备方法和计数法测定供试品的细菌、霉菌及酵母菌数；若任一次试验中试验组的菌回收率低于70%，应采用培养基稀释法、离心沉淀集菌法、薄膜过滤法、中和法等方法或联合使用这些方法消除供试品的抑菌活性，并重新进行方法验证。最低稀释级的供试液含有抑菌活性，且采用上述消除抑菌活性的方法后试验菌的回收率还无法达到计数方法验证的要求时，根据供试品的微生物限度标准和菌数报告规则，在不影响检验结果判断的前提下，可采用高一稀释级的供试液重新进行回收率的测定。若试验菌的回收率符合计数方法验证的要求，应以该稀释级供试液作为最低稀释级的供试液进行试验。验证试验也可与供试品的细菌、霉菌及酵母菌计数同时进行。（3）细菌、霉菌及酵母菌计数方法

试验准备：（干热灭菌、湿热灭菌）

把灭菌好的所有物品搬运至传递窗，打开紫外灯杀菌，至少30分钟。

检查时，按已验证的计数方法进行供试品的细菌、霉菌及酵母菌菌数的测定。

取按验证的方法制备的均匀供试液，用pH7.0无菌氯化钠-蛋白胨缓冲液稀释成1：10、1：10²、1：10³等稀释级。

（3.1）平皿法采用平皿法进行菌数测定时，应取适宜的连接2~3个稀释级的供试液。取供试液1m1，置直径90mm的无菌平皿中，注入15~20ml温度不超过45℃的溶化的营养琼脂培养基或玫瑰红钠琼脂培养基或酵母浸出粉胨葡萄糖琼脂培养基（含蜂蜜或王浆的液体制剂时），混匀，凝固，倒置培养。每稀释级每种培养基至少制备2个平板。（3.1.1）阴性对照试验取试验用的稀释液1m1，置无菌平皿中，注入培养基，凝固，倒置培养。每种计数用的培养基各制备2个平板，均不得有菌生长。

（3.1.2）培养和计数

除另有规定外，细菌培养48小时，逐日点计菌落数，一般以48小时的菌落数报告；霉菌、酵母菌培养72小时，逐日计点菌落数，一般以72小时的菌落数报告；必要时，可适当延长培养时间至5-7天进行菌落计数并报告；菌落蔓延生长成片的平板不宜计数。点计菌落数后，计算各稀释级供试液的平均菌落数，按菌数报告规则报告菌数。若用稀释级两个平板的菌落平均数不小于15，则两个平板的菌落数不能相差1倍或以上。

（3．1．3）菌数报告规则宜选取细菌、酵母菌平均菌落数在30-300之间、霉菌平均菌落数在30-100之间的稀释级，作为菌数报告（取两位有效数字）的依据。如各稀释级的平板无菌落生长，或仅最低稀释级的平均菌落数生长，但平均菌落数小于1小时，以＜1乘以最低稀释倍数的值报告菌数。菌落数报告举例序列各稀释级平板平均菌落数菌落数1：101：1001：1000135203502963729603不可计2003528000425422505000＜10（3.1.4）操作的注意事项

制备的供试液力求分散均匀，使之菌体能均匀分散，其次在每次吸取供试液注皿的时候，都要把供试液摇匀，这样能使两个平板上生长的菌落数比较接近。

浇注培养基的温度不能高，浇注好的平板摇匀后即要求冷却，不要把平板垒起来，这样不利于冷却。

操作时间不能太长，一般要求从供试品稀释到注皿的时间不要超过1小时，因为有些活力较好的菌体在制备供试液的过程中就可行细胞分裂，这样测得的菌数就不能代表原始的污染程度。另外，供试液的平皿底部接触时间太长，会使菌液药渣附着不宜摇散。

可以在培养基中加0.1‰的TTC。

（3.2）薄膜过滤法

采用薄膜过滤法，滤膜孔径应不大于0.45um，直径一般为50mm，若采用其他直径的滤膜，冲洗量应进行相应的调整。选择滤膜材质时应保证供试品及其溶液不影响微生物的充分被截留。滤器及滤膜使用前应采用适宜的方法灭菌。使用时，应保证滤膜在过滤前后的完整性。水溶性供试液过滤前先少量的冲洗液过滤以润湿滤膜。油类供试品，其滤膜和过滤器在使用前应充分干燥。为发挥滤膜的最大过滤效率，应注意保持供试品溶液及冲洗覆盖整个滤膜表面。供试液经薄膜过滤后，若需要用冲洗液冲洗滤膜，每张滤膜每次冲洗量为100ml。每片滤膜的总过滤量不宜过大，以避免滤膜上的微生物受损伤。

（3.2.1）阴性对照试验取试验用的稀释液1ml照上述薄膜过滤法操作，作为阴性对照。阴性对照不得有菌生长。（3.2.2）培养和计数培养条件和计数方法用平皿法，每片滤膜上的菌落数应不超过100个。（3.2.3）菌数报告规则以相当于1g或1ml供试品的菌落数报告菌数；若滤膜上无菌数生长，以＜1报告菌数（每张滤膜过滤1g或1m1供试品），或＜1乘以最低稀释倍数的值报告菌数。（4）控制菌检查方法的验证

（4．1）菌种

对试验菌种的要求同细菌、霉菌及酵母计数方法的验证。（1）大肠埃希菌（CMCC(B)44102）

（2）金黄色葡萄球菌(CMCC(B)26003)

（3）乙型付伤寒沙门菌(CMCC(B)50094)

（4）铜绿假单胞菌(CMCC(B)10104)

（5）生孢梭菌(CMCC(B)64941)

（4．2）菌液制备

（4．3）验证方法

（4．3．1）试验组

（4．3．2）阴性菌对照组（4．4）结果判断（5）控制菌检查（5．1）阳性对照试验（5．2）阴性对照试验（5．3）大肠埃希菌培养基菌落形态培养基菌落形态曙红亚甲蓝琼脂呈紫黑色、浅紫色、蓝紫色或粉红色，菌落中心呈深紫色或无明显暗色中心，圆形，稍凸起，边缘整齐，表面光滑，湿润，常有金属光泽麦康凯琼脂鲜桃红色或微红色，菌落中心呈深桃红色，圆形，扁平，边缘整齐，表面光滑，湿润表1大肠埃希菌菌落形态特征（5．4）大肠菌群

取含适量(不少于10ml)的胆盐乳糖培养基管3支，分别加入1：10的供试液1ml（含供试品0.1g或0.1ml）、1：100的供试液1ml（含供试品0.胆盐乳糖发酵管若无菌生长、或有菌生长但不产酸产气，判该管未检出大肠菌群；若产酸产气，应将发酵管中的培养物分别划线接种于曙红亚甲蓝琼脂培养基的平板上，培养18-24小时。

若平板01g或0.01ml）、1：1000的供试液1ml（含供试品0.001g或0.001ml），另取1支胆盐乳糖发酵培养基管加入稀释液1ml作为阴性对照管。培养18-24小时。

上无菌生长，或生长的菌落与表2所列的菌落形态特征不符或为非革兰阴性无牙孢杆菌，判该管未检出大肠菌群；若平板上生长的菌落与表2所列的菌落形态特征相符或疑似，且为革兰阴性无牙孢杆菌应进行确证试验。

表2大肠菌菌落形态特征

培养基菌落形态曙红亚甲蓝琼脂呈紫黑色、紫红色、红色或粉红色，圆形，扁平或稍凸起，边缘整齐，表面光滑，湿润麦康凯琼脂鲜桃红色或粉红色，圆形，扁平或稍凸起，边缘整齐，表面光滑，湿润确证试验从上述分离平板上挑选4～5个疑似菌落，分别接种于乳糖发酵管中，培养24～48小时。若产酸产气，判该胆盐乳糖发酵管检出大肠菌群，否则判未检出大肠菌群。根据大肠菌群的检出管数，按表3报告1g或1ml供试品中的大肠菌群数。表3可能的大肠菌群数表

各供试品量的检出结果可能的大肠菌群数N(个/g或ml)0.1g或0.1ml0.01g或0.01ml0.001g或0.001ml+++_++__+___＞1000100＜N＜100010＜N＜100＜10注+代表检出大肠菌群；一代表未检出大肠菌群。（5．5）沙门菌（5．6）铜绿假单胞菌（5．7）金黄色葡萄球菌（5．8）梭菌（6）结果判断供试品检出控制菌或其他致病菌时，按一次检出结果为准，不再复试。供试品的细菌数、霉菌和酵母菌数其中任何一项不符合该品种项下的规定，应从一批样品中随机抽样，独立复试两次，以3次结果的平均值报告菌数。眼用制剂检出霉菌和酵母菌数时，须以两次复试结果均不得长菌，方可判供试品的霉菌和酵母菌数符合该品种项下的规定。若供试品的细菌数、霉菌和酵母菌数、控制菌三项检验结果均符合该品种项下的规定，判供试品符合规定，若其中任何一项不符合该品种项下的规定，判供试品不符合规定。7）微生物限度标准（一部有修改的部分）

（7．1）、含豆豉神曲等发酵原粉的制剂

细菌数每1g不得过100000个。每1m1不得过1000个。

霉菌和酵母菌数每1g不得过500个。每1m1不得过100个。

大肠埃希菌每1g或1m1不得检出。

大肠菌群每1g应小于100个。每1m1应小于10个。

一、实验目的乌鸡白凤丸的微生物检查方法与操作掌握沙门氏菌的检查方法和活螨检查方法二、概述无菌检查法是指检查无菌或灭菌制剂的药品以及外科手术用的各种辅料，辅料缝合线，无菌器具及适合于《中国药典》要求无菌检查的其他品种等是否无菌的一种方法。其目的是用以保证无菌或灭菌制剂用药的安全性。三、实验材料1、仪器：智能集菌仪，智能集菌器（无菌）2、培养基：营养肉汤3、其他：盛有75%乙醇消毒液的玻璃缸、乙醇灯、火柴、75%乙醇棉、碘伏棉等；镊子、试管、量筒、三角瓶、刻度吸管(1、5、lOml)、注射器(2、5、lOml)（需灭菌）；无菌衣、裤、帽、口罩（需灭菌）、活化菌种（45分钟）4、菌种：沙门氏菌，活螨；四、方法验证为保证检验质量，对所用的检验方法必须经过验证，才能确保检验结果的准确可靠。当建立药品的无菌检查法时，应进行方法的验证，以确认供试品在该实验条件下无抑菌活牲或其抑菌活性可以忽略不计。若供试品的生产工艺，原、辅料组分或检验条件发生改变时，检查方法应进行重新验证。将规定量的供试品按薄膜过滤法过滤，冲洗，在最后一次的冲洗液中加入试验菌少于100CFU。取出滤膜接种至相应的培养基中，或将培养基直接加至滤筒内。另取一滤筒，不过滤供试品，其它操作同上，作为阳性对照，将含培养基的容器按规定温度培养3～5天。各试验菌及相应的培养