实验微丝染色及形态观察

实验微丝染色及形态观察第1页，课件共13页，创作于2023年2月[目的要求]1.掌握微丝的染色方法。2.了解光镜下微丝的基本形态结构。第2页，课件共13页，创作于2023年2月[实验原理]

真核细胞质中纵横交错的纤维网称为细胞骨架(cellskeleton)，在维持细胞形状和运动方面具有重要作用。根据组成成分和组装结构的不同，可将细胞骨架分为微管(microtubule,MT)、微丝(microfilament,MF)和中间纤维(intermediatefilament,IF)。微丝普遍存在于多种细胞，对细胞的形状和运动有一定作用。第3页，课件共13页，创作于2023年2月

当细胞用TritonX-100溶液处理，能够溶解质膜结构中及细胞内许多蛋白质，而细胞骨架中的蛋白质却不被破坏，经固定和考马斯亮蓝（非特异性蛋白质染料）染色后，胞质背景着色弱，微管等蛋白结构在光镜下无法分辨，在光镜下观察到主要是由微丝组成的应力纤维。应力纤维由平行排列的微丝组成，体外培养的贴壁细胞应力纤维尤为发达，形态长而直，常与细胞长轴平行并贯穿细胞全长。第4页，课件共13页，创作于2023年2月第5页，课件共13页，创作于2023年2月

微丝在细胞内的分布特征第6页，课件共13页，创作于2023年2月[实验用品]器具：CO2恒温培养箱、倒置显微镜、超净工作台、低速离心机、普通光学显微镜、移液器、恒温箱、镊子、培养皿、载玻片、盖玻片、吸水纸。材料：盖玻片培养的成纤维细胞试剂：6mmol/LPBS（pH6.5）、1％TritonX-100溶液、M-缓冲液、3％戊二醛固定液、0.2％考马斯亮蓝染液、DMEM培养液。

第7页，课件共13页，创作于2023年2月[实验步骤]1.培养在成纤维细胞进行传代培养时，将已消毒的盖玻片涂上多聚赖氨酸，放入培养皿中，于37℃、5%CO2的温箱中生长24h～48h。2.染色处理（1）取材取出铺有细胞的盖玻片，放入小培养皿中（正面向上）,用PBS洗3次（从盖玻片一角轻轻滴加34滴），洗去表面的培养液。（2）抽提吸弃PBS，加入1%TritonX-100液4-5滴（刚好覆盖盖玻片表面），室温处理15min第8页，课件共13页，创作于2023年2月（3）稳定吸弃TritonX-100，立即用M-缓冲液轻轻地洗涤3次。

（4）固定略晾干，在3%戊二醛液中固定10min，再以PBS液洗3次，洗去固定液。

（5）染色滴加3-5滴0.2%考马斯亮兰染液染色10min，然后小心的用自来水漂洗。（6）观察留取少量水分封片于载玻片，吸水纸吸去多余的水。光镜下观察临时装片。第9页，课件共13页，创作于2023年2月[实验结果]光镜观察，微丝聚集成的应力纤维束被染成蓝色，成纤维细胞多数有突起，微丝沿突起规则排列。第10页，课件共13页，创作于2023年2月光学显微镜下微丝分布图第11页，课件共13页，创作于2023年2月

[注意事项]1.洗片时要轻柔，以免把细胞从载玻片上洗去。2．操作中应注意区分细胞盖玻片的正反面。3．染色后应冲洗盖玻片背面，避免损伤细胞。4．TritonX-100抽提蛋白时，注意避免抽提时间过长而导致细胞结构的破坏。第12页，课件共13页，创作于2023年2月[作业与思