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瑞替普酶的表达载体构建及其在甲醇中的应用

动脉血栓形成疾病,如急性心绞痛、深静脉血栓形成和血栓形成。发病率高,呈逐年上升趋势。这种疾病的致残率和死亡率很高,溶剂治疗是主要治疗方法。组织纤溶酶原激活物(Tissuetypeplasmenogenactivator,tPA)又称血管纤溶酶原激活物或外激活物,是由血管内皮细胞产生的一种蛋白质,由527个氨基酸残基组成,相对分子质量为65kD,可特异性地溶解血凝块中不溶的纤维蛋白为延长tPA半衰期、降低出血性等副作用,德国BoehringerMannheim公司针对tPA的特点,利用定点突变技术研制出tPA的突变体,即重组瑞替普酶(Reteplase,rtPA),包含了原tPA序列中的1-3位及176-527位氨基酸,相对分子量为39kD。与tPA相比,rtPA与纤维蛋白的亲和力减弱大肠杆菌体系具有遗传背景成熟、生长速率快、周期短、生产成本低等特点,目前对rtPA表达体系的研究多集中于大肠杆菌表达体系。本研究室前期构建了rtPA原核表达体系EscherichiacoliBL21(DE3)pET28a-rtPA,但大肠杆菌是原核生物,表达外源蛋白时,不能对蛋白质进行翻译后修饰,使得重组蛋白的生物学活性较低,且复性和纯化工艺复杂、回收率低、成本较高。胡立强等1材料和方法1.1细菌和颗粒所用的菌株和质粒如表1所示。1.2试剂与仪器T4DNA连接酶、ExTaqDNA聚合酶、限制性内切酶,宝生物工程(大连)有限公司(TaKaRa);小量质粒提取试剂盒及琼脂糖凝胶回收及纯化试剂盒,生工生物工程(上海)股份有限公司(上海生工);凝血酶、纤维蛋白原、tPA抗体,上海源叶生物科技有限公司;纤溶酶原、rtPA标准品(stPA),中国药品生物制品检定所;蛋白定量检测试剂盒、SDS试剂盒,上海碧云天生物技术有限公司;其他试剂为进口或国产分析纯生化试剂。凝胶成像系统、电穿孔仪、基因扩增仪、电泳仪,Bio-Rad公司;台式高速冷冻离心机、移液器,德国Eppendorf公司。1.3菌株zea的筛选MD培养基(g/L):葡萄糖20.0,不含氨基酸的酵母氮基(YNB)13.4,生物素0.0004。固体培养基添加20g/L琼脂粉,1.0mol/L山梨醇,4.0mg/mLG418,用于毕赤酵母基因工程菌的筛选。BMGY培养基(g/L):蛋白胨20.0,酵母粉10.0,100mmol/L磷酸缓冲液(pH6.0),YNB13.4,甘油10mL,生物素0.0004,用于毕赤酵母基因工程菌的培养。BMMY培养基:BMGY培养基添加20g/L甲醇,用于毕赤酵母基因工程菌的诱导表达。大肠杆菌培养用LB培养基,酵母培养用YPD培养基1.4大肠杆菌感受态的制备大肠杆菌DNA操作参考文献[11],大肠杆菌感受态的制备采用上海生工超级感受态制备试剂盒;毕赤酵母感受态制备和转化方法参考文献[10]。1.5r-iip-a型祖母出现系统的构建方法1.5.1cp3:5-面临的聚合酶55333质量表2根据rtPA的基因序列,设计上下游引物P1、P2。引物由上海生工合成。P1:5′-GGGGTACGTAGAGAAAAGAATGTCTTATCAGGGAAAC-3′(SnaBI);P2:5′-GGGGGCGGCCGCTCACGGTCGCATGTTGTC-3′(NotI)。以质粒pET28a-rtPA为模板,P1、P2为引物,扩增rtPA基因,PCR反应体系(50μL):10×ExTaqDNA聚合酶缓冲液5μL,dNTPs(2.5mmol/L)4μL,上游引物(100μmol/L)2μL,下游引物(100μmol/L)2μL,模板2μL,10×ExTaqDNApolymerase(5U/μL)0.5μL,ddH1.5.2阳性转化子的筛选将扩增得到的rtPA基因连接至pMD19-T载体,连接体系及条件参考TaKaRapMD19-TVectorCloningKit说明书;将连接产物转化至E.coliJM109中,经蓝白斑筛选、SnaBI和NotI双酶切验证,获得阳性转化子;提取重组质粒pMD19-T-rtPA,送上海生工测序。1.5.3rtpa和pic9k连接酶的纯化及纯化提取重组质粒pMD19-T-rtPA和穿梭质粒pPIC9K,分别利用限制性内切酶SnaBI和NotI进行双酶切,应用上海生工的胶回收试剂盒回收并纯化线性片段rtPA和pPIC9K,将rtPA连接至质粒pPIC9K,连接体系及条件参考TaKaRaT4DNA连接酶说明书。连接产物转化至E.coliJM109中,经抗性筛选,SnaBI和NotI双酶切验证,获得阳性转化子E.coliJM109pPIC9K-rtPA。1.5.4pic9k-rtpa反应体系及条件提取重组质粒pPIC9K-rtPA,SalI酶切使质粒线性化,反应体系(100μL):乙酰化BSA10μL,10×BufferH10μL,重组质粒pPIC9K-rtPA40μL,SalI(10U/μL)3μL,ddH1.6重悬细胞诱导培养挑取MD-G418平板上的阳性转化子,划线分离3次以上获得纯菌落;取单菌落接种于50mLBMGY培养基,30°C、200r/min振荡培养36h左右至对数中后期;取种子液5000r/min离心5min,去上清,加入15mLBMMY培养基重悬细胞;将重悬细胞转移至无菌的三角瓶中,于30°C、200r/min下进行诱导培养;每24h补加甲醇至终浓度1%,使甲醇总添加浓度为5%,持续诱导培养96h。培养液经12000r/min离心2min,取上清为粗蛋白液。1.7定量检测试验剂(1)发酵液中蛋白总量的检测采用上海碧云天生物技术有限公司的蛋白定量检测试剂盒;(2)按照试剂盒方法配制12%的SDS,进行发酵样品的非还原性电泳,每孔上样量为10μL,电泳结束后对表达产物进行Westernblot鉴定2结果与分析2.1表达质粒pd19-t-rtpa和pic9k-rtpa的构建质粒pPIC9K为毕赤酵母分泌型表达载体,重组表达质粒构建过程如图1所示,经SnaBI和NotI双酶切验证,克隆质粒pMD19-T-rtPA(图1B)和表达质粒pPIC9K-rtPA(图1C)构建成功。将重组质粒pPIC9K-rtPA送上海生工测序,rtPA基因序列与预期完全一致,表明表达载体pPIC9K-rtPA构建成功。2.2重组菌pic9k-rtpa的构建为探索rtPA的最佳毕赤酵母表达体系,以3种不同表型的P.pastorisGS115、SMD1168和KM71为表达宿主,以分泌型表达质粒pPIC9K为载体,构建3种毕赤酵母分泌表达体系。以限制性内切酶SalI消化重组质粒pPIC9K-rtPA,使其线性化(目的条带约10.3kb),并将其分别电击转化至3株毕赤酵母的感受态细胞中,转化物涂布于MD-G418平板,于30°C培养48-72h至长出单菌落;挑取单菌落,以P1、P2为引物进行菌落PCR验证(图2),结果表明重组菌构建成功。挑取阳性菌落在MD-G418平板上分离纯化3次以上得到纯菌落。2.3糖基化所致3种重组菌按1.6中的方法进行诱导表达,取发酵上清液,以Westernblot验证蛋白合成情况(图3),结果显示目标蛋白质分子量约为43kD,较理论分子量(39kD)大,可能为糖基化所致;重组菌P.pastorisGS115/pPIC9K-rtPA和KM71/pPIC9K-rtPA均在39kD处出现特异性条带,可能为未经糖基化的目标蛋白或糖基化后又降解的蛋白条带,前者在32kD处有轻微降解条带,而后者并无此现象,由此可见,前者的表达量和降解程度均较后者大,说明在宿主自有蛋白酶的作用下,降解程度与表达量成正比;而重组菌P.pastorisSMD1168/pPIC9K-rtPA表达产物无降解现象,说明宿主蛋白酶缺失可有效避免目标蛋白的降解。2.4重组蛋白表达情况重组菌P.pastorisGS115/pPIC9K-rtPA、SD1168/pPIC9K-rtPA、KM71/pPIC9K-rtPA诱导表达所得重组蛋白分别为rtPA-GS115、rtPA-SD1168、rtPA-KM71,表达量分别为256、174、105mg/L(表2)。采用纤维蛋白平板法半定量检测表达产物活性,结果如图4所示:纤维蛋白平板上均出现溶圈反应,表明重组菌所表达产物均有溶栓活性,其中rtPA-GS115与rtPA-SD1168的溶圈半径相近,生物活性也相近,分别为2.99uf0b4103p.pastorissd115对rtpa活性的影响近年来,对于rtPA的研究多集中于E.coli表达体系,众多的自由巯基使该蛋白在E.col

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