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文档简介
21、没有人陪你走一辈子,所以你要适应孤独,没有人会帮你一辈子,所以你要奋斗一生。22、当眼泪流尽的时候,留下的应该是坚强。23、要改变命运,首先改变自己。24、勇气很有理由被当作人类德性之首,因为这种德性保证了所有其余的德性。--温斯顿.丘吉尔。25、梯子的梯阶从来不是用来搁脚的,它只是让人们的脚放上一段时间,以便让别一只脚能够再往上登。小鼠及蛙类实验基本技术小鼠及蛙类实验基本技术21、没有人陪你走一辈子,所以你要适应孤独,没有人会帮你一辈子,所以你要奋斗一生。22、当眼泪流尽的时候,留下的应该是坚强。23、要改变命运,首先改变自己。24、勇气很有理由被当作人类德性之首,因为这种德性保证了所有其余的德性。--温斯顿.丘吉尔。25、梯子的梯阶从来不是用来搁脚的,它只是让人们的脚放上一段时间,以便让别一只脚能够再往上登。小鼠及蛙类实验基本技术小鼠及蛙类基本实验技术
BasicExperimentalTechniqueofMouseandFrog医学基础实验教学中心洪天国2012年5月小鼠及蛙类基本实验技术21、没有人陪你走一辈子,所以你要适应孤独,没有人会帮你一辈1小鼠及蛙类实验基本技术课件2小鼠及蛙类实验基本技术课件3小鼠及蛙类实验基本技术课件4小鼠及蛙类实验基本技术课件51.小鼠捉拿
(MiceSeizure)1)双手捉拿方法三、实验方法:小鼠实验技术1234右手抓尾后拉,左手拇指和食指抓住小鼠头颈部皮肤,将其固定于左手大鱼际处;拉直四肢并用左手无名指、小指压紧尾和后肢,右手即可作注射或其它实验操作。1.小鼠捉拿(MiceSeizure)三、实验方法:小鼠62)单手捉拿方法31242)单手捉拿方法31247
2.小鼠腹腔注射
(IntraperitonealInjection)
左手固定小鼠,使腹部朝上,右手持注射器,取45°角刺入左侧下腹部向头端刺入腹腔。进针部位不宜太高,刺入不能太深,以免伤及内脏,推注前应回抽确认。
注射量一般为0.1~0.2ml/10g体重。
三、实验方法:小鼠实验技术2.小鼠腹腔注射三、实验方法:小鼠实验技术83.小鼠灌胃(IntragastricAdministration)
1小白鼠1灌胃量一般为0.1~0.3ml/10g体重。2以左手捉持小鼠,使头部朝上,保持头颈部平直。右手持装有灌胃针头的注射器,自右口角插人口腔,从上腭进入食管。如遇阻力,应退出后重插,不能强力插,以免穿破食管或误入气管。三、实验方法:小鼠实验技术3.小鼠灌胃1小1灌胃量一般为0.1~0.3ml/10g体9三、实验方法:蟾蜍(Toad)的捉拿用左手将动物贴紧在手掌中,并以左手中指、无名指、小指压住其左腹侧和后肢,拇指和食指分别压住背部、头部和前肢,右手进行操作。
根据实验需要,可用图钉,采取俯卧位或仰卧位固定在蛙板上。
注意:抓取蟾蜍时,禁忌挤压两侧耳部毒腺,以免毒液射入眼中。枕骨大孔三、实验方法:蟾蜍(Toad)的捉拿用左手将10
左手握蟾蜍,食指下压吻端,拇指按压背部,其余三指紧贴腹部。找到枕骨大孔刺入1-2mm,分别捣损脑组织和脊髓。
※脑和脊髓完全破坏的标志是:呼吸停止,四肢松软并处于对称位置。
三、实验方法:蛙类坐骨神经腓肠肌标本制备1.破坏脑脊髓(DamageofSpinalCordandBrain) 左手握蟾蜍,食指下压吻端,拇指按压背部,其11三、实验方法:蛙类坐骨神经腓肠肌标本制备
在骶髂关节水平上1cm处剪断脊柱,去除头、前肢和内脏,保留部分脊柱和下肢。用任氏液小心冲洗坐骨神经及其周围组织上的血液。2.剪除躯干上部及内脏(PruneofUpperPartofTorsoandViscera)三、实验方法:蛙类坐骨神经腓肠肌标本制备 在骶髂关节水12
剪去尾骨,剥去余下组织的皮肤,沿脊柱正中到耻骨联合将标本剪开,标本放到盛有任氏液的烧杯中。三、实验方法:蛙类坐骨神经腓肠肌标本制备3.剥皮
(Skinning) 剪去尾骨,剥去余下组织的皮肤,沿脊柱正中到耻骨联合将1312344.游离坐骨神经(FreeofSciaticNerve)
腓肠肌向上将标本固定于蛙板上,由脊柱仔细将坐骨神经分离至膝关节处,并在脊柱旁结扎。三、实验方法:蛙类坐骨神经腓肠肌标本制备12344.游离坐骨神经(FreeofSciatic145.制成坐骨神经—腓肠肌标本(MakingofIschiaticNerve-GastrocnemiusMuscleSpecimen)
腓肠肌向上将标本固定于蛙板上,由脊柱仔细将坐骨神经分离至膝关节处,并在脊柱旁结扎。6.标本检验(SpecimenExamination)
用锌铜弓(任氏液预先湿润)轻轻刺激坐骨神经,腓肠肌收缩即表示标本制备完好。三、实验方法:蛙类坐骨神经腓肠肌标本制备视频:蛙类坐骨神经腓肠肌标本制备5.制成坐骨神经—腓肠肌标本三、实验方法:蛙类坐骨神经腓肠肌15四、注意事项捉拿小鼠时应规范操作,避免被咬。腹腔注射时,针头刺入部位不宜太接近上腹部或太深,以免刺破内脏。针头与腹腔的角度不宜太小,避免刺入皮下。灌胃时,针头沿鼠口角通过食管进入胃内。灌时如很通畅,则表示针头已进入胃内;如动物有呕吐或强烈挣扎,必须拔出后按上述方法重新操作。如进针不顺,决不可硬向里插。小鼠实验四、注意事项捉拿小鼠时应规范操作,避免被咬。小鼠实验16抓取蟾蜍时,小心毒液。四、注意事项蛙类实验抓取蟾蜍时,小心毒液。四、注意事项蛙类实验17抓取蟾蜍时,小心毒液。分离神经时,应用玻璃分针。保持坐骨神经腓肠肌标本活性(加任氏液、不要用手和器械夹捏)。四、注意事项蛙类实验玻璃分针抓取蟾蜍时,小心毒液。四、注意事项蛙类实验玻璃分针18机能实验室动物实验规章制度动物领取:实验开始后,按规定数量在动物房领取,领完动物后及时关闭鼠笼或蛙笼。实验过程中非操作因素导致动物死亡,须经主讲老师批准后方可重新领取,严禁擅自拿取。动物实验:应爱惜实验动物,严禁浪费。动物尸体处理:实验完毕后,动物尸体集中于回收桶,由值日同学负责处理。机能实验室动物实验规章制度动物领取:实验开始后,按规定数量在19开始实验开始实验20小鼠及蛙类实验基本技术器械清单器材数量器材数量小鼠灌胃器11ml注射器针头2脸盆12.蛙类实验基本技术器材数量器材数量蛙板2粗剪刀1刺蛙针2组织剪1锌铜弓1组织镊2图钉4眼科剪1玻璃平皿1玻璃分针21:小鼠灌胃、腹腔注射方法鼠灌胃器锌铜弓小鼠及蛙类实验基本技术器械清单数量器材数量小鼠灌胃器11ml21
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