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文档简介

2025年分子PCR试题及答案一、单项选择题(每题2分,共30分)1.关于PCR反应体系的组成,下列哪项描述错误?A.dNTPs是合成DNA的原料,浓度过高会抑制Taq酶活性B.Mg²+浓度过低会导致引物与模板结合效率下降C.引物浓度过高可能引发非特异性扩增D.TaqDNA聚合酶具有3'→5'外切酶活性,可校正碱基错配答案:D(Taq酶不具有3'→5'外切酶活性,无校正功能,易错配)2.逆转录PCR(RT-PCR)中,若以总RNA为模板直接进行PCR扩增,最可能出现的结果是?A.扩增出目的cDNAB.扩增出基因组DNA污染片段C.无扩增产物D.扩增出mRNA的二级结构片段答案:C(RNA不能直接作为PCR模板,需先逆转录为cDNA)3.荧光定量PCR(qPCR)中,SYBRGreenI染料的作用原理是?A.与双链DNA小沟结合,激发荧光B.与引物5'端标记的荧光基团发生FRET效应C.特异性识别目标序列的茎环结构D.嵌入单链DNA的磷酸骨架,稳定双链结构答案:A(SYBRGreenI特异性结合双链DNA小沟,游离状态荧光弱,结合后荧光增强)4.多重PCR技术的核心难点在于?A.提高Taq酶的热稳定性B.设计多对引物时避免引物间相互作用C.优化dNTPs的浓度配比D.缩短变性时间以减少模板降解答案:B(多重PCR需多对引物同时扩增,引物间易形成二聚体或竞争模板,设计难度大)5.数字PCR(dPCR)与qPCR的主要区别是?A.dPCR无需标准曲线,通过绝对计数实现定量B.dPCR使用荧光探针,qPCR使用染料C.dPCR扩增效率更高,灵敏度可达单拷贝D.dPCR仅用于病原体检测,qPCR用于基因表达分析答案:A(dPCR通过微滴化将模板分配到独立反应单元,通过阳性微滴比例绝对定量,无需标准曲线)6.PCR扩增时,若退火温度过高,最可能导致?A.引物与模板结合不充分,无扩增产物B.非特异性扩增增多C.延伸时间延长,产物量增加D.Taq酶失活,反应终止答案:A(退火温度过高,引物与模板的氢键难以形成,结合效率下降,可能无产物)7.某实验室使用PCR检测结核分枝杆菌,阳性对照扩增正常,但临床样本均无扩增条带,最可能的原因是?A.样本中结核分枝杆菌载量过高B.样本处理时核酸提取失败C.Taq酶保存温度为-20℃(正确保存条件)D.引物退火温度比理论Tm值低5℃答案:B(阳性对照正常说明试剂和扩增条件无问题,样本无条带多因核酸提取失败或样本中无目标核酸)8.实时荧光定量PCR中,Ct值(循环阈值)与初始模板量的关系是?A.Ct值越大,初始模板量越多B.Ct值越小,初始模板量越多C.Ct值与初始模板量呈指数正相关D.Ct值与初始模板量无关答案:B(Ct值是荧光信号达到阈值时的循环数,初始模板量越多,达到阈值所需循环数越少,Ct值越小)9.用于检测RNA病毒(如流感病毒)的PCR技术是?A.常规PCRB.巢式PCRC.RT-PCRD.touchdownPCR答案:C(RNA病毒需先通过逆转录提供cDNA,再进行PCR扩增)10.PCR反应中,延伸步骤的温度通常设置为?A.94-98℃B.50-65℃C.70-75℃D.37-42℃答案:C(Taq酶最适延伸温度为72℃,通常设置70-75℃)11.引物设计时,GC含量建议控制在?A.10%-20%B.20%-30%C.40%-60%D.70%-80%答案:C(GC含量过低影响引物与模板结合稳定性,过高易形成二级结构,40%-60%为理想范围)12.下列哪种PCR技术可用于基因突变检测?A.多重PCRB.等位基因特异性PCR(AS-PCR)C.原位PCRD.热启动PCR答案:B(AS-PCR通过设计针对突变位点的特异性引物,仅当模板存在突变时才扩增)13.PCR产物电泳后出现smeared条带(拖尾),可能的原因是?A.引物浓度过低B.模板浓度过高C.退火温度过高D.dNTPs浓度过低答案:B(模板浓度过高会导致扩增产物过多,电泳时出现拖尾;或延伸时间过长、酶量过多)14.热启动PCR的主要目的是?A.提高扩增效率B.减少非特异性扩增C.延长Taq酶寿命D.降低反应成本答案:B(热启动PCR通过抑制低温下酶的活性,避免引物与非特异性模板结合引发的预扩增)15.数字PCR中,微滴化处理的主要作用是?A.提高反应体系的热传导效率B.将模板分子分配到独立微滴,实现单分子扩增C.减少荧光染料的非特异性结合D.降低Taq酶的用量答案:B(微滴化使每个微滴成为独立反应单元,单个模板分子在微滴内扩增,通过计数阳性微滴实现绝对定量)二、填空题(每空1分,共20分)1.PCR反应的三个基本步骤是______、______、______。答案:变性;退火;延伸2.逆转录PCR(RT-PCR)中,常用的逆转录酶有______(如M-MLV)和______(如AMV)。答案:莫洛尼鼠白血病病毒逆转录酶;禽成髓细胞瘤病毒逆转录酶3.荧光定量PCR的定量方法包括______(需标准曲线)和______(通过内参基因校正)。答案:绝对定量;相对定量4.引物设计时,应避免在3'端出现______(如连续G/C),否则易导致非特异性扩增。答案:碱基堆积5.TaqDNA聚合酶缺乏______外切酶活性,因此PCR产物通常带有______(A/T/C/G)突出末端,可用于TA克隆。答案:3'→5';A6.多重PCR需使用______(高/低)浓度的引物,且各引物的Tm值应______(相近/差异大),以保证同步扩增。答案:低;相近7.数字PCR的结果分析基于______分布原理,通过计算阳性微滴比例推导初始模板浓度。答案:泊松8.PCR扩增失败时,若阴性对照出现条带,提示______污染;若阳性对照无条带,提示______失效。答案:试剂(或交叉);引物/酶/模板9.实时荧光定量PCR中,常用的荧光标记方法包括______(如SYBRGreenI)和______(如TaqMan探针)。答案:染料法;探针法10.巢式PCR通过______轮扩增提高特异性,第一轮使用______引物,第二轮使用______引物。答案:两;外;内三、简答题(每题8分,共40分)1.简述引物设计的基本原则。答案:(1)长度:18-25个核苷酸,过短特异性差,过长扩增效率低;(2)GC含量:40%-60%,避免过高(易形成二级结构)或过低(结合不稳定);(3)Tm值:引物与模板的解链温度,上下游引物Tm值差异不超过5℃,通常55-65℃;(4)避免二级结构:引物内部避免发夹结构(ΔG<-5kcal/mol),引物间避免二聚体(尤其是3'端互补);(5)3'端特异性:3'端碱基尽量为G/C,避免连续相同碱基(如CCC),且不能与非目标序列互补;(6)特异性:通过BLAST比对确保引物仅与目标序列结合,避免扩增基因组重复序列。2.比较SYBRGreenI染料法与TaqMan探针法荧光定量PCR的优缺点。答案:(1)SYBRGreenI法:优点是成本低(无需定制探针)、操作简单(仅需引物);缺点是特异性差(染料结合所有双链DNA,可能扩增非特异性产物导致假阳性)、无法区分不同扩增子(多靶点检测需电泳验证)。(2)TaqMan探针法:优点是特异性高(探针与目标序列特异性杂交,结合Taq酶的5'→3'外切活性切割探针释放荧光)、可进行多重检测(不同探针标记不同荧光基团);缺点是成本高(需定制探针)、设计复杂(探针需避免二级结构,与引物位置匹配)。3.分析PCR扩增中出现非特异性条带的可能原因及解决措施。答案:可能原因:(1)引物设计不当(如引物与非目标序列互补、引物二聚体);(2)退火温度过低(引物与模板非特异性结合);(3)模板浓度过高(杂质干扰或过多非目标序列);(4)Taq酶用量过多(催化非特异性反应);(5)Mg²+浓度过高(增强酶活性,降低引物结合特异性)。解决措施:(1)重新设计引物(BLAST验证特异性,避免二聚体);(2)提高退火温度(根据引物Tm值调整,或使用touchdownPCR);(3)稀释模板(降低杂质和非目标序列浓度);(4)减少Taq酶用量(常规反应1-2.5U即可);(5)优化Mg²+浓度(通常1.5-2.5mM,可通过梯度实验确定)。4.简述逆转录PCR(RT-PCR)的操作流程及关键注意事项。答案:操作流程:(1)RNA提取:使用TRIzol或柱式试剂盒提取总RNA,确保无DNA污染(可通过DNaseI处理);(2)逆转录反应:加入随机引物/oligo(dT)/特异性引物,在逆转录酶(如M-MLV)作用下合成cDNA;(3)PCR扩增:以cDNA为模板,加入目标基因引物进行常规PCR或qPCR。关键注意事项:(1)RNA易降解,需全程保持无RNase环境(使用DEPC水、RNase抑制剂);(2)逆转录前需检测RNA质量(通过A260/A280比值>1.8,电泳观察28S/18S条带比例);(3)避免基因组DNA污染(可设置无逆转录酶的对照,若该对照扩增出条带,说明DNA污染);(4)逆转录引物选择:检测特定mRNA用特异性引物,检测未知RNA用随机引物,检测全长mRNA用oligo(dT)。5.数字PCR(dPCR)的技术原理及在临床检测中的应用优势。答案:技术原理:将反应体系分割成数万个微滴(或微腔),每个微滴包含0或1个模板分子;进行PCR扩增后,通过荧光检测统计阳性微滴数;根据泊松分布公式(λ=-ln(1-p),其中p为阳性微滴比例)计算初始模板浓度(拷贝数/μL)。临床应用优势:(1)绝对定量:无需标准曲线,直接输出拷贝数,适用于病原体载量监测(如HIV病毒载量);(2)高灵敏度:可检测单拷贝模板,用于癌症早期液态活检(如ctDNA突变);(3)抗干扰能力强:微滴分隔减少抑制物影响,适合复杂样本(如血液、组织);(4)精准定量:不受扩增效率影响(qPCR依赖扩增效率一致性),结果重复性高。四、案例分析题(10分)某实验室使用qPCR检测患者痰液中的结核分枝杆菌(MTB),实验步骤如下:①痰液样本经NaOH消化处理后,用柱式试剂盒提取DNA;②以提取的DNA为模板,加入MTB特异性引物(Tm=60℃)、SYBRGreenI染料、PCR反应液(含2mMMg²+、0.2mMdNTPs、1UTaq酶);③扩增程序:95℃预变性5min;95℃变性15s,60℃退火30s,72℃延伸30s,共40个循环;④熔解曲线分析:95℃15s,60℃1min,然后以0.5℃/s升温至95℃,连续采集荧光。结果显示:阳性对照(已知MTBDNA)的熔解曲线在82℃有单一峰,Ct=22;阴性对照(无模板)无荧光信号;但5份临床样本中,3份的熔解曲线在82℃有峰(Ct=30-35),2份无峰(Ct>40)。问题:(1)如何解释临床样本Ct值(30-35)与阳性对照(Ct=22)的差异?(2)2份无峰样本可能的原因是什么?(3)若怀疑样本中存在PCR抑制物,可采取哪些验证方法?答案:(1)Ct值差异主要由初始模板量不同导致。阳性对照为已知高浓度MTBDNA,扩增时荧光信号早于阈值(Ct=22);临床样本中MTB载量较低(可能为轻症或治疗后患者),需更多循环(Ct=30-35)才能达到荧光阈值。(2)2份无峰样本可能的原因:①样本中无MTB(真阴性);②核酸提取失败(如痰液消化不彻底,DNA未释放);③抑制物残留(

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